3D Bioprinting eines stromalen Hornhautmodells mittels Keratozytenenthaltenden Hydrogelen:
Gespeichert in:
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| Format: | Abschlussarbeit Buch |
| Sprache: | German |
| Veröffentlicht: |
Aachen
[2022]
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Datensatz im Suchindex
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|---|---|
| adam_text | INHALTSVERZEICHNISVERZEICHNIS
1.
EINLEITUNG
...........................................................................................................
1
1.1.
ANATOMISCHE
GRUNDLAGEN
.........................................................................
1
1.2.
KLINISCHE
RELEVANZ
...................................................................................
2
1.3.
TISSUE
ENGINEERING
DER
HORNHAUT
............................................................
3
1.4.
3D
BIOPRINTING
............................................................................................
4
1.5.
KULTIVIERUNG
VON
CSK
................................................................................
7
2.
ZIELSETZUNG
........................................................................................................
8
3.
MATERIAL
UND
METHODEN
.....................................................................................
9
3.1.
ISOLATION
VON
HUMANEN
CSK
.....................................................................
9
3.2.
KULTUR
UND
PASSAGE
DER
CSK
..................................................................
10
3.3.
KULTUR
VON
SF
...........................................................................................
10
3.4.
IMMUNHISTOCHEMIE
VON
CSK
UND
SF
IN
2D
KULTUR
.................................
11
3.5.
RNA
ISOLATION
UND
REAL
TIME
POLYMERASE
KETTENREAKTION
(RT-PCR)
DER
CSK
IN
2D
ZELLKULTUR
...........................................................................................
12
3.5.1.
RNA
ISOLATION
AUS
CSK
UND
SF
IN
2D
ZELLKULTUR
............................
12
3.5.2.
RT-PCR
DER
CSK
UND
SF
IN
2D
ZELLKULTUR
......................................
13
3.5.2.1.
UMSCHREIBEN
DER
RNA
PROBEN
ZU
CDNA
..................................
13
3.5.2.2.
PRIMER
ETABLIERUNG
......................................................................
13
3.5.2.3.
DURCHFUEHRUNG
DER
RT-PCR
........................................................
18
3.5.2.4.
AUSWERTUNG
DER
ERGEBNISSE
DER
RT-PCR
...............................
20
3.6.
WAHL
DES
HYDROGELS
UND
EINBRINGEN
DER
ZELLEN
IN
HYDROGELE
.............
20
3.6.1.
ZUBEREITUNG
DER
HYDROGELE
...............................................................
21
3.6.1.1.
AGAROSE
.......................................................................................
21
3.6.1.2.
KOLLAGEN
.......................................................................................
21
3.6.1.3.
KOLLAGEN-AGAROSE
.......................................................................
21
3.6.2.
AUSSAAT
DER
CSK
AUF
HYDROGELEN
....................................................
21
3.6.2.1.
LEBEND/TOT
FAERBUNG
AN
TAG
1
UND
TAG
7
NACH
AUSSAAT
AUF
HYDROGELEN
...................................................................................................
21
3.7.
3D
DRUCK
EINES
HORNHAUTMODELLS
MITTELS
CSK
ENTHALTENDEN
HYDROGELEN
........................................................................................................
22
3.7.1.
WAHL
DES
HYDROGELS
FUER
3D
DRUCK
...................................................
22
3.7.2.
ERSTELLUNG
DES
3D
HORNHAUTMODELLS
................................................
22
3.7.3.
EINBRINGEN
DER
ZELLEN
IN
DAS
HYDROGEL
FUER
DEN
3D
DRUCK
.............
22
3.7.4.
NACHWEIS
DER
LEBENSFAEHIGKEIT
DER CSK
NACH
3D
DRUCK
..............
23
3.7.4.1.
LEBEND/TOT
FAERBUNG
UND
BILDGEBUNG
VON
CSK
IN
3D
KULTUR.
..23
DISSERTATION
MALENA
ELISA
ROHDE
INHALTSVERZEICHNIS
3.7.4.2.
IMMUNHISTOCHEMISCHE
FAERBUNG
DER
CSK
NACH
3D
DRUCK
......
23
3.8.
RNA
ISOLATION
UND
RT-PCR
MIT
CSK
UND
SF-ENTHALTENDEN
HYDROGELEN
........................................................................................................
24
3.8.1.
KULTUR
DER
CSK
UND
SF
INNERHALB
DES
HYDROGELS
...........................
24
3.8.2. RNA
ISOLATION
AUS
CSK
UND
SF-ENTHALTENDEN
GELPROBEN
.............
24
3.8.3.
RT-PCR
DER
GELPROBEN
....................................................................
25
3.8.3.1.
AUSWERTUNG
DER
GELPROBEN
MITTELS
RT-PCR
............................
25
3.9.
STATISTISCHE
AUSWERTUNG
..........................................................................
25
4.
ERGEBNISSE
......................................................................................................
27
4.1. ISOLATION
UND
KULTUR
VON
CSK
UND
SF
...................................................
27
4.2.
IMMUNHISTOCHEMISCHE
CHARAKTERISIERUNG
VON
CSK
UND
SF
IN
2D
KULTUR
........................................................................................................
27
4.3.
ERGEBNISSE
DER
RT-PCR
INNERHALB
DER
2D
ZELLKULTUR
............................
28
4.4.
AUSTESTUNG
UND
WAHL
DER
VERSCHIEDENEN
HYDROGELE
............................
31
4.4.1.
AUSSAAT
DER
CSK
AUF
HYDROGELEN
(2D
KULTUR)
.................................
31
4.5.
3D
DRUCK
EINES
HORNHAUTMODELLS
MITTELS
CSK
ENTHALTENDEN
HYDROGELEN
........................................................................................................
33
4.5.1.
ENTWURF
UND
SCHNITT
DES
3D
HORNHAUT
MODELLS
.................................
33
4.5.2.
UEBERLEBEN
VON
CSK
NACH
3D
DRUCK
................................................
33
4.5.3.
IMMUNHISTOCHEMISCHE
UNTERSUCHUNG
DES
ZELLPHAENOTYPS
NACH
3D
DRUCK
36
4.5.4.
VERGLEICH
DER
GENEXPRESSION
VON
CSK
MIT
SF
MITTELS
RT-PCR
INNERHALB
DER
3D
KULTUR
..................................................................................
36
5.
DISKUSSION
......................................................................................................
39
5.1.
VERHALTEN
VON
CSK
UND
SF
IN
2D
UND
3D
KULTUR
...................................
39
5.2.
EINFLUSS
DES
HYDROGELS
AUF
CSK
UND
SF
................................................
41
5.3.
3D
DRUCK
VON
HORNHAUTMODELLEN
.............................................................
42
6.
ZUSAMMENFASSUNG
........................................................................................
49
6.1.
DEUTSCH
.....................................................................................................
49
6.2.
ENGLISH
.......................................................................................................
50
7.
LITERATURVERZEICHNIS
........................................................................................
51
8.
DANKSAGUNG
...................................................................................................
55
9.
ERKLAERUNG
ZUR
DATENAUFBEWAHRUNG
...............................................................
57
10.
ERKLAERUNG
UEBER
DEN
EIGENANTEIL
..................................................................
59
IV
|
| adam_txt |
INHALTSVERZEICHNISVERZEICHNIS
1.
EINLEITUNG
.
1
1.1.
ANATOMISCHE
GRUNDLAGEN
.
1
1.2.
KLINISCHE
RELEVANZ
.
2
1.3.
TISSUE
ENGINEERING
DER
HORNHAUT
.
3
1.4.
3D
BIOPRINTING
.
4
1.5.
KULTIVIERUNG
VON
CSK
.
7
2.
ZIELSETZUNG
.
8
3.
MATERIAL
UND
METHODEN
.
9
3.1.
ISOLATION
VON
HUMANEN
CSK
.
9
3.2.
KULTUR
UND
PASSAGE
DER
CSK
.
10
3.3.
KULTUR
VON
SF
.
10
3.4.
IMMUNHISTOCHEMIE
VON
CSK
UND
SF
IN
2D
KULTUR
.
11
3.5.
RNA
ISOLATION
UND
REAL
TIME
POLYMERASE
KETTENREAKTION
(RT-PCR)
DER
CSK
IN
2D
ZELLKULTUR
.
12
3.5.1.
RNA
ISOLATION
AUS
CSK
UND
SF
IN
2D
ZELLKULTUR
.
12
3.5.2.
RT-PCR
DER
CSK
UND
SF
IN
2D
ZELLKULTUR
.
13
3.5.2.1.
UMSCHREIBEN
DER
RNA
PROBEN
ZU
CDNA
.
13
3.5.2.2.
PRIMER
ETABLIERUNG
.
13
3.5.2.3.
DURCHFUEHRUNG
DER
RT-PCR
.
18
3.5.2.4.
AUSWERTUNG
DER
ERGEBNISSE
DER
RT-PCR
.
20
3.6.
WAHL
DES
HYDROGELS
UND
EINBRINGEN
DER
ZELLEN
IN
HYDROGELE
.
20
3.6.1.
ZUBEREITUNG
DER
HYDROGELE
.
21
3.6.1.1.
AGAROSE
.
21
3.6.1.2.
KOLLAGEN
.
21
3.6.1.3.
KOLLAGEN-AGAROSE
.
21
3.6.2.
AUSSAAT
DER
CSK
AUF
HYDROGELEN
.
21
3.6.2.1.
LEBEND/TOT
FAERBUNG
AN
TAG
1
UND
TAG
7
NACH
AUSSAAT
AUF
HYDROGELEN
.
21
3.7.
3D
DRUCK
EINES
HORNHAUTMODELLS
MITTELS
CSK
ENTHALTENDEN
HYDROGELEN
.
22
3.7.1.
WAHL
DES
HYDROGELS
FUER
3D
DRUCK
.
22
3.7.2.
ERSTELLUNG
DES
3D
HORNHAUTMODELLS
.
22
3.7.3.
EINBRINGEN
DER
ZELLEN
IN
DAS
HYDROGEL
FUER
DEN
3D
DRUCK
.
22
3.7.4.
NACHWEIS
DER
LEBENSFAEHIGKEIT
DER CSK
NACH
3D
DRUCK
.
23
3.7.4.1.
LEBEND/TOT
FAERBUNG
UND
BILDGEBUNG
VON
CSK
IN
3D
KULTUR.
.23
DISSERTATION
MALENA
ELISA
ROHDE
INHALTSVERZEICHNIS
3.7.4.2.
IMMUNHISTOCHEMISCHE
FAERBUNG
DER
CSK
NACH
3D
DRUCK
.
23
3.8.
RNA
ISOLATION
UND
RT-PCR
MIT
CSK
UND
SF-ENTHALTENDEN
HYDROGELEN
.
24
3.8.1.
KULTUR
DER
CSK
UND
SF
INNERHALB
DES
HYDROGELS
.
24
3.8.2. RNA
ISOLATION
AUS
CSK
UND
SF-ENTHALTENDEN
GELPROBEN
.
24
3.8.3.
RT-PCR
DER
GELPROBEN
.
25
3.8.3.1.
AUSWERTUNG
DER
GELPROBEN
MITTELS
RT-PCR
.
25
3.9.
STATISTISCHE
AUSWERTUNG
.
25
4.
ERGEBNISSE
.
27
4.1. ISOLATION
UND
KULTUR
VON
CSK
UND
SF
.
27
4.2.
IMMUNHISTOCHEMISCHE
CHARAKTERISIERUNG
VON
CSK
UND
SF
IN
2D
KULTUR
.
27
4.3.
ERGEBNISSE
DER
RT-PCR
INNERHALB
DER
2D
ZELLKULTUR
.
28
4.4.
AUSTESTUNG
UND
WAHL
DER
VERSCHIEDENEN
HYDROGELE
.
31
4.4.1.
AUSSAAT
DER
CSK
AUF
HYDROGELEN
(2D
KULTUR)
.
31
4.5.
3D
DRUCK
EINES
HORNHAUTMODELLS
MITTELS
CSK
ENTHALTENDEN
HYDROGELEN
.
33
4.5.1.
ENTWURF
UND
SCHNITT
DES
3D
HORNHAUT
MODELLS
.
33
4.5.2.
UEBERLEBEN
VON
CSK
NACH
3D
DRUCK
.
33
4.5.3.
IMMUNHISTOCHEMISCHE
UNTERSUCHUNG
DES
ZELLPHAENOTYPS
NACH
3D
DRUCK
36
4.5.4.
VERGLEICH
DER
GENEXPRESSION
VON
CSK
MIT
SF
MITTELS
RT-PCR
INNERHALB
DER
3D
KULTUR
.
36
5.
DISKUSSION
.
39
5.1.
VERHALTEN
VON
CSK
UND
SF
IN
2D
UND
3D
KULTUR
.
39
5.2.
EINFLUSS
DES
HYDROGELS
AUF
CSK
UND
SF
.
41
5.3.
3D
DRUCK
VON
HORNHAUTMODELLEN
.
42
6.
ZUSAMMENFASSUNG
.
49
6.1.
DEUTSCH
.
49
6.2.
ENGLISH
.
50
7.
LITERATURVERZEICHNIS
.
51
8.
DANKSAGUNG
.
55
9.
ERKLAERUNG
ZUR
DATENAUFBEWAHRUNG
.
57
10.
ERKLAERUNG
UEBER
DEN
EIGENANTEIL
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59
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