Untersuchungen zum "Homing"-Verhalten autologer T-Lymphozyten in der menschlichen Plazenta:
Gespeichert in:
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| Format: | Abschlussarbeit Buch |
| Sprache: | German |
| Veröffentlicht: |
Jena
[2021]
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| Beschreibung: | VI, 94 Blätter Illustrationen. Diagramme 30 cm |
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|---|---|
| adam_text | INHALTSVERZEICHNIS
INHALTSVERZEICHNIS
.............................................................................................................
III
ABKUERZUNGSVERZEICHNIS......................................................................................................
V
1
ZUSAMMENFASSUNG
............................................................................................................
1
2
EINLEITUNG
.........................................................................................................................
3
2.1
DIE
PLAZENTA
...............................................................................................................
3
2.1.1
DIE
ENTSTEHUNG
DER
PLAZENTA
...............................................................................
3
2.1.2
DIE
REIFE
PLAZENTA
...............................................................................................
5
2.2
DAS
IMMUNSYSTEM
.....................................................................................................
6
2.2.1
DAS
IMMUNSYSTEM
IN
DER
SCHWANGERSCHAFT........................................................
6
2.2.2
T-ZELLEN
IM
KONTEXT
DES
IMMUNSYSTEMS
...........................................................
9
2.2.3
A/SS-T-ZELLEN
-
ENTSTEHUNG
...............................................................................
10
2.2.4
A/SS-T-ZELLEN
-
AKTIVIERUNG
..............................................................................
11
2.2.5
CD4
+
UND
CD8
+
EFFEKTOR-T-ZELLEN,
GEDAECHTNIS-ZELLEN....................................
11
2.3
MICROCHIMERISMUS
....................................................................................................
13
2.4
HORNING
.....................................................................................................................
14
2.5
PLAZENTAPERFUSION
UND
SCHRAEGE
EBENE
...................................................................
15
3
ZIEL
DER
ARBEIT
................................................................................................................
16
4
MATERIAL
UND
METHODEN
.................................................................................................
18
4.1
MATERIALIEN
................................................................................................................
18
4.1.1
TECHNISCHE
MATERIALIEN
....................................................................................
18
4.1.2
PLAZENTAGEWEBE
...............................................................................................
24
4.2
VERSUCHSABLAUF
-
ZUSAMMENFASSUNG
.......................................................................
24
4.3
GEWINNUNG
UND
VORBEREITUNG
DER
PBMC
FUER
DIE
PLAZENTAPERFUSION
.......................
25
4.3.1
BLUTENTNAHME
UND
ISOLIERUNG
DER
PBMC
.........................................................
25
4.3.2
BESTIMMUNG
DER
PBMC-ZELLZAHL
MITTELS
NEUBAUER-ZAEHLKAMMER...................
25
4.3.3
FAERBUNG
DER
PBMC
MIT
CELLTRACKERYY
GREEN
.................................................
26
4.4
UNTERSUCHUNG
DER
PBMC
MITTELS
DER
DURCHFLUSSZYTOMETRIE
....................................
26
4.5
DIE
EX
VIVO
PLAZENTAPERFUSION
..................................................................................
28
4.6
HERSTELLUNG
VON
PLAZENTA-GEWEBESCHNITTEN
AUF
OBJEKTTRAEGERN
................................
30
4.7
IMMUNHISTOCHEMISCHE
PRIMAER
UND
SEKUNDAERFARBUNG
VON
CD3
..............................
31
4.8
FLUORESZENZMIKROSKOPISCHE
AUSWERTUNG
DER
PROBEN
..............................................
32
4.9
DATENAUSWERTUNG
.....................................................................................................
32
5
ERGEBNISSE
......................................................................................................................
34
5.1
DIE
FLUORESZENZMIKROSKOPISCHE
ABBILDUNG..............................................................
34
5.1.1
T-ZELLEN
IN
DEN
GEWEBEPRAEPARATEN
..................................................................
34
5.1.2
EXEMPLARISCHE
INTERPRETATION
DER
ABBILDUNG
16
..............................................
36
5.1.3
PERIPHERE
T-ZELLEN
UND
PLAZENTARE
T-ZELLEN
IM
INTERVILLOESEN
RAUM
...............
38
5.2
PERIPHERE
T-ZELLEN
IN
DIVERSEN
POSITIONEN
AN
/
IN
PLAZENTAREN
STRUKTUREN
...............
39
5.2.1
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
OHNE
GEWEBEKONTAKT
......................................................
39
5.2.2
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
AM
PLAZENTAGEWEBE
ADHAERIERT
.........................................
40
5.2.3
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
AN
ENGSTELLEN
IM
PLAZENTAGEWEBE
..................................
41
5.2.4
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
MIT
GEWEBEBRUECKEN
AM
PLAZENTAGEWEBE
.......................
42
5.2.5
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
MIT
ZELLAUSZIEHUNGEN
.....................................................
43
5.2.6
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
GEWEBEINVASIV
................................................................
44
5.2.7
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
INNERHALB
FETALER
GELASSE
................................................
45
5.2.8
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
INNERHALB
KERNLOSER
PLAZENTASTRUKTUREN
.........................
46
5.3
QUANTITATIVE
AUSWERTUNG
.........................................................................................
47
5.3.1
DURCHFLUSSZYTOMETRISCHE
ANALYSE
DER
PBMC
..................................................
47
5.3.2
FLUORESZENZMIKROSKOPISCHE
AUSZAEHLUNG
DER
PBMC
IM
PLAZENTAGEWEBE
..........................................................................................
48
6
DISKUSSION
......................................................................................................................
52
6.1
ERGEBNISDISKUSSION
..................................................................................................
52
6.1.1
HYPOTHESE
1
.....................................................................................................
54
6.1.2
HYPOTHESE
2
.....................................................................................................
55
6.1.3
HYPOTHESE
3
.....................................................................................................
55
6.1.4
HYPOTHESE
4
.....................................................................................................
56
6.1.5
HYPOTHESE
5
.....................................................................................................
57
6.1.6
HYPOTHESE
6
.....................................................................................................
65
6.2
METHODENDISKUSSION
................................................................................................
69
6.3
SCHLUSSFOLGERUNGEN..................................................................................................
72
LITERATUR
UND
QUELLVERZEICHNIS
......................................................................................
74
ANHANG
..............................................................................................................................
84
ANHANG
I:
TABELLENVERZEICHNIS
..............................................................................
84
ANHANG
II:
ABBILDUNGSVERZEICHNIS..........................................................................
84
ANHANG
III:
TABELLE:
DURCHFLUSSZYTOMETRISCHE
MESSUNG
...........................................
88
ANHANG
IV:
TABELLE:
FLUORESZENZMIKROSKOPISCHE
ZAEHLUNG
......................................
89
ANHANG
V
:
PROBANDENINFORMATION...........................................................................
90
ANHANG
VI
:
EINVERSTAENDNI
SERKLAERUNG
.......................................................................
91
ANHANG
VII:
LEBENSLAUF
.............................................................................................
92
ANHANG
VIII:
EHRENWOERTLICHE
ERKLAERUNG
.....................................................................
93
ANHANG
IX:
DANKSAGUNG...........................................................................................
94
|
| adam_txt |
INHALTSVERZEICHNIS
INHALTSVERZEICHNIS
.
III
ABKUERZUNGSVERZEICHNIS.
V
1
ZUSAMMENFASSUNG
.
1
2
EINLEITUNG
.
3
2.1
DIE
PLAZENTA
.
3
2.1.1
DIE
ENTSTEHUNG
DER
PLAZENTA
.
3
2.1.2
DIE
REIFE
PLAZENTA
.
5
2.2
DAS
IMMUNSYSTEM
.
6
2.2.1
DAS
IMMUNSYSTEM
IN
DER
SCHWANGERSCHAFT.
6
2.2.2
T-ZELLEN
IM
KONTEXT
DES
IMMUNSYSTEMS
.
9
2.2.3
A/SS-T-ZELLEN
-
ENTSTEHUNG
.
10
2.2.4
A/SS-T-ZELLEN
-
AKTIVIERUNG
.
11
2.2.5
CD4
+
UND
CD8
+
EFFEKTOR-T-ZELLEN,
GEDAECHTNIS-ZELLEN.
11
2.3
MICROCHIMERISMUS
.
13
2.4
HORNING
.
14
2.5
PLAZENTAPERFUSION
UND
"SCHRAEGE
EBENE"
.
15
3
ZIEL
DER
ARBEIT
.
16
4
MATERIAL
UND
METHODEN
.
18
4.1
MATERIALIEN
.
18
4.1.1
TECHNISCHE
MATERIALIEN
.
18
4.1.2
PLAZENTAGEWEBE
.
24
4.2
VERSUCHSABLAUF
-
ZUSAMMENFASSUNG
.
24
4.3
GEWINNUNG
UND
VORBEREITUNG
DER
PBMC
FUER
DIE
PLAZENTAPERFUSION
.
25
4.3.1
BLUTENTNAHME
UND
ISOLIERUNG
DER
PBMC
.
25
4.3.2
BESTIMMUNG
DER
PBMC-ZELLZAHL
MITTELS
NEUBAUER-ZAEHLKAMMER.
25
4.3.3
FAERBUNG
DER
PBMC
MIT
CELLTRACKERYY
GREEN
.
26
4.4
UNTERSUCHUNG
DER
PBMC
MITTELS
DER
DURCHFLUSSZYTOMETRIE
.
26
4.5
DIE
EX
VIVO
PLAZENTAPERFUSION
.
28
4.6
HERSTELLUNG
VON
PLAZENTA-GEWEBESCHNITTEN
AUF
OBJEKTTRAEGERN
.
30
4.7
IMMUNHISTOCHEMISCHE
PRIMAER
UND
SEKUNDAERFARBUNG
VON
CD3
.
31
4.8
FLUORESZENZMIKROSKOPISCHE
AUSWERTUNG
DER
PROBEN
.
32
4.9
DATENAUSWERTUNG
.
32
5
ERGEBNISSE
.
34
5.1
DIE
FLUORESZENZMIKROSKOPISCHE
ABBILDUNG.
34
5.1.1
T-ZELLEN
IN
DEN
GEWEBEPRAEPARATEN
.
34
5.1.2
EXEMPLARISCHE
INTERPRETATION
DER
ABBILDUNG
16
.
36
5.1.3
PERIPHERE
T-ZELLEN
UND
PLAZENTARE
T-ZELLEN
IM
INTERVILLOESEN
RAUM
.
38
5.2
PERIPHERE
T-ZELLEN
IN
DIVERSEN
POSITIONEN
AN
/
IN
PLAZENTAREN
STRUKTUREN
.
39
5.2.1
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
OHNE
GEWEBEKONTAKT
.
39
5.2.2
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
AM
PLAZENTAGEWEBE
ADHAERIERT
.
40
5.2.3
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
AN
ENGSTELLEN
IM
PLAZENTAGEWEBE
.
41
5.2.4
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
MIT
GEWEBEBRUECKEN
AM
PLAZENTAGEWEBE
.
42
5.2.5
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
MIT
ZELLAUSZIEHUNGEN
.
43
5.2.6
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
GEWEBEINVASIV
.
44
5.2.7
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
INNERHALB
FETALER
GELASSE
.
45
5.2.8
PERIPHERE
T-ZELLEN
-
INNERHALB
KERNLOSER
PLAZENTASTRUKTUREN
.
46
5.3
QUANTITATIVE
AUSWERTUNG
.
47
5.3.1
DURCHFLUSSZYTOMETRISCHE
ANALYSE
DER
PBMC
.
47
5.3.2
FLUORESZENZMIKROSKOPISCHE
AUSZAEHLUNG
DER
PBMC
IM
PLAZENTAGEWEBE
.
48
6
DISKUSSION
.
52
6.1
ERGEBNISDISKUSSION
.
52
6.1.1
HYPOTHESE
1
.
54
6.1.2
HYPOTHESE
2
.
55
6.1.3
HYPOTHESE
3
.
55
6.1.4
HYPOTHESE
4
.
56
6.1.5
HYPOTHESE
5
.
57
6.1.6
HYPOTHESE
6
.
65
6.2
METHODENDISKUSSION
.
69
6.3
SCHLUSSFOLGERUNGEN.
72
LITERATUR
UND
QUELLVERZEICHNIS
.
74
ANHANG
.
84
ANHANG
I:
TABELLENVERZEICHNIS
.
84
ANHANG
II:
ABBILDUNGSVERZEICHNIS.
84
ANHANG
III:
TABELLE:
DURCHFLUSSZYTOMETRISCHE
MESSUNG
.
88
ANHANG
IV:
TABELLE:
FLUORESZENZMIKROSKOPISCHE
ZAEHLUNG
.
89
ANHANG
V
:
PROBANDENINFORMATION.
90
ANHANG
VI
:
EINVERSTAENDNI
SERKLAERUNG
.
91
ANHANG
VII:
LEBENSLAUF
.
92
ANHANG
VIII:
EHRENWOERTLICHE
ERKLAERUNG
.
93
ANHANG
IX:
DANKSAGUNG.
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