Multimodale Analysen von Lipiden, Lipid-Metaboliten und relevanten Enzymen im Gehirn der Maus unter dem Einfluss von ω-3-Fettsäuren während systemischer Entzündung:
Gespeichert in:
1. Verfasser: | |
---|---|
Format: | Abschlussarbeit Buch |
Sprache: | German |
Veröffentlicht: |
Gießen
VVB Laufersweiler Verlag
2021
|
Ausgabe: | 1. Auflage |
Schriftenreihe: | Edition Scientifique
|
Schlagworte: | |
Online-Zugang: | Inhaltsverzeichnis |
Beschreibung: | IX, 296 Seiten Illustrationen, Diagramme 21 cm x 14.8 cm, 400 g |
ISBN: | 9783835969810 3835969811 |
Internformat
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adam_text | 1
EINLEITUNG
..........................................................................................................
1
1.1
DIE
SYSTEMISCHE
ENTZUENDUNGSREAKTION
............................................................................
1
1.2
ZENTRALNERVOES
KONTROLLIERTE
KRANKHEITSSYMPTOME
.........................................................
4
1.3
ENTZUENDUNGSKASKADE
DES
HUMORALEN
ANGEBORENEN
IMMUNSYSTEMS
.............................
4
1.3.1
ENTZUENDUNGSZELLEN
...................................................................................................
4
1.3.2
SIGNALWEGE
UND
ZYTOKINE
IN
DER
ENTZUENDUNGSKASKADE
..........................................
5
1.3.2.1
NFKB-SIGNALWEG
................................................................................................
6
1.3.2.2
7
1.3.2.3
IL-LSS
...................................................................................................................
7
1.3.2.4
IL-6
UND
STAT3-SIGNALWEG
.............................................................................
7
1.3.2.5
INTERLEUKIN
10
.....................................................................................................
8
1.3.2.6
8
1.3.2.7
NFIL-6
...............................................................................................................
8
1.3.3
LIPIDMEDIATORENSYNTHESE
IN
DER
ENTZUENDUNGSKASKADE
..........................................
9
1.3.3.1
UNGESAETTIGTE
FETTSAEUREN
..................................................................................
11
1.3.3.2
GLYCEROPHOSPHOLIPIDE:
FETTSAEURESPEICHER
IN
DER
ZELLMEMBRAN
.....................
11
1.3.3.3
EICOSANOIDSYNTHESE
IN
DER
ENTZUENDUNGSKASKADE
...........................................
12
1.4
ENTZUENDUNGSAUFLOESUNG
-
LIPIDMEDIATOREN
ALS
WEGBEREITER
.............................................
15
1.4.1
(OE-6-LIPIDMEDIATOREN
DER
ENTZUENDUNGSAUFLOESUNG
.................................................
16
1.4.2
O-3
-LIPIDMEDIATOREN
...............................................................................................
17
1.5
KOMMUNIKATIONSWEGE
ZWISCHEN
PERIPHERIE
UND
GEHIRN
............................................
19
1.5.1
HUMORALE
YYIMMUNE-TO-BRAIN
KOMMUNIKATION
....................................................
21
1.5.1.1
DAS
ORGANUM
VASCULOSUM
LAMINAE
TERMINALIS
.............................................
22
1.6
FIEBER
.............................................................................................................................
23
1.6.1
EXOGENE
UND
ENDOGENE
PYROGENE
........................................................................
25
1.6.2
TRANSPORT
VON
PROSTAGLANDIN
E2
UEBER
DIE
BLUTHIRNSCHRANKE
...............................27
1.6.3
DAS
OVLT
IN
DER
FIEBERENTSTEHUNG
.....................................................................27
1.6.4
DE
NOVO
SYNTHESE
VON
PGE2
IM
ENDOTHEL
DER
POA
...........................................
28
1.7
HYPOTHERMIE
...................................................................................................................
29
1.8
STRESS
UND
THERMOREGULATION
.........................................................................................
31
1.9
EINFLUSS
VON
CO-3
-FETTSAEUREN
AUF
INFLAMMATION
UND
NEUROINFLAMMATION
..................
32
1.10
V
ERSUCHSMODELLE
.........................................................................................................
34
1.10.1
ANREICHERUNG
MIT
CO-3-FETTSAEUREN:
DIE
FAT-1
-MAUS
ALS
TIERMODELL
.......................
34
1.10.2
CO-3-FETTSAEURE-DEFIZIENTE
DIAET
................................................................................
36
1.10.3
LIPOPOLYSACCHARID-INDUZIERTE
ENTZUENDUNG
..........................................................
36
1.10.4
STRESS-INDUZIERTE
THERMOREGULATION
YYNOVEL
ENVIRONMENT
STRESS
........................
38
1.11
FRAGESTELLUNG
UND
ZIELSETZUNG
...................................................................................
39
2
MATERIAL
UND
METHODEN
................................................................................
43
2.1
MATERIALIEN
......................................................................................................................
43
2.1.1
V
ERSUCHSTIERE
...........................................................................................................46
2.1.1.1
MAUSSTAEMME
....................................................................................................
46
2.1.1.2
HALTUNG
UND
ZUCHT
DER
MAEUSE
........................................................................
47
2.1.1.3
SENTINEL
MAEUSE
UND
GESUNDHEITSMONITORING
................................................
48
2.1.1.4
GENOTYPISIERUNG
DER
FAT
1
-MAEUSE
..................................................................
49
2.2
IN
VIVO
MODELLE
...............................................................................................................
51
2.2.1
GRUNDLAGEN
...............................................................................................................
51
2.2.2
HALTUNG
DER
VERSUCHSTIERE
.......................................................................................
53
2.2.3
INTRAABDOMINALE
SENDERIMPLANTATION
MITTELS
LAPAROTOMIE
...................................
54
2.2.3.1
NACHSORGE
UND
REKONVALESZENZ
.....................................................................
57
2.2.4
PHYSIOLOGISCHE
DATEN
.............................................................................................
57
2.2.5
YYNOVEL
ENVIRONMENT
STRESS
VERSUCH
.....................................................................
58
2.2.6
STIMULATION
-
INDUKTION
EINER
SYSTEMISCHEN
ENTZUENDUNG
......................................
58
2.2.7
PERFUSION
ZUR
GEWEBEPROBENGEWINNUNG
...............................................................
59
2.3
BIO-MOLEKULARE
METHODEN
.............................................................................................
60
2.3.1
LEUKOZYTENDIFFERENZIERUNG
IN
BLUTAUSSTRICHEN
.....................................................
60
2.3.2
BIOASSAYS
..................................................................................................................
61
2.3.3
IMMUNASSAYS
...........................................................................................................
64
2.3.4
RELATIVE
QUANTIFIZIERUNG
MITTELS
YYREAL
TIME
POLYMERASE-KETTENREAKTION
........
68
2.3.4.1
DAS
PRINZIP
DER
RELATIVEN
QUANTIFIZIERUNG
MITTELS
REAL
TIME
POLYMERASE
KETTENREAKTION
..................................................................................................................
68
2.3.4.2
EXTRAKTION
DER
RNA
AUS
HYPOTHALAMUSGEWEBEPROBEN
...............................
69
2.3.4.3
DIE
REAL
TIME
POLYMERASE-KETTENREAKTION
..................................................
72
2.3.4.4
ERMITTLUNG
VON
ENDOGENEN
KONTROLLEN:
HOUSEKEEPING
GEN
......................
73
2.3.4.5
RELATIVE
QUANTIFIZIERUNG
MITTELS
DER
26AACF)
METHODE
...................................
74
2.3.5
IMMUNFLUORESZENZHISTOCHEMIE
VON
GEHIRNSCHNITTEN
...........................................
75
2.3.5.1
PRINZIP
DER
IMMUNFLUORESZENZHISTOCHEMIE
...................................................
76
2.3.5.2
EINSATZ
DER
IMMUNFLUORESZENZHISTOCHEMIE
FUER
OVLT-SCHNITTE
NACH
MASSENSPEKTROMETRISCHEN
MESSUNGEN
.............................................................................
77
2.4
MASSENSPEKTROMETRISCHE
VERFAHREN
.............................................................................
80
2.4.1
DAS
PRINZIP
DES
Q
EXACTIVE
HYBRID
QUADRUPOLE-ORBITRAP
MASSENSPEKTROMETERS
.
...................................................................................................................
80
2.4.2
UMKEHRPHASEN-ULTRA-HOCHLEISTUNGS-FLUESSIGCHROMATOGRAPHIE
MIT
ELEKTROSPRAY
IONISATION
UND
GEKOPPELTER
TANDEM-MASSENSPEKTROMETRIE
(UHPLC-ESI-MS/MS)
......
83
2.4.2.1
PROBENAUFBEREITUNG
FUER
YYUNTARGETED
-OMICS
..............................................
86
2.4.2.2
PROBENAUFBEREITUNG
UND
FESTPHASENEXTRAKTION
DER
EICOSANOIDE
................
88
2.4.2.3
DAS
PRINZIP
DER
ULTRA-HOCHLEISTUNGS-FLUESSIGCHROMATOGRAPHIE
...................90
2.4.2.4
DAS
PRINZIP
DER
ELEKTROSPRAY-IONISATION
........................................................
91
2.4.2.5
MESSUNG
MIT
DEM
Q
EXACTIVE
HYBRID
QUADRUPOLE-ORBITRAP
MASSENSPEKTROMETERS
FUER
LCMS/MS
..............................................................................
92
2.4.2.6
ANALYSE
VON
LIPIDEN
IN
DEN
YYUNTARGETED
LIPIDOMICS-MESSUNGEN
.............
93
2.4.2.7
ANALYSE
DER
YYTARGETED
EICOSANOIDMESSUNGEN
.............................................
96
2.4.3
YYMATRIX
ASSISTED
LASER
DESORPTION/IONIZATION
MASSENSPEKTROMETRIE-YYIMAGING
UND
TANDEM-MASSENSPEKTROMETRIE
-
MALDI-MSI
UND
MALDI-MS/MS
.......................
96
2.4.3.1
PROBENAUFBEREITUNG
DER
GEHIRNE
FUER
MALDI-MSI
.....................................
98
2.4.3.2
MATRIX
ASSISTIERTE
LASER
DESORPTION/IONISATION
............................................
101
2.4.3.3
MASSENSPEKTROMETRISCHE
MESSUNGEN
VON
GEHIRNSCHNITTEN
DES
OVLT
MITTELS
MALDI-MSI
....................................................................................................................
102
2.4.3.4
MALDI-MS/MS:
TANDEM-MASSENSPEKTROMETRIE
.......................................
103
2.5
STATISTIK
UND
AUSWERTUNG
..............................................................................................
103
2.5.1
STUDIENDESIGN
........................................................................................................
104
2.5.2
AUSWERTUNG
DER
KOERPERKERNTEMPERATUR
UND
LOKOMOTORISCHEN
AKTIVITAET
........
105
2.5.3
AUSWERTUNG
DES
KOERPERGEWICHTS,
DER
FUTTER
UND
WASSERAUFNAHME
...............
106
2.5.4
AUSWERTUNG
DER
LEUKOZYTENDIFFERENZIERUNG
IN
BLUTAUSSTRICHEN
........................
107
2.5.5
AUSWERTUNG
DER
PLASMAZYTOKINE
MIT
BIOASSAYS
UND
IMMUNASSAYS
SOWIE
AUSWERTUNG
DER
IMMUNASSAYS
AUS
LEBERHOMOGENATEN
....................................................
107
2.5.6
AUSWERTUNG
DER
QPCR
GENEXPRESSION
................................................................
107
2.5.7
AUSWERTUNG
DER
IMMUNFLUORESZENZHISTOCHEMIE
.................................................
108
2.5.8
AUSWERTUNG
DER
YYTARGETED
LCMS/MS
EICOSANOIDE
..........................................
108
2.5.9
AUSWERTUNG
DER
LCMS/MS
YYUNTARGETED
LIPIDOMICS
.......................................
108
2.5.10
AUSWERTUNG
DER
MALDI-MSI-MESSUNGEN
.........................................................
109
3
ERGEBNISSE
.....................................................................................................
110
3.1
ENTWICKLUNG
VON
ANALYSE
VERFAHREN
FUER
MALDI-MSI-DATEN
..................................
110
3.1.1
VERGLEICHBARKEIT
ZWISCHEN
DEN
VERSUCHEN/EINZELNEN
MESSUNGEN
....................
110
3.1.2
ERSTE
PEAK-IDENTIFIZIERUNG
MIT
METASPACE
..........................................................
111
3.1.3
NORMALISIERUNGSVERFAHREN
ZUR
DIREKTEN
VERGLEICHBARKEIT
..................................
112
3.1.3.1
BEWERTUNG
UND
AUSWAHL
EINES
NORMALISIERUNGSVERFAHRENS
........................
114
3.1.4
NORMALISIERUNG
GEGEN
PHOSPHATIDYLCHOLIN
(34:1)
[M+K]
+
-
EINE
ENDOGENE
NORMALISIERUNG
.....................................................................................................................
115
3.1.5
SPEZIFISCHE
PHOSPHOLIPIDPROFILE
FUER
NEUROANATOMISCHE
REGIONEN
......................
118
3.1.6
YYREGION
OF
INTEREST
(ROI)
ANALYSE
FUER
DAS
OVLT
.............................................
119
3.1.7
STATISTISCHE
ANALYSE
DER
LIPIDE
AUS
MALDI-MSI
...............................................
124
3.2
IN
VIVO
MODELLE
SYSTEMISCHER
ENTZUENDUNG
.................................................................
126
3.2.1
KOERPERKERNTEMPERATUR
............................................................................................
126
3.2.1.1
TEMPERATURVERLAUF
IN
KONTROLLGRUPPEN
NACH
SALINE-INJEKTION
...................
126
3.2.1.2
TEMPERATURVERLAUF
NACH
NIEDRIGER
LPS-DOSIS
IN
W-3-FS-DEFIZIENTEN
TIEREN
.
.........................................................................................................................
127
3.2.1.3
TEMPERATURVERLAUF
NACH
HOHER
LPS-DOSIS
IN
O-3-FS-DEFIZIENTEN
TIEREN
128
3.2.1.4
TEMPERATURVERLAUF
NACH
HOHER
LPS-DOSIS
IN
CO-3
-FS-SUFFIZIENTEN
TIEREN
129
3.2.2
LOKOMOTORISCHE
AKTIVITAET
....................................................................................
132
3.2.2.1
AKTIVITAETSVERLAUF
IN
KONTROLLGRUPPEN
NACH
SALINE-INJEKTION
........................
132
3.2.2.2
AKTIVITAETSVERLAUF
NACH
NIEDRIGER
LPS-DOSIS
IN
O-3-FS-DEFIZIENTEN
TIEREN....
.........................................................................................................................
132
3.2.2.3
AKTIVITAETSVERLAUF
NACH
HOHER
LPS-DOSIS
IN
W-3-FS-DEFIZIENTEN
TIEREN
...
133
3.2.2.4
AKTIVITAETSVERLAUF
NACH
HOHER
LPS-DOSIS
IN
O-3-FS-SUFFIZIENTEN
TIEREN
..
133
3.2.3
KOERPERGEWICHT
.......................................................................................................
133
3.2.3.1
ENTWICKLUNG
DER
KOERPERGEWICHTE
UNTER
LPS-BEHANDLUNG
DER
O-3-FS
DEFIZIENTEN
TIERE
..............................................................................................................
134
3.2.3.2
ENTWICKLUNG
DER
KOERPERGEWICHTE
UNTER
LPS-BEHANDLUNG
DER
O-3-FS
SUFFIZIENTEN
TIERE
.....................................................................
134
3.2.4
FUTTER
UND
WASSERAUFNAHME
...............................................................................
134
3.2.4.1
ENTWICKLUNG
DER
FUTTERAUFNAHME
DER
(OE-3-FS-DEFIZIENTEN
TIERE
UNTER
LPS
BEHANDLUNG
......................................................................................................................
135
3.2.4.2
ENTWICKLUNG
DER
FUTTERAUFNAHME
DER
CO-3-FS-SUFFIZIENTEN
TIERE
UNTER
LPS
BEHANDLUNG
.....................................................................................................................
135
3.2.4.3
ENTWICKLUNG
DER
WASSERAUFNAHME
DER
CO-3-FS-DEFIZIENTEN
TIERE
UNTER
LPS
BEHANDLUNG
.....................................................................................................................
135
3.2.4.4
ENTWICKLUNG
DER
WASSERAUFNAHME
DER
CO-3-FS-SUFFIZIENTEN
TIERE
UNTER
LPS
BEHANDLUNG
......................................................................................................................
136
3.2.5
LEUKOZYTENDIFFERENZIERUNG
IN
PERIPHEREN
BLUTAUSSTRICHEN
................................
136
3.2.5.1
VERAENDERUNGEN
DER
LEUKOZYTENZUSAMMENSETZUNG
NACH
LPS-BEHANDLUNG
IN
O-3-FS-DEFIZIENTEN
TIEREN
..............................................................................................
136
3.2.5.2
VERAENDERUNGEN
DER
LEUKOZYTENZUSAMMENSETZUNG
NACH
LPS-BEHANDLUNG
IN
CO-3-FS-SUFFIZIENTEN
TIEREN
.............................................................................................
137
3.2.6
PLASMAZYTOKINE
AUS
BIOASSAYS
.............................................................................
138
3.2.6.1
MIT
BIOASSAYS
GEMESSENE
TUMORNEKROSEFAKTOR-A-KONZENTRATIONEN
IN
W-3
FS-SUFFIZIENTEN
MAEUSEN
...................................................................................................
138
3.2.6.2
MIT
BIOASSAYS
GEMESSENE
INTERLEUKIN-6-KONZENTRATIONEN
IN
W-3-FS
DEFIZIENTEN
MAEUSEN
.........................................................................................................
139
3.2.6.3
MIT
BIOASSAYS
GEMESSENE
INTERLEUKIN-6-KONZENTRATIONEN
IN
O-3-FS
SUFFIZIENTEN
MAEUSEN
........................................................................................................
139
3.2.7
PLASMAZYTOKINMESSUNGEN
MIT
IMMUNASSAYS
......................................................
139
3.2.7.1
MIT
IMMUNASSAYS
GEMESSENE
INTERLEUKIN-6-KONZENTRATIONEN
AUS
PLASMAPROBEN
...................................................................................................................
140
3.2.7.2
MIT
IMMUNASSAYS
GEMESSENE
TUMORNEKROSEFAKTOR-A-KONZENTRATIONEN
AUS
PLASMAPROBEN
...................................................................................................................
140
3.2.7.3
MIT
IMMUNASSAYS
GEMESSENE
INTERLEUKIN
ISS-KONZENTRATIONEN
AUS
PLASMAPROBEN
...................................................................................................................
140
3.2.7.4
MIT
IMMUNASSAYS
GEMESSENE
INTERLEUKIN
10-KONZENTRATIONEN
AUS
PLASMAPROBEN
...................................................................................................................
141
3.2.7.5
MIT
IMMUNASSAYS
GEMESSENE
INTERFERON-Y-KONZENTRATIONEN
AUS
PLASMAPROBEN
...................................................................................................................
141
3.2.8
QUANTIFIZIERUNG
DER
ZYTOKINE
AUS
LEBERHOMOGENATEN
MIT
IMMUNASSAYS
.......
142
3.2.9
GENEXPRESSION
WICHTIGER
MARKER
IM
HYPOTHALAMUS:
SEMIQUANTITATIVE
BESTIMMUNG
DER
YYMESSENGER
RNA
..................................................................................
143
3.2.9.1
GENEXPRESSION
VON
PRO-INFLAMMATORISCHEN
ZYTOKINEN
................................
144
3.2.9.2
GENEXPRESSION
DES
LIPOPOLYSACCHARID-REZEPTORS
TOLL-LIKE-REZEPTOR-4.
145
3.2.9.3
GENEXPRESSION
VON
TRANSKRIPTIONSFAKTOREN
FUER
INFLAMMATORISCHE
SIGNALWEGE
.........................................................................................................................
145
3.2.9.4
GENEXPRESSION
VON
ZELLMARKERN
....................................................................
147
3.2.9.5
GENEXPRESSION
VON
WICHTIGEN
ENZYMEN
DES
FETTSAEURESTOFFWECHSELS
UND
DER
FETTSAEUREFREISETZUNG
........................................................................................................
147
3.2.9.6
GENEXPRESSION
VON
WICHTIGEN
ENZYMEN
DES
ARACHIDONSAEURESTOFFWECHSELS
UND
DER
PROSTAGLANDINSYNTHESE
.......................................................................................
148
3.2.9.7
GENEXPRESSION
WICHTIGER
ENZYME
DES
O-3-LIPIDMEDIATORENSTOFFWECHSELS....
.........................................................................................................................
149
3.2.10
SEMIQUANTITATIVER
VERGLEICH
VON
LIPIDEN
IM
HYPOTHALAMUS
.............................
152
3.2.10.1
VERAENDERUNGEN
DER
FETTSAEUREZUSAMMENSETZUNG
VON
LIPIDEN
IN
FAT-1
VS.
WT-MAEUSEN
.....................................................................................................................
152
3.2.10.2
VERAENDERUNGEN
DER
LIPIDE
IM
HYPOTHALAMUS
IM
VERLAUF
DER
SYSTEMISCHEN
ENTZUENDUNG
.....................................................................................................................
154
3.2.10.2.1
FUENF
STUNDEN
POST
LPS-INJEKTION
VERAENDERTE
LIPIDE
IM
HYPOTHALAMUS
........
154
3.2.10.2.2
24
STUNDEN
POST
LPS-STIMULATION
VERAENDERTE
LIPIDE
IM
HYPOTHALAMUS
........
155
3.2.10.2.3
DISKRIMINANZANALYSE
DER
PARTIELLEN
KLEINSTEN
QUADRATE
...............................
159
3.2.10.3
BEEINFLUSSUNG
VON
FETTSAEURE
UND
LIPIDMEDIATORENKONZENTRATIONEN
IN
HYPOTHALAMUSPROBEN
DURCH
LPS-BEHANDLUNG
IN
FAT-1
VS.
WT-MAEUSEN
...................
163
3.2.11
IMMUNFLUORESZENZHISTOCHEMIE
VON
OVLT-SCHNITTEN
NACH
MALDI-MSI
.....
165
3.2.11.1
ENTZUENDUNGSMARKER
IM
OVLT
UND
DER
PRAEOPTISCHEN
REGION
NACH
LPS
BEHANDLUNG
......................................................................................................................
165
3.2.11.2
ZELLTYPENDIFFERENZIERUNG
IM
OVLT
.............................................................
166
3.2.11.3
KOLOKALISATION
VON
FLUORESZENZSIGNALEN
UND
MALDI-MSI
HEATMAPS
....
169
3.2.12
SEMIQUANTITATIVER
VERGLEICH
VON
LIPIDEN
IM
OVLT
.........................................
171
3.2.12.1
VERAENDERUNGEN
DER
OVLT-LIPIDE
FUENF
STUNDEN
NACH
LPS-INJ
EKTION
.....
171
3.2.12.2
VERAENDERUNGEN
DER
OVLT-LIPIDE
24
STUNDEN
NACH
LPS-STIMULATION
....
174
3.3
EINFLUSS
VON
CO-3-FETTSAEUREN
AUF
DIE
STRESSREAKTION
IM
NOVEL
ENVIRONMENT
STRESS
TEST
.......................................................................................................................................
176
3.3.1
STRESSINDUZIERTE
VERAENDERUNGEN
DER
KOERPERKERNTEMPERATUR
..............................
176
3.3.2
STRESSINDUZIERTE
VERAENDERUNGEN
DER
LOKOMOTORISCHEN
AKTIVITAET
........................
177
4
DISKUSSION
......................................................................................................
179
4.1
EINFLUSS
DER
W-3-FS-DEFIZIENTEN
DIAET
AUF
DEN
VERLAUF
SYSTEMISCHER
ENTZUENDUNGEN
....
.......................................................................................................................................
179
4.2
EVALUATION
DER
CO-3-FS-ANREICHERUNG
IN
CO-3-FS-SUFFIZIENTEN
FAT-1-MAEUSEN
..........
180
4.3
INFLAMMATION
UND
NEUROINFLAMMATION
UNTER
DEM
EINFLUSS
VON
CO-3-FETTSAEUREN
IN
CO-3
SUFFIZIENTEN
MAEUSEN
................................................................................................................
181
4.3.1
VERAENDERUNGEN
DER
PERIPHEREN/SYSTEMISCHEN
ENTZUENDUNGSREAKTION
IN
FAT-1
MAEUSEN
................................................................................................................................
181
4.3.2
BEWERTUNG
DER
PERIPHEREN
ENTZUENDUNG
IN
FAT-1-MAEUSEN
.........................................
184
4.3.3
EINFLUSS
AUF
DIE
EXPRESSION
VON
INFLAMMATORISCHEN
MARKERN
IM
HYPOTHALAMUS..
.................................................................................................................
185
4.3.4
BEWERTUNG
DER
NEUROINFLAMMATION
IN
FAT-1
VS.
WT-MAEUSEN
WAEHREND
LPS
INDUZIERTER
SYSTEMISCHER
ENTZUENDUNG
................................................................................
188
4.3.5
BEEINFLUSSUNG
DES
ARACHIDONSAEURE
UND
EICOSANOIDSTOFFWECHSEL
IN
FAT-1-VS.
WT
MAEUSEN
...............................................................................................................................
190
4.3.6
BEWERTUNG
DES
EICOSANOIDSTOFFWECHSELS
IN
FAT-1
VS.
WT-MAEUSEN
..................
194
4.3.7
CO-3-FETTSAEUREN,
EICOSANOIDE
UND
DOCOSANOIDE
IN
FAT-1-MAEUSEN
VS.
WT-MAEUSEN
................................................................................................................................
195
4.3.8
BEWERTUNG
DER
BILDUNG
VON
CO-3-FS-METABOLITEN
................................................
198
4.3.9
TLR4
IN
FAT-1-MAEUSEN
............................................................................................
199
4.3.10
VERAENDERUNGEN
DES
ENDOCANNABINOIDSYSTEMS
....................................................
200
4.3.11
EINFLUSS
EINZELNER
LIPIDE
UND
LIPIDKLASSEN
AUF
NEUROINFLAMMATION
.................202
4.3.11.1
VERAENDERTE
GLYCEROPHOSPHOLIPIDE
IN
FAT-1-MAEUSEN
.....................................202
4.3.11.2
PLASMALOGENE
..................................................................................................
204
4.3.11.3
SPHINGOLIPIDE
..................................................................................................
205
4.3.11.4
ACYLGLYCERINE
.................................................................................................
206
4.3.11.5
ACYLCARNITINE
...................................................................................................208
4.3.12
LIPIDE
ALS
INFLAMMATIONSMARKER
.........................................................................
209
4.3.13
BEWERTUNG
DER
LIPIDOMICS
WAEHREND
SYSTEMISCHER
ENTZUENDUNGEN
UND
IN
FAT
1
-
VS.
WT-MAEUSEN
.........................................................................................................................
212
4.4
YYSICKNESS
BEHAVIOUR
....................................................................................................
215
4.5
VERAENDERTE
FIEBERANTWORT
IN
FAT
1
-MAEUSEN
................................................................216
4.5.1
TUMORNEKROSEFAKTOR-A
ALS
PYROGEN
UND
KRYOGEN
..............................................
219
4.5.2
INTERLEUKIN
1
SS
ALS
PYROGEN
...................................................................................
220
4.5.3
INTERLEUKIN-6
ALS
PYROGEN
.....................................................................................222
4.5.4
PROSTAGLANDIN
E2
ALS
TERMINALES
PYROGEN
-
ALTERATION
DER
SYNTHESE
IM
HYPOTHALAMUS
VON
FAT-1
VS.
WT-MAEUSEN
........................................................................
223
4.5.5
BEWERTUNG
DER
HYPOTHERMIE
IN
FAT
1
-MAEUSEN
....................................................
225
4.5.6
ENDOCANNABINOIDE
UND
HYPOTHERMIE
...................................................................
226
4.5.7
TRANSIENTE-REZEPTOR-POTENTIAL-KATIONENKANAL-VT
ALS
ZENTRALER
MODULATOR
DER
LPS-INDUZIERTEN
THERMOREGULATION
...................................................................................
228
4.5.8
DIE
ROLLE
DES
OVLT
IN
DER
INFLAMMATORISCHEN
THERMOREGULATION
..................
230
4.5.9
TLR4,
THERMOREGULATION
UND
TLR4
IM
OVLT
.................................................
232
4.5.10
MIT
HYPOTHERMIE
ASSOZIIERTE
GLYCEROPHOSPHOLIPIDE
.................
234
4.6
STRESS-INDUZIERTE
HYPERTHERMIE
..................................................................................
235
4.7
THESENARTIGE
ZUSAMMENFASSUNG
DER
GEWONNENEN
ERKENNTNISSE
UND
DARAUS
ABGELEITETE
PERSPEKTIVEN
FUER
WEITERFUEHRENDE
UNTERSUCHUNGEN
................................................................
238
5
ZUSAMMENFASSUNG
........................................................................................
244
6
SUMMARY
.......................................................................................................
250
7
ABKUERZUNGSVERZEICHNIS
...............................................................................
255
8
LITERATURVERZEICHNIS
.....................................................................................
259
9
ANHANG
...........................................................................................................280
9.1
ZUSAETZLICHE
INFORMATIONEN
............................................................................................
280
9.2
PUBLIKATIONSLISTE
.............................................................................................................
293
9.3
DANKSAGUNG
...................................................................................................................
294
9.4
ERKLAERUNG
.......................................................................................................................
295
9.5
CURRICULUM
VITAE
............................................................................................................296
|
adam_txt |
1
EINLEITUNG
.
1
1.1
DIE
SYSTEMISCHE
ENTZUENDUNGSREAKTION
.
1
1.2
ZENTRALNERVOES
KONTROLLIERTE
KRANKHEITSSYMPTOME
.
4
1.3
ENTZUENDUNGSKASKADE
DES
HUMORALEN
ANGEBORENEN
IMMUNSYSTEMS
.
4
1.3.1
ENTZUENDUNGSZELLEN
.
4
1.3.2
SIGNALWEGE
UND
ZYTOKINE
IN
DER
ENTZUENDUNGSKASKADE
.
5
1.3.2.1
NFKB-SIGNALWEG
.
6
1.3.2.2
7
1.3.2.3
IL-LSS
.
7
1.3.2.4
IL-6
UND
STAT3-SIGNALWEG
.
7
1.3.2.5
INTERLEUKIN
10
.
8
1.3.2.6
8
1.3.2.7
NFIL-6
.
8
1.3.3
LIPIDMEDIATORENSYNTHESE
IN
DER
ENTZUENDUNGSKASKADE
.
9
1.3.3.1
UNGESAETTIGTE
FETTSAEUREN
.
11
1.3.3.2
GLYCEROPHOSPHOLIPIDE:
FETTSAEURESPEICHER
IN
DER
ZELLMEMBRAN
.
11
1.3.3.3
EICOSANOIDSYNTHESE
IN
DER
ENTZUENDUNGSKASKADE
.
12
1.4
ENTZUENDUNGSAUFLOESUNG
-
LIPIDMEDIATOREN
ALS
WEGBEREITER
.
15
1.4.1
(OE-6-LIPIDMEDIATOREN
DER
ENTZUENDUNGSAUFLOESUNG
.
16
1.4.2
O-3
-LIPIDMEDIATOREN
.
17
1.5
KOMMUNIKATIONSWEGE
ZWISCHEN
PERIPHERIE
UND
GEHIRN
.
19
1.5.1
HUMORALE
YYIMMUNE-TO-BRAIN
"
KOMMUNIKATION
.
21
1.5.1.1
DAS
ORGANUM
VASCULOSUM
LAMINAE
TERMINALIS
.
22
1.6
FIEBER
.
23
1.6.1
EXOGENE
UND
ENDOGENE
PYROGENE
.
25
1.6.2
TRANSPORT
VON
PROSTAGLANDIN
E2
UEBER
DIE
BLUTHIRNSCHRANKE
.27
1.6.3
DAS
OVLT
IN
DER
FIEBERENTSTEHUNG
.27
1.6.4
DE
NOVO
SYNTHESE
VON
PGE2
IM
ENDOTHEL
DER
POA
.
28
1.7
HYPOTHERMIE
.
29
1.8
STRESS
UND
THERMOREGULATION
.
31
1.9
EINFLUSS
VON
CO-3
-FETTSAEUREN
AUF
INFLAMMATION
UND
NEUROINFLAMMATION
.
32
1.10
V
ERSUCHSMODELLE
.
34
1.10.1
ANREICHERUNG
MIT
CO-3-FETTSAEUREN:
DIE
FAT-1
-MAUS
ALS
TIERMODELL
.
34
1.10.2
CO-3-FETTSAEURE-DEFIZIENTE
DIAET
.
36
1.10.3
LIPOPOLYSACCHARID-INDUZIERTE
ENTZUENDUNG
.
36
1.10.4
STRESS-INDUZIERTE
THERMOREGULATION
YYNOVEL
ENVIRONMENT
STRESS
"
.
38
1.11
FRAGESTELLUNG
UND
ZIELSETZUNG
.
39
2
MATERIAL
UND
METHODEN
.
43
2.1
MATERIALIEN
.
43
2.1.1
V
ERSUCHSTIERE
.46
2.1.1.1
MAUSSTAEMME
.
46
2.1.1.2
HALTUNG
UND
ZUCHT
DER
MAEUSE
.
47
2.1.1.3
SENTINEL
MAEUSE
UND
GESUNDHEITSMONITORING
.
48
2.1.1.4
GENOTYPISIERUNG
DER
FAT
1
-MAEUSE
.
49
2.2
IN
VIVO
MODELLE
.
51
2.2.1
GRUNDLAGEN
.
51
2.2.2
HALTUNG
DER
VERSUCHSTIERE
.
53
2.2.3
INTRAABDOMINALE
SENDERIMPLANTATION
MITTELS
LAPAROTOMIE
.
54
2.2.3.1
NACHSORGE
UND
REKONVALESZENZ
.
57
2.2.4
PHYSIOLOGISCHE
DATEN
.
57
2.2.5
YYNOVEL
ENVIRONMENT
STRESS
"
VERSUCH
.
58
2.2.6
STIMULATION
-
INDUKTION
EINER
SYSTEMISCHEN
ENTZUENDUNG
.
58
2.2.7
PERFUSION
ZUR
GEWEBEPROBENGEWINNUNG
.
59
2.3
BIO-MOLEKULARE
METHODEN
.
60
2.3.1
LEUKOZYTENDIFFERENZIERUNG
IN
BLUTAUSSTRICHEN
.
60
2.3.2
BIOASSAYS
.
61
2.3.3
IMMUNASSAYS
.
64
2.3.4
RELATIVE
QUANTIFIZIERUNG
MITTELS
YYREAL
TIME"
POLYMERASE-KETTENREAKTION
.
68
2.3.4.1
DAS
PRINZIP
DER
RELATIVEN
QUANTIFIZIERUNG
MITTELS
"REAL
TIME
"
POLYMERASE
KETTENREAKTION
.
68
2.3.4.2
EXTRAKTION
DER
RNA
AUS
HYPOTHALAMUSGEWEBEPROBEN
.
69
2.3.4.3
DIE
"REAL
TIME
"
POLYMERASE-KETTENREAKTION
.
72
2.3.4.4
ERMITTLUNG
VON
ENDOGENEN
KONTROLLEN:
"HOUSEKEEPING
GEN"
.
73
2.3.4.5
RELATIVE
QUANTIFIZIERUNG
MITTELS
DER
26AACF)
METHODE
.
74
2.3.5
IMMUNFLUORESZENZHISTOCHEMIE
VON
GEHIRNSCHNITTEN
.
75
2.3.5.1
PRINZIP
DER
IMMUNFLUORESZENZHISTOCHEMIE
.
76
2.3.5.2
EINSATZ
DER
IMMUNFLUORESZENZHISTOCHEMIE
FUER
OVLT-SCHNITTE
NACH
MASSENSPEKTROMETRISCHEN
MESSUNGEN
.
77
2.4
MASSENSPEKTROMETRISCHE
VERFAHREN
.
80
2.4.1
DAS
PRINZIP
DES
Q
EXACTIVE
HYBRID
QUADRUPOLE-ORBITRAP
MASSENSPEKTROMETERS
.
.
80
2.4.2
UMKEHRPHASEN-ULTRA-HOCHLEISTUNGS-FLUESSIGCHROMATOGRAPHIE
MIT
ELEKTROSPRAY
IONISATION
UND
GEKOPPELTER
TANDEM-MASSENSPEKTROMETRIE
(UHPLC-ESI-MS/MS)
.
83
2.4.2.1
PROBENAUFBEREITUNG
FUER
YYUNTARGETED
"
-OMICS
.
86
2.4.2.2
PROBENAUFBEREITUNG
UND
FESTPHASENEXTRAKTION
DER
EICOSANOIDE
.
88
2.4.2.3
DAS
PRINZIP
DER
ULTRA-HOCHLEISTUNGS-FLUESSIGCHROMATOGRAPHIE
.90
2.4.2.4
DAS
PRINZIP
DER
ELEKTROSPRAY-IONISATION
.
91
2.4.2.5
MESSUNG
MIT
DEM
Q
EXACTIVE
HYBRID
QUADRUPOLE-ORBITRAP
MASSENSPEKTROMETERS
FUER
LCMS/MS
.
92
2.4.2.6
ANALYSE
VON
LIPIDEN
IN
DEN
YYUNTARGETED
"
LIPIDOMICS-MESSUNGEN
.
93
2.4.2.7
ANALYSE
DER
YYTARGETED
"
EICOSANOIDMESSUNGEN
.
96
2.4.3
YYMATRIX
ASSISTED
LASER
DESORPTION/IONIZATION
"
MASSENSPEKTROMETRIE-YYIMAGING
"
UND
TANDEM-MASSENSPEKTROMETRIE
-
MALDI-MSI
UND
MALDI-MS/MS
.
96
2.4.3.1
PROBENAUFBEREITUNG
DER
GEHIRNE
FUER
MALDI-MSI
.
98
2.4.3.2
MATRIX
ASSISTIERTE
LASER
DESORPTION/IONISATION
.
101
2.4.3.3
MASSENSPEKTROMETRISCHE
MESSUNGEN
VON
GEHIRNSCHNITTEN
DES
OVLT
MITTELS
MALDI-MSI
.
102
2.4.3.4
MALDI-MS/MS:
TANDEM-MASSENSPEKTROMETRIE
.
103
2.5
STATISTIK
UND
AUSWERTUNG
.
103
2.5.1
STUDIENDESIGN
.
104
2.5.2
AUSWERTUNG
DER
KOERPERKERNTEMPERATUR
UND
LOKOMOTORISCHEN
AKTIVITAET
.
105
2.5.3
AUSWERTUNG
DES
KOERPERGEWICHTS,
DER
FUTTER
UND
WASSERAUFNAHME
.
106
2.5.4
AUSWERTUNG
DER
LEUKOZYTENDIFFERENZIERUNG
IN
BLUTAUSSTRICHEN
.
107
2.5.5
AUSWERTUNG
DER
PLASMAZYTOKINE
MIT
BIOASSAYS
UND
IMMUNASSAYS
SOWIE
AUSWERTUNG
DER
IMMUNASSAYS
AUS
LEBERHOMOGENATEN
.
107
2.5.6
AUSWERTUNG
DER
QPCR
GENEXPRESSION
.
107
2.5.7
AUSWERTUNG
DER
IMMUNFLUORESZENZHISTOCHEMIE
.
108
2.5.8
AUSWERTUNG
DER
YYTARGETED
"
LCMS/MS
EICOSANOIDE
.
108
2.5.9
AUSWERTUNG
DER
LCMS/MS
YYUNTARGETED
"
LIPIDOMICS
.
108
2.5.10
AUSWERTUNG
DER
MALDI-MSI-MESSUNGEN
.
109
3
ERGEBNISSE
.
110
3.1
ENTWICKLUNG
VON
ANALYSE
VERFAHREN
FUER
MALDI-MSI-DATEN
.
110
3.1.1
VERGLEICHBARKEIT
ZWISCHEN
DEN
VERSUCHEN/EINZELNEN
MESSUNGEN
.
110
3.1.2
ERSTE
PEAK-IDENTIFIZIERUNG
MIT
METASPACE
.
111
3.1.3
NORMALISIERUNGSVERFAHREN
ZUR
DIREKTEN
VERGLEICHBARKEIT
.
112
3.1.3.1
BEWERTUNG
UND
AUSWAHL
EINES
NORMALISIERUNGSVERFAHRENS
.
114
3.1.4
NORMALISIERUNG
GEGEN
PHOSPHATIDYLCHOLIN
(34:1)
[M+K]
+
-
EINE
ENDOGENE
NORMALISIERUNG
.
115
3.1.5
SPEZIFISCHE
PHOSPHOLIPIDPROFILE
FUER
NEUROANATOMISCHE
REGIONEN
.
118
3.1.6
YYREGION
OF
INTEREST
"
(ROI)
ANALYSE
FUER
DAS
OVLT
.
119
3.1.7
STATISTISCHE
ANALYSE
DER
LIPIDE
AUS
MALDI-MSI
.
124
3.2
IN
VIVO
MODELLE
SYSTEMISCHER
ENTZUENDUNG
.
126
3.2.1
KOERPERKERNTEMPERATUR
.
126
3.2.1.1
TEMPERATURVERLAUF
IN
KONTROLLGRUPPEN
NACH
SALINE-INJEKTION
.
126
3.2.1.2
TEMPERATURVERLAUF
NACH
NIEDRIGER
LPS-DOSIS
IN
W-3-FS-DEFIZIENTEN
TIEREN
.
.
127
3.2.1.3
TEMPERATURVERLAUF
NACH
HOHER
LPS-DOSIS
IN
O-3-FS-DEFIZIENTEN
TIEREN
128
3.2.1.4
TEMPERATURVERLAUF
NACH
HOHER
LPS-DOSIS
IN
CO-3
-FS-SUFFIZIENTEN
TIEREN
129
3.2.2
LOKOMOTORISCHE
AKTIVITAET
.
132
3.2.2.1
AKTIVITAETSVERLAUF
IN
KONTROLLGRUPPEN
NACH
SALINE-INJEKTION
.
132
3.2.2.2
AKTIVITAETSVERLAUF
NACH
NIEDRIGER
LPS-DOSIS
IN
O-3-FS-DEFIZIENTEN
TIEREN.
.
132
3.2.2.3
AKTIVITAETSVERLAUF
NACH
HOHER
LPS-DOSIS
IN
W-3-FS-DEFIZIENTEN
TIEREN
.
133
3.2.2.4
AKTIVITAETSVERLAUF
NACH
HOHER
LPS-DOSIS
IN
O-3-FS-SUFFIZIENTEN
TIEREN
.
133
3.2.3
KOERPERGEWICHT
.
133
3.2.3.1
ENTWICKLUNG
DER
KOERPERGEWICHTE
UNTER
LPS-BEHANDLUNG
DER
O-3-FS
DEFIZIENTEN
TIERE
.
134
3.2.3.2
ENTWICKLUNG
DER
KOERPERGEWICHTE
UNTER
LPS-BEHANDLUNG
DER
O-3-FS
SUFFIZIENTEN
TIERE
.
134
3.2.4
FUTTER
UND
WASSERAUFNAHME
.
134
3.2.4.1
ENTWICKLUNG
DER
FUTTERAUFNAHME
DER
(OE-3-FS-DEFIZIENTEN
TIERE
UNTER
LPS
BEHANDLUNG
.
135
3.2.4.2
ENTWICKLUNG
DER
FUTTERAUFNAHME
DER
CO-3-FS-SUFFIZIENTEN
TIERE
UNTER
LPS
BEHANDLUNG
.
135
3.2.4.3
ENTWICKLUNG
DER
WASSERAUFNAHME
DER
CO-3-FS-DEFIZIENTEN
TIERE
UNTER
LPS
BEHANDLUNG
.
135
3.2.4.4
ENTWICKLUNG
DER
WASSERAUFNAHME
DER
CO-3-FS-SUFFIZIENTEN
TIERE
UNTER
LPS
BEHANDLUNG
.
136
3.2.5
LEUKOZYTENDIFFERENZIERUNG
IN
PERIPHEREN
BLUTAUSSTRICHEN
.
136
3.2.5.1
VERAENDERUNGEN
DER
LEUKOZYTENZUSAMMENSETZUNG
NACH
LPS-BEHANDLUNG
IN
O-3-FS-DEFIZIENTEN
TIEREN
.
136
3.2.5.2
VERAENDERUNGEN
DER
LEUKOZYTENZUSAMMENSETZUNG
NACH
LPS-BEHANDLUNG
IN
CO-3-FS-SUFFIZIENTEN
TIEREN
.
137
3.2.6
PLASMAZYTOKINE
AUS
BIOASSAYS
.
138
3.2.6.1
MIT
BIOASSAYS
GEMESSENE
TUMORNEKROSEFAKTOR-A-KONZENTRATIONEN
IN
W-3
FS-SUFFIZIENTEN
MAEUSEN
.
138
3.2.6.2
MIT
BIOASSAYS
GEMESSENE
INTERLEUKIN-6-KONZENTRATIONEN
IN
W-3-FS
DEFIZIENTEN
MAEUSEN
.
139
3.2.6.3
MIT
BIOASSAYS
GEMESSENE
INTERLEUKIN-6-KONZENTRATIONEN
IN
O-3-FS
SUFFIZIENTEN
MAEUSEN
.
139
3.2.7
PLASMAZYTOKINMESSUNGEN
MIT
IMMUNASSAYS
.
139
3.2.7.1
MIT
IMMUNASSAYS
GEMESSENE
INTERLEUKIN-6-KONZENTRATIONEN
AUS
PLASMAPROBEN
.
140
3.2.7.2
MIT
IMMUNASSAYS
GEMESSENE
TUMORNEKROSEFAKTOR-A-KONZENTRATIONEN
AUS
PLASMAPROBEN
.
140
3.2.7.3
MIT
IMMUNASSAYS
GEMESSENE
INTERLEUKIN
ISS-KONZENTRATIONEN
AUS
PLASMAPROBEN
.
140
3.2.7.4
MIT
IMMUNASSAYS
GEMESSENE
INTERLEUKIN
10-KONZENTRATIONEN
AUS
PLASMAPROBEN
.
141
3.2.7.5
MIT
IMMUNASSAYS
GEMESSENE
INTERFERON-Y-KONZENTRATIONEN
AUS
PLASMAPROBEN
.
141
3.2.8
QUANTIFIZIERUNG
DER
ZYTOKINE
AUS
LEBERHOMOGENATEN
MIT
IMMUNASSAYS
.
142
3.2.9
GENEXPRESSION
WICHTIGER
MARKER
IM
HYPOTHALAMUS:
SEMIQUANTITATIVE
BESTIMMUNG
DER
YYMESSENGER"
RNA
.
143
3.2.9.1
GENEXPRESSION
VON
PRO-INFLAMMATORISCHEN
ZYTOKINEN
.
144
3.2.9.2
GENEXPRESSION
DES
LIPOPOLYSACCHARID-REZEPTORS
TOLL-LIKE-REZEPTOR-4.
145
3.2.9.3
GENEXPRESSION
VON
TRANSKRIPTIONSFAKTOREN
FUER
INFLAMMATORISCHE
SIGNALWEGE
.
145
3.2.9.4
GENEXPRESSION
VON
ZELLMARKERN
.
147
3.2.9.5
GENEXPRESSION
VON
WICHTIGEN
ENZYMEN
DES
FETTSAEURESTOFFWECHSELS
UND
DER
FETTSAEUREFREISETZUNG
.
147
3.2.9.6
GENEXPRESSION
VON
WICHTIGEN
ENZYMEN
DES
ARACHIDONSAEURESTOFFWECHSELS
UND
DER
PROSTAGLANDINSYNTHESE
.
148
3.2.9.7
GENEXPRESSION
WICHTIGER
ENZYME
DES
O-3-LIPIDMEDIATORENSTOFFWECHSELS.
.
149
3.2.10
SEMIQUANTITATIVER
VERGLEICH
VON
LIPIDEN
IM
HYPOTHALAMUS
.
152
3.2.10.1
VERAENDERUNGEN
DER
FETTSAEUREZUSAMMENSETZUNG
VON
LIPIDEN
IN
FAT-1
VS.
WT-MAEUSEN
.
152
3.2.10.2
VERAENDERUNGEN
DER
LIPIDE
IM
HYPOTHALAMUS
IM
VERLAUF
DER
SYSTEMISCHEN
ENTZUENDUNG
.
154
3.2.10.2.1
FUENF
STUNDEN
POST
LPS-INJEKTION
VERAENDERTE
LIPIDE
IM
HYPOTHALAMUS
.
154
3.2.10.2.2
24
STUNDEN
POST
LPS-STIMULATION
VERAENDERTE
LIPIDE
IM
HYPOTHALAMUS
.
155
3.2.10.2.3
DISKRIMINANZANALYSE
DER
PARTIELLEN
KLEINSTEN
QUADRATE
.
159
3.2.10.3
BEEINFLUSSUNG
VON
FETTSAEURE
UND
LIPIDMEDIATORENKONZENTRATIONEN
IN
HYPOTHALAMUSPROBEN
DURCH
LPS-BEHANDLUNG
IN
FAT-1
VS.
WT-MAEUSEN
.
163
3.2.11
IMMUNFLUORESZENZHISTOCHEMIE
VON
OVLT-SCHNITTEN
NACH
MALDI-MSI
.
165
3.2.11.1
ENTZUENDUNGSMARKER
IM
OVLT
UND
DER
PRAEOPTISCHEN
REGION
NACH
LPS
BEHANDLUNG
.
165
3.2.11.2
ZELLTYPENDIFFERENZIERUNG
IM
OVLT
.
166
3.2.11.3
KOLOKALISATION
VON
FLUORESZENZSIGNALEN
UND
MALDI-MSI
HEATMAPS
.
169
3.2.12
SEMIQUANTITATIVER
VERGLEICH
VON
LIPIDEN
IM
OVLT
.
171
3.2.12.1
VERAENDERUNGEN
DER
OVLT-LIPIDE
FUENF
STUNDEN
NACH
LPS-INJ
EKTION
.
171
3.2.12.2
VERAENDERUNGEN
DER
OVLT-LIPIDE
24
STUNDEN
NACH
LPS-STIMULATION
.
174
3.3
EINFLUSS
VON
CO-3-FETTSAEUREN
AUF
DIE
STRESSREAKTION
IM
"NOVEL
ENVIRONMENT
STRESS"
TEST
.
176
3.3.1
STRESSINDUZIERTE
VERAENDERUNGEN
DER
KOERPERKERNTEMPERATUR
.
176
3.3.2
STRESSINDUZIERTE
VERAENDERUNGEN
DER
LOKOMOTORISCHEN
AKTIVITAET
.
177
4
DISKUSSION
.
179
4.1
EINFLUSS
DER
W-3-FS-DEFIZIENTEN
DIAET
AUF
DEN
VERLAUF
SYSTEMISCHER
ENTZUENDUNGEN
.
.
179
4.2
EVALUATION
DER
CO-3-FS-ANREICHERUNG
IN
CO-3-FS-SUFFIZIENTEN
FAT-1-MAEUSEN
.
180
4.3
INFLAMMATION
UND
NEUROINFLAMMATION
UNTER
DEM
EINFLUSS
VON
CO-3-FETTSAEUREN
IN
CO-3
SUFFIZIENTEN
MAEUSEN
.
181
4.3.1
VERAENDERUNGEN
DER
PERIPHEREN/SYSTEMISCHEN
ENTZUENDUNGSREAKTION
IN
FAT-1
MAEUSEN
.
181
4.3.2
BEWERTUNG
DER
PERIPHEREN
ENTZUENDUNG
IN
FAT-1-MAEUSEN
.
184
4.3.3
EINFLUSS
AUF
DIE
EXPRESSION
VON
INFLAMMATORISCHEN
MARKERN
IM
HYPOTHALAMUS.
.
185
4.3.4
BEWERTUNG
DER
NEUROINFLAMMATION
IN
FAT-1
VS.
WT-MAEUSEN
WAEHREND
LPS
INDUZIERTER
SYSTEMISCHER
ENTZUENDUNG
.
188
4.3.5
BEEINFLUSSUNG
DES
ARACHIDONSAEURE
UND
EICOSANOIDSTOFFWECHSEL
IN
FAT-1-VS.
WT
MAEUSEN
.
190
4.3.6
BEWERTUNG
DES
EICOSANOIDSTOFFWECHSELS
IN
FAT-1
VS.
WT-MAEUSEN
.
194
4.3.7
CO-3-FETTSAEUREN,
EICOSANOIDE
UND
DOCOSANOIDE
IN
FAT-1-MAEUSEN
VS.
WT-MAEUSEN
.
195
4.3.8
BEWERTUNG
DER
BILDUNG
VON
CO-3-FS-METABOLITEN
.
198
4.3.9
TLR4
IN
FAT-1-MAEUSEN
.
199
4.3.10
VERAENDERUNGEN
DES
ENDOCANNABINOIDSYSTEMS
.
200
4.3.11
EINFLUSS
EINZELNER
LIPIDE
UND
LIPIDKLASSEN
AUF
NEUROINFLAMMATION
.202
4.3.11.1
VERAENDERTE
GLYCEROPHOSPHOLIPIDE
IN
FAT-1-MAEUSEN
.202
4.3.11.2
PLASMALOGENE
.
204
4.3.11.3
SPHINGOLIPIDE
.
205
4.3.11.4
ACYLGLYCERINE
.
206
4.3.11.5
ACYLCARNITINE
.208
4.3.12
LIPIDE
ALS
INFLAMMATIONSMARKER
.
209
4.3.13
BEWERTUNG
DER
LIPIDOMICS
WAEHREND
SYSTEMISCHER
ENTZUENDUNGEN
UND
IN
FAT
1
-
VS.
WT-MAEUSEN
.
212
4.4
YYSICKNESS
BEHAVIOUR
"
.
215
4.5
VERAENDERTE
FIEBERANTWORT
IN
FAT
1
-MAEUSEN
.216
4.5.1
TUMORNEKROSEFAKTOR-A
ALS
PYROGEN
UND
KRYOGEN
.
219
4.5.2
INTERLEUKIN
1
SS
ALS
PYROGEN
.
220
4.5.3
INTERLEUKIN-6
ALS
PYROGEN
.222
4.5.4
PROSTAGLANDIN
E2
ALS
TERMINALES
PYROGEN
-
ALTERATION
DER
SYNTHESE
IM
HYPOTHALAMUS
VON
FAT-1
VS.
WT-MAEUSEN
.
223
4.5.5
BEWERTUNG
DER
HYPOTHERMIE
IN
FAT
1
-MAEUSEN
.
225
4.5.6
ENDOCANNABINOIDE
UND
HYPOTHERMIE
.
226
4.5.7
TRANSIENTE-REZEPTOR-POTENTIAL-KATIONENKANAL-VT
ALS
ZENTRALER
MODULATOR
DER
LPS-INDUZIERTEN
THERMOREGULATION
.
228
4.5.8
DIE
ROLLE
DES
OVLT
IN
DER
INFLAMMATORISCHEN
THERMOREGULATION
.
230
4.5.9
TLR4,
THERMOREGULATION
UND
TLR4
IM
OVLT
.
232
4.5.10
MIT
HYPOTHERMIE
ASSOZIIERTE
GLYCEROPHOSPHOLIPIDE
.
234
4.6
STRESS-INDUZIERTE
HYPERTHERMIE
.
235
4.7
THESENARTIGE
ZUSAMMENFASSUNG
DER
GEWONNENEN
ERKENNTNISSE
UND
DARAUS
ABGELEITETE
PERSPEKTIVEN
FUER
WEITERFUEHRENDE
UNTERSUCHUNGEN
.
238
5
ZUSAMMENFASSUNG
.
244
6
SUMMARY
.
250
7
ABKUERZUNGSVERZEICHNIS
.
255
8
LITERATURVERZEICHNIS
.
259
9
ANHANG
.280
9.1
ZUSAETZLICHE
INFORMATIONEN
.
280
9.2
PUBLIKATIONSLISTE
.
293
9.3
DANKSAGUNG
.
294
9.4
ERKLAERUNG
.
295
9.5
CURRICULUM
VITAE
.296 |
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title_full | Multimodale Analysen von Lipiden, Lipid-Metaboliten und relevanten Enzymen im Gehirn der Maus unter dem Einfluss von ω-3-Fettsäuren während systemischer Entzündung vorgelegt von Fabian Johannes Pflieger |
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topic_facet | mice inflamination omega-3 fatty acids brain fever preoptic area Hochschulschrift |
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