Identifizierung von Bakterien aus positiven Blutkulturen mittels Matrix Assisted Laser Desorption/Ionisation Time-Of-Flight Mass-Spectrometry:
Gespeichert in:
| 1. Verfasser: | |
|---|---|
| Format: | Abschlussarbeit Buch |
| Sprache: | German |
| Veröffentlicht: |
Köln
[2021]
|
| Schlagworte: | |
| Online-Zugang: | Inhaltsverzeichnis Inhaltsverzeichnis |
| Beschreibung: | 94 Blätter Illustrationen, Diagramme 21 cm |
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Datensatz im Suchindex
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|---|---|
| adam_text | INHALTSVERZEICHNIS:
ABKUERZUNGSVERZEICHNIS
.......................................................................................................
9
1.
EINFUEHRUNG
......................................................................................................................
12
1.1.
SEPSIS
.........................................................................................................................
13
1.1.1.
EPIDEMIOLOGIE
................................................................................................................
13
1.1.2.
OEKONOMISCHE
BEDEUTUNG
..............................................................................................
13
1.1.3.
DEFINITION
UND
DIAGNOSEKRITERIEN
DER
SEPSIS
................................................................
13
1.1.4.
SEPSIS
DIAGNOSTIK
MITTELS
BLUTKULTUREN
........................................................................
16
1.2.
ERREGERIDENTIFIKATION
AUS
BLUTKULTUREN
....................................................................
17
1.3.
VITEK
.....................................................................................................................
19
1.3.1.
IDENTIFIZIERUNG
UND
RESISTENZBESTIMMUNG
AUS
DIREKTANSAETZEN
..................................20
1.4.
MALDI-TOF
MS
.....................................................................................................
21
1.4.1.
IDENTIFIZIERUNG
AUS
DIREKTANSAETZEN
...............................................................................
22
1.5.
FRAGESTELLUNG
UND
ZIELSETZUNG
.................................................................................24
2.
MATERIALIEN
......................................................................................................................
25
2.1.
GERAETE
UND
ZUBEHOER
..................................................................................................
25
2.2.
MEDIEN,
LOESUNGEN
UND
ZUSAETZE
...............................................................................
26
2.2.1.
TESTPRINZIP
UND
REAGENZIEN
DER
BLUTKULTUREN
.............................................................
27
2.2.1.1
.
BACT/ALERT/BIOMERIEUX
.............................................................................................
27
2.2.12.
BACTEC*
BECTON
DICKINSON
........................................................................................
28
2.3.
WEITERE
MATERIALIEN
..................................................................................................
29
2.3.1.
VACUTAINER
SST*
II
ADVANCE
(BECTON
DICKINSON)
..................................................29
3.
METHODEN
TEIL
1:
............................................................................................................
30
ENTWICKLUNG
DER
PROTOKOLLE
ZUR
PROBENPRAEPARATION
...................................................
30
3.1.
BEIMPFEN
VON
BLUTKULTURMEDIEN
.............................................................................
30
3.2.
AUFBEREITUNG
DER
PROBEN
.........................................................................................
30
3.2.1.
KEIMZAHLVERLUSTE
...........................................................................................................
30
3.2.1.1.
BESTIMMUNG
DER
OPTIMALEN
RPM-ZAHL
.....................
30
3.2.1.2.
KEIMZAHL
VERLUST
BEI
VACUTAINER
SST*
II
EINSATZ
......................................................
31
3.2.2.
DIREKTMESSUNG
AUS
POSITIVEN
BLUTKULTUREN
...................................................................
31
3.2.2.1.
REDUKTION
DER
KOHLEKONZENTRATION
.................................................................................
31
3.2.2.2.
VERZICHT
AUF
NACL,
MALDI
MATRIX-VERGLEICH
(DHB
VS.
ALPHA
CYANO),
VERGLEICH
UNTERSCHIEDLICHER
AUSGANGSVOLUMINA...........................................................................................
32
3.2.2.3.
EINSATZ
AMEISENSAEURE,
MALDI
MATRIX-VERGLEICH,
ZUSAETZLICHE
MESSUNG
MIT
BAKTERIEN
VON
DER
NAEHRBODENPLATTE
..............................................................................................................
32
3.2.2.4.
WEITERE
REDUKTION
DER
KOHLEKONZENTRATION
....................................................................
33
3.2.2.5.
AUFTRAEGEN
UNTERSCHIEDLICHER
VOLUMINA
AUF
DAS
MALDI
TARGET
......................................
33
3.2.2.
OE.
GROESSERES
ANFANGSVOLUMEN
..............................................................................................
34
3.2.2.7.
PROTOKOLL
VERKUERZEN,
BAKTERIENKONZENTRATION
ERHOEHEN
....................................................
35
3.2.2.8.
ANWENDUNG
EINES
EXTRAKTIONS-PROTOKOLLS,
VERAENDERTES
AUFTRAEGEN
DER
AMEISENSAEURE
....35
3.2.2.9.
VERWENDUNG
UNTERSCHIEDLICHER
BLUTKULTUREN,
VERKUERZUNG
DES
PROTOKOLLS
......................
36
3.2.2.10.
BESTIMMUNG
DES
OPTIMALEN
VOLUMEN
WELCHES
AUF
DAS
MALDI
TARGET
AUFGETRAGEN
WIRD,
ERNEUTE
VERWENDUNG
DES
EXTRAKTIONS-PROTOKOLLS
................................................................
37
4.
METHODEN
TEIL
2:
DATENERHEBUNG
...............................................................................
38
4.1.
BLUTKULTUREN
..............................................................................................................
38
4.2.
AUFBEREITUNG
DER
PROBEN
.........................................................................................
39
4.3.
AUFBRINGEN
AUF
DIE
TARGETS
......................................................................................
39
4.4.
MESSUNG
....................................................................................................................
40
4.5.
PROBENPRAEPARATION
FUER
DEN
VITEK
2
.....................................................................
41
4.6.
KRITERIEN
ZUR
AUSWERTUNG
DER
ERGEBNISSE
DER
RESISTENZTESTUNG
...........................
42
5.
ERGEBNISSE
TEIL
1:
EVALUIERUNG
DER
VERSUCHSPROTOKOLLE
........................................
43
5.1.
BEIMPFEN
DER
BLUTKULTURMEDIEN
..............................................................................
43
5.2.
AUFBEREITEN
DER
PROBEN
............................................................................................
43
5.2.1.
KEIMZAHLBESTIMMUNG
....................................................................................................
43
5.2.1.1.
AUSWIRKUNG
DER
RPM-ZAHL
...............................................................................................
43
5.2.1.2.
AUSWIRKUNG
DES
VACUTAINER
SST*
II
EINSATZES
AUF
DIE
KEIMZAHL
..............................
44
5.2.2.
DIREKTMESSUNG
AUS
POSITIVEN
BLUTKULTUREN
...................................................................
45
5.2.2.1.
REDUKTION
DER
KOHLEKONZENTRATION
.................................................................................
45
5.2.2.2.
EFFEKT
UNTERSCHIEDLICHER
AUSGANGSVOLUMINA,
DER
MATRIX-WAHL
(DHB
VS
ALPHA-CYANO)
UND
DEM
VERZICHT
AUF
NACL
..........................................................................................................
46
5.2.2.3.
VERGLEICH
MIT
MESSUNGEN
VON
DER
NAEHRBODENPLATTE,
EFFEKT
DER
MATRIX-WAHL
UND
DEM
EINSATZ
VON
AMEISENSAEURE
...........................................................................................................
48
5.2.2.4.
WEITERE
REDUKTION
DER
KOHLEKONZENTRATION
....................................................................
49
5.2.2.5.
AUSWIRKUNG
UNTERSCHIEDLICHER
VOLUMINA,
WELCHE
AUF
DAS
MALDI
TARGET
AUFGETRAGEN
WURDEN
..........................................................................................................................................
49
5.2.2.6.
RESULTATE
BEI
GROESSEREM
ANFANGSVOLUMEN
.......................................................................
50
7
52.2.1.
VERKUERZTES
PROTOKOLL
50
5.2.2.8.
EVALUATION
DES
EXTRAKTIONSPROTOKOLLS
(AUS
KAPITEL
3.2.2.8.)
UND
DES
EFFEKTES
DES
VERAENDERTEN
AUFTRAGENS
DER
AMEISENSAEURE
...................................................................................
51
5.2.2.9.
VERGLEICH
DER
ERGEBNISSE
AUS
UNTERSCHIEDLICHEN
BLUTKULTUREN
UND
VERKUERZUNG
DES
PROTOKOLLS
......................................................................................................................................
51
5.2.2.10.
BESTIMMUNG
DES
OPTIMALEN
VOLUMENS,
WELCHES
AUF
DAS
TARGET
AUFGETRAGEN
WIRD
-
EVALUATION
DES
EXTRAKTIONSPROTOKOLLS
...........................................................................................
52
6.
ERGEBNISSE
TEIL
2:
DATENAUSWERTUNG
..........................................................................54
6.1.
MALDI-TOF
MS
.....................................................................................................
54
6.1.1.
VERGLEICH
DER
VERSCHIEDENEN
BLUTKULTURMEDIEN
...........................................................
54
6.2.
VITEK
.....................................................................................................................
58
6.2.1.
IDENTIFIZIERUNG
................................................................................................................
58
6.2.2.
RESISTENSBESTIMMUNG
....................................................................................................
62
6.2.2.1.
FEHLER
(MHK-,
MINOR-,
MAJOR-,
UND
VERY
MAJOR
ERROR)
....................................................
62
6.2.2.2.
UEBEREINSTIMMUNGEN
........................................................................................................
65
7.
DISKUSSION
........................................................................................................................70
7.1.
TEIL
1:
PRAEPARATION
DER
BLUTKULTURDIREKTANSAETZE
......................................................
70
7.2.
TEIL
2:
DATENAUSWERTUNG
..........................................................................................
71
7.2.1.
MALDI-TOF
MS
......................................................................................................
71
122.
VITEK..........................................................................................................................
75
7.2.2.1.
IDENTIFIZIERUNGSRATEN
....................................................................................................
75
1222.
ANTIBIOGRAMM
.................................................................................................................
77
8.
ZUSAMMENFASSUNG
.........................................................................................................79
9.
LITERATURVERZEICHNIS
......................................................................................................80
10.
VORABVEROEFFENTLICHUNG
................................................................................................89
11.
ANHANG
...........................................................................................................................
90
VERZEICHNISSE
...................................................................................................................
90
TABELLENVERZEICHNIS
..................................................................................................................
90
ABBILDUNGSVERZEICHNIS
............................................................................................................
92
12.
LEBENSLAUF
.....................................................................................................................
93
8
|
| adam_txt |
INHALTSVERZEICHNIS:
ABKUERZUNGSVERZEICHNIS
.
9
1.
EINFUEHRUNG
.
12
1.1.
SEPSIS
.
13
1.1.1.
EPIDEMIOLOGIE
.
13
1.1.2.
OEKONOMISCHE
BEDEUTUNG
.
13
1.1.3.
DEFINITION
UND
DIAGNOSEKRITERIEN
DER
SEPSIS
.
13
1.1.4.
SEPSIS
DIAGNOSTIK
MITTELS
BLUTKULTUREN
.
16
1.2.
ERREGERIDENTIFIKATION
AUS
BLUTKULTUREN
.
17
1.3.
VITEK
.
19
1.3.1.
IDENTIFIZIERUNG
UND
RESISTENZBESTIMMUNG
AUS
DIREKTANSAETZEN
.20
1.4.
MALDI-TOF
MS
.
21
1.4.1.
IDENTIFIZIERUNG
AUS
DIREKTANSAETZEN
.
22
1.5.
FRAGESTELLUNG
UND
ZIELSETZUNG
.24
2.
MATERIALIEN
.
25
2.1.
GERAETE
UND
ZUBEHOER
.
25
2.2.
MEDIEN,
LOESUNGEN
UND
ZUSAETZE
.
26
2.2.1.
TESTPRINZIP
UND
REAGENZIEN
DER
BLUTKULTUREN
.
27
2.2.1.1
.
BACT/ALERT/BIOMERIEUX
.
27
2.2.12.
BACTEC*
BECTON
DICKINSON
.
28
2.3.
WEITERE
MATERIALIEN
.
29
2.3.1.
VACUTAINER
SST*
II
ADVANCE
(BECTON
DICKINSON)
.29
3.
METHODEN
TEIL
1:
.
30
ENTWICKLUNG
DER
PROTOKOLLE
ZUR
PROBENPRAEPARATION
.
30
3.1.
BEIMPFEN
VON
BLUTKULTURMEDIEN
.
30
3.2.
AUFBEREITUNG
DER
PROBEN
.
30
3.2.1.
KEIMZAHLVERLUSTE
.
30
3.2.1.1.
BESTIMMUNG
DER
OPTIMALEN
RPM-ZAHL
.
30
3.2.1.2.
KEIMZAHL
VERLUST
BEI
VACUTAINER
SST*
II
EINSATZ
.
31
3.2.2.
DIREKTMESSUNG
AUS
POSITIVEN
BLUTKULTUREN
.
31
3.2.2.1.
REDUKTION
DER
KOHLEKONZENTRATION
.
31
3.2.2.2.
VERZICHT
AUF
NACL,
MALDI
MATRIX-VERGLEICH
(DHB
VS.
ALPHA
CYANO),
VERGLEICH
UNTERSCHIEDLICHER
AUSGANGSVOLUMINA.
32
3.2.2.3.
EINSATZ
AMEISENSAEURE,
MALDI
MATRIX-VERGLEICH,
ZUSAETZLICHE
MESSUNG
MIT
BAKTERIEN
VON
DER
NAEHRBODENPLATTE
.
32
3.2.2.4.
WEITERE
REDUKTION
DER
KOHLEKONZENTRATION
.
33
3.2.2.5.
AUFTRAEGEN
UNTERSCHIEDLICHER
VOLUMINA
AUF
DAS
MALDI
TARGET
.
33
3.2.2.
OE.
GROESSERES
ANFANGSVOLUMEN
.
34
3.2.2.7.
PROTOKOLL
VERKUERZEN,
BAKTERIENKONZENTRATION
ERHOEHEN
.
35
3.2.2.8.
ANWENDUNG
EINES
EXTRAKTIONS-PROTOKOLLS,
VERAENDERTES
AUFTRAEGEN
DER
AMEISENSAEURE
.35
3.2.2.9.
VERWENDUNG
UNTERSCHIEDLICHER
BLUTKULTUREN,
VERKUERZUNG
DES
PROTOKOLLS
.
36
3.2.2.10.
BESTIMMUNG
DES
OPTIMALEN
VOLUMEN
WELCHES
AUF
DAS
MALDI
TARGET
AUFGETRAGEN
WIRD,
ERNEUTE
VERWENDUNG
DES
EXTRAKTIONS-PROTOKOLLS
.
37
4.
METHODEN
TEIL
2:
DATENERHEBUNG
.
38
4.1.
BLUTKULTUREN
.
38
4.2.
AUFBEREITUNG
DER
PROBEN
.
39
4.3.
AUFBRINGEN
AUF
DIE
TARGETS
.
39
4.4.
MESSUNG
.
40
4.5.
PROBENPRAEPARATION
FUER
DEN
VITEK
2
.
41
4.6.
KRITERIEN
ZUR
AUSWERTUNG
DER
ERGEBNISSE
DER
RESISTENZTESTUNG
.
42
5.
ERGEBNISSE
TEIL
1:
EVALUIERUNG
DER
VERSUCHSPROTOKOLLE
.
43
5.1.
BEIMPFEN
DER
BLUTKULTURMEDIEN
.
43
5.2.
AUFBEREITEN
DER
PROBEN
.
43
5.2.1.
KEIMZAHLBESTIMMUNG
.
43
5.2.1.1.
AUSWIRKUNG
DER
RPM-ZAHL
.
43
5.2.1.2.
AUSWIRKUNG
DES
VACUTAINER
SST*
II
EINSATZES
AUF
DIE
KEIMZAHL
.
44
5.2.2.
DIREKTMESSUNG
AUS
POSITIVEN
BLUTKULTUREN
.
45
5.2.2.1.
REDUKTION
DER
KOHLEKONZENTRATION
.
45
5.2.2.2.
EFFEKT
UNTERSCHIEDLICHER
AUSGANGSVOLUMINA,
DER
MATRIX-WAHL
(DHB
VS
ALPHA-CYANO)
UND
DEM
VERZICHT
AUF
NACL
.
46
5.2.2.3.
VERGLEICH
MIT
MESSUNGEN
VON
DER
NAEHRBODENPLATTE,
EFFEKT
DER
MATRIX-WAHL
UND
DEM
EINSATZ
VON
AMEISENSAEURE
.
48
5.2.2.4.
WEITERE
REDUKTION
DER
KOHLEKONZENTRATION
.
49
5.2.2.5.
AUSWIRKUNG
UNTERSCHIEDLICHER
VOLUMINA,
WELCHE
AUF
DAS
MALDI
TARGET
AUFGETRAGEN
WURDEN
.
49
5.2.2.6.
RESULTATE
BEI
GROESSEREM
ANFANGSVOLUMEN
.
50
7
52.2.1.
VERKUERZTES
PROTOKOLL
50
5.2.2.8.
EVALUATION
DES
EXTRAKTIONSPROTOKOLLS
(AUS
KAPITEL
3.2.2.8.)
UND
DES
EFFEKTES
DES
VERAENDERTEN
AUFTRAGENS
DER
AMEISENSAEURE
.
51
5.2.2.9.
VERGLEICH
DER
ERGEBNISSE
AUS
UNTERSCHIEDLICHEN
BLUTKULTUREN
UND
VERKUERZUNG
DES
PROTOKOLLS
.
51
5.2.2.10.
BESTIMMUNG
DES
OPTIMALEN
VOLUMENS,
WELCHES
AUF
DAS
TARGET
AUFGETRAGEN
WIRD
-
EVALUATION
DES
EXTRAKTIONSPROTOKOLLS
.
52
6.
ERGEBNISSE
TEIL
2:
DATENAUSWERTUNG
.54
6.1.
MALDI-TOF
MS
.
54
6.1.1.
VERGLEICH
DER
VERSCHIEDENEN
BLUTKULTURMEDIEN
.
54
6.2.
VITEK
.
58
6.2.1.
IDENTIFIZIERUNG
.
58
6.2.2.
RESISTENSBESTIMMUNG
.
62
6.2.2.1.
FEHLER
(MHK-,
MINOR-,
MAJOR-,
UND
VERY
MAJOR
ERROR)
.
62
6.2.2.2.
UEBEREINSTIMMUNGEN
.
65
7.
DISKUSSION
.70
7.1.
TEIL
1:
PRAEPARATION
DER
BLUTKULTURDIREKTANSAETZE
.
70
7.2.
TEIL
2:
DATENAUSWERTUNG
.
71
7.2.1.
MALDI-TOF
MS
.
71
122.
VITEK.
75
7.2.2.1.
IDENTIFIZIERUNGSRATEN
.
75
1222.
ANTIBIOGRAMM
.
77
8.
ZUSAMMENFASSUNG
.79
9.
LITERATURVERZEICHNIS
.80
10.
VORABVEROEFFENTLICHUNG
.89
11.
ANHANG
.
90
VERZEICHNISSE
.
90
TABELLENVERZEICHNIS
.
90
ABBILDUNGSVERZEICHNIS
.
92
12.
LEBENSLAUF
.
93
8 |
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Inhaltsverzeichnis