Verfügbarkeit: Die Rolle des endogenen TLR4-Liganden S100A12 für die IL-17A-Expression durch T-Zellen in der systemischen juvenilen idiopathischen Arthritis (sJIA)

Die Rolle des endogenen TLR4-Liganden S100A12 für die IL-17A-Expression durch T-Zellen in der systemischen juvenilen idiopathischen Arthritis (sJIA):

Gespeichert in:

Bibliographische Detailangaben
1. Verfasser:	Grün, Niklas 1992- (VerfasserIn)
Format:	Abschlussarbeit Buch
Sprache:	German
Veröffentlicht:	Münster 2020
Schlagworte:	Zelle Immunomagnetische Separation Arthritis Ligand > Biochemie Monozyt Hochschulschrift
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Beschreibung:	62, XVI Blätter Illustrationen 30 cm

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adam_text	INHALTSVERZEICHNIS 1. EINLEITUNG ........................................................................................................ 1 1.1. AUFBAU UND FUNKTION DES IMMUNSYSTEMS............................................................................... 1 1.2. AUTOINFLAMMATION .................................................................................................................. 2 1.3. SYSTEMISCHE JUVENILE IDIOPATHISCHE ARTHRITIS (SJIA) ................................................................. 3 1.4. PATHOPHYSIOLOGIE DER SJIA ....................................................................................................... 3 1.4.1. DIE ROLLE DES ANGEBORENEN IMMUNSYSTEMS IN DER SJIA ........................................................... 4 1.4.2. DIE ROLLE DES ADAPTIVEN IMMUNSYSTEMS IN DER SJIA ................................................................ 6 1.4.3. YOET-ZELLEN ALS VERBINDENDES ELEMENT .................................................................................... 8 1.5. WINDOW OFOPPORTUNITY ......................................................................................................... 8 2. ZIELSETZUNG ................................................................................................... 10 3. MATERIAL ......................................................................................................... 11 3.1. AUSSTATTUNG .......................................................................................................................... 11 3.2. VERBRAUCHSMATERIAL .............................................................................................................. 12 3.3. KITS ........................................................................................................................................ 12 3.4. CHEMIKALIEN, STIMULANZIEN UND PUFFER .................................................................................. 13 3.4.1. HERSTELLUNG VON HEXAMEREM S100A12 .................................................................................. 14 3.4.2. HERSTELLUNG DES FACS-PUFFERS ............................................................................................... 14 3.4.3. HERSTELLUNG DES RPMI-MEDIUMS........................................................................................... 14 3.4.4. HERSTELLUNG VON HBSS ........................................................................................................... 15 3.5. ANTIKOERPER ............................................................................................................................ 15 3.6. BLUTMATERIAL ................................................................ 15 4. METHODEN ....................................................................................................... 18 4.1. ZELLDICHTE BESTIMMEN ........................................................................................................... 18 4.2. ZELLSEPARATION ....................................................................................................................... 18 4.2.1. PERIPHERAL BLOOD MONONUCLEAR CELIS (PBMCS) ...................................................................... 18 4.2.2. IMMUNMAGNETISCHE SEPARATION: CD3 + ZELLEN......................................................................... 18 4.2.3. IMMUNMAGNETISCHE SEPARATION: CD4 + T-ZELLEN ..................................................................... 19 4.2.4. IMMUNMAGNETISCHE SEPARATION: CD8 + ZELLEN......................................................................... 19 4.2.5. 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AUSWERTUNG .......................................................................................................................... 25 4.5. ENZYME LINKED IMMUNOSORBENT ASSAY (ELISA) ...................................................................... 25 4.6. LUMINEX ................................................................................................................................ 26 4.7. STATISTISCHE AUSWERTUNG UND COMPUTERPROGRAMME ............................................................ 27 5. ERGEBNISSE .................................................................................................... 28 5.1. S100A12 IST WIE LPS IN DER LAGE IN PBMCS IL-17-SEKRETION ZU INDUZIEREN ............................ 28 5.2. MONOZYTEN UND CD3 + T-ZELLEN SIND AN DER INDUKTION DER IL-17-SEKRETION BETEILIGT ............. 29 5.3. S100A12 HAT AUF CD8 + T-ZELL-AKTIVITAET UND -PROLIFERATION EINEN STAERKEREN EFFEKT ALS LPS ...... 30 5.4. EIN MANGEL CD8 + T-ZELLEN FUEHRT ZU EINER DYSREGULIERTEN T H 17-ANTWORT ................................. 34 5.5. CD8 + T-ZELLEN SIND IN DER LAGE DIE TH17-ANTWORT ZU MODIFIZIEREN ......................................... 35 5.6. S100A12 VERSUS LPS STIMULIERTE CD8 + T-ZELLEN UNTERSCHEIDEN SICH IN IHREM PHAENOTYP......... 36 5.7. CD8 + T-ZELLEN SIND IN DER SJIA UNTERREPRAESENTIERT, ABER IN BESONDEREM MASSE AKTIVIERT ....... 39 6. DISKUSSION..................................................................................................... 41 7. LITERATURVERZEICHNIS................................................................................ 52 8. DANKSAGUNG .................................................................................................. 61 9. LEBENSLAUF .................................................................................................... 62 10. ANHANG ............................................................................................................... I 10.1. ABKUERZUNGSVERZEICHNIS............................................................................................................ * 10.2. ABBILDUNGSVERZEICHNIS........................................................................................................... IV 10.3. ERGAENZENDE ERGEBNISSE ........................................................................................................... V 10.3.1. S100A12 UNTERSCHEIDET SICH NICHT WESENTLICH VON LPS IN SEINEM EFFEKT AUF MONOZYTAERE DIFFERENZIERUNG ................................................................................................................... VI 10.3.2. DIE ZYTOKINE IL-6, IL-LSS UND IFNY SIND UNTER LPS-STIMULATION, IM VERGLEICH ZUR S100A12- STIMULATION, DEUTLICH ERHOEHT ................................................................................................ VII 10.3.3. UNTERSCHIEDE IN DER IL-15RA-EXPRESSION AUF MONOZYTEN, UNTER STIMULATIONEN MIT S100A12 VERSUS LPS, KONNTEN NICHT BESTAETIGT WERDEN ....................................................... VIII 10.3.4. YOET-ZELLEN SPIELEN EINE UNTERGEORDNETE ROLLE ...................................................................... IX 10.4. GENEHMIGUNGEN DER ETHIK-KOMMISSION X
adam_txt	INHALTSVERZEICHNIS 1. EINLEITUNG . 1 1.1. AUFBAU UND FUNKTION DES IMMUNSYSTEMS. 1 1.2. AUTOINFLAMMATION . 2 1.3. SYSTEMISCHE JUVENILE IDIOPATHISCHE ARTHRITIS (SJIA) . 3 1.4. PATHOPHYSIOLOGIE DER SJIA . 3 1.4.1. DIE ROLLE DES ANGEBORENEN IMMUNSYSTEMS IN DER SJIA . 4 1.4.2. DIE ROLLE DES ADAPTIVEN IMMUNSYSTEMS IN DER SJIA . 6 1.4.3. YOET-ZELLEN ALS VERBINDENDES ELEMENT . 8 1.5. WINDOW OFOPPORTUNITY . 8 2. ZIELSETZUNG . 10 3. MATERIAL . 11 3.1. AUSSTATTUNG . 11 3.2. VERBRAUCHSMATERIAL . 12 3.3. KITS . 12 3.4. CHEMIKALIEN, STIMULANZIEN UND PUFFER . 13 3.4.1. HERSTELLUNG VON HEXAMEREM S100A12 . 14 3.4.2. HERSTELLUNG DES FACS-PUFFERS . 14 3.4.3. HERSTELLUNG DES RPMI-MEDIUMS. 14 3.4.4. HERSTELLUNG VON HBSS . 15 3.5. ANTIKOERPER . 15 3.6. BLUTMATERIAL . 15 4. METHODEN . 18 4.1. ZELLDICHTE BESTIMMEN . 18 4.2. ZELLSEPARATION . 18 4.2.1. PERIPHERAL BLOOD MONONUCLEAR CELIS (PBMCS) . 18 4.2.2. IMMUNMAGNETISCHE SEPARATION: CD3 + ZELLEN. 18 4.2.3. IMMUNMAGNETISCHE SEPARATION: CD4 + T-ZELLEN . 19 4.2.4. IMMUNMAGNETISCHE SEPARATION: CD8 + ZELLEN. 19 4.2.5. IMMUNMAGNETISCHE SEPARATION: MONOZYTEN . 19 4.3. ZELLKULTUREN . 20 4.3.1. STIMULATION VON PERIPHERAL BLOOD MONONUCLEAR CELIS (PBMCS) . 20 4.3.2. KO-KULTUR VON MONOZYTEN UND T-ZELLEN . 20 4.3.3. CD8 + T-ZELL-TRANSFER EXPERIMENT . 21 4.3.4. MONOZYTEN-UEBERSTANDTRANSFER EXPERIMENT. 22 4.4. FLUORESZENZ-DURCHFLUSSZYTOMETRIE. 23 4.4.1. AUSWERTUNG . 25 4.5. ENZYME LINKED IMMUNOSORBENT ASSAY (ELISA) . 25 4.6. LUMINEX . 26 4.7. STATISTISCHE AUSWERTUNG UND COMPUTERPROGRAMME . 27 5. ERGEBNISSE . 28 5.1. S100A12 IST WIE LPS IN DER LAGE IN PBMCS IL-17-SEKRETION ZU INDUZIEREN . 28 5.2. MONOZYTEN UND CD3 + T-ZELLEN SIND AN DER INDUKTION DER IL-17-SEKRETION BETEILIGT . 29 5.3. S100A12 HAT AUF CD8 + T-ZELL-AKTIVITAET UND -PROLIFERATION EINEN STAERKEREN EFFEKT ALS LPS . 30 5.4. EIN MANGEL CD8 + T-ZELLEN FUEHRT ZU EINER DYSREGULIERTEN T H 17-ANTWORT . 34 5.5. CD8 + T-ZELLEN SIND IN DER LAGE DIE TH17-ANTWORT ZU MODIFIZIEREN . 35 5.6. S100A12 VERSUS LPS STIMULIERTE CD8 + T-ZELLEN UNTERSCHEIDEN SICH IN IHREM PHAENOTYP. 36 5.7. CD8 + T-ZELLEN SIND IN DER SJIA UNTERREPRAESENTIERT, ABER IN BESONDEREM MASSE AKTIVIERT . 39 6. DISKUSSION. 41 7. LITERATURVERZEICHNIS. 52 8. DANKSAGUNG . 61 9. LEBENSLAUF . 62 10. ANHANG . I 10.1. ABKUERZUNGSVERZEICHNIS. * 10.2. ABBILDUNGSVERZEICHNIS. IV 10.3. ERGAENZENDE ERGEBNISSE . V 10.3.1. S100A12 UNTERSCHEIDET SICH NICHT WESENTLICH VON LPS IN SEINEM EFFEKT AUF MONOZYTAERE DIFFERENZIERUNG . VI 10.3.2. DIE ZYTOKINE IL-6, IL-LSS UND IFNY SIND UNTER LPS-STIMULATION, IM VERGLEICH ZUR S100A12- STIMULATION, DEUTLICH ERHOEHT . VII 10.3.3. UNTERSCHIEDE IN DER IL-15RA-EXPRESSION AUF MONOZYTEN, UNTER STIMULATIONEN MIT S100A12 VERSUS LPS, KONNTEN NICHT BESTAETIGT WERDEN . VIII 10.3.4. YOET-ZELLEN SPIELEN EINE UNTERGEORDNETE ROLLE . IX 10.4. GENEHMIGUNGEN DER ETHIK-KOMMISSION X
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spelling	Grün, Niklas 1992- Verfasser (DE-588)1228462666 aut Die Rolle des endogenen TLR4-Liganden S100A12 für die IL-17A-Expression durch T-Zellen in der systemischen juvenilen idiopathischen Arthritis (sJIA) vorgelegt von Niklas Grün aus Willich Münster 2020 62, XVI Blätter Illustrationen 30 cm txt rdacontent n rdamedia nc rdacarrier Dissertation Westfälische Wilhelms-Universität Münster 2020 Beschränkt für den Austausch 3\p Zelle (DE-588)4067537-3 gnd 4\p Immunomagnetische Separation (DE-588)4702129-9 gnd 5\p Arthritis (DE-588)4068867-7 gnd 6\p Ligand Biochemie (DE-588)4606532-5 gnd 7\p Monozyt (DE-588)4285013-7 gnd (DE-588)4113937-9 Hochschulschrift gnd-content B:DE-101 application/pdf https://d-nb.info/1226814506/04 Inhaltsverzeichnis DNB Datenaustausch application/pdf http://bvbr.bib-bvb.de:8991/F?func=service&doc_library=BVB01&local_base=BVB01&doc_number=032849083&sequence=000001&line_number=0001&func_code=DB_RECORDS&service_type=MEDIA Inhaltsverzeichnis 1\p aepkn 0,97431 20210419 DE-101 https://d-nb.info/provenance/plan#aepkn 2\p dnb 20210421 DE-101 https://d-nb.info/provenance/plan#dnb 3\p aepgnd 0,16326 20210421 DE-101 https://d-nb.info/provenance/plan#aepgnd 4\p aepgnd 0,04004 20210421 DE-101 https://d-nb.info/provenance/plan#aepgnd 5\p aepgnd 0,02822 20210421 DE-101 https://d-nb.info/provenance/plan#aepgnd 6\p aepgnd 0,02228 20210421 DE-101 https://d-nb.info/provenance/plan#aepgnd 7\p aepgnd 0,01983 20210421 DE-101 https://d-nb.info/provenance/plan#aepgnd
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