Verfügbarkeit: Fos-Expressionsmuster im auditorischen Hirnstamm der Ratte variieren nach synchroner und asynchroner binauraler intracochleärer elektrischer Stimulation

Fos-Expressionsmuster im auditorischen Hirnstamm der Ratte variieren nach synchroner und asynchroner binauraler intracochleärer elektrischer Stimulation:

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Bibliographische Detailangaben
1. Verfasser:	Döring, Ulrike 1988- (VerfasserIn)
Format:	Abschlussarbeit Buch
Sprache:	German
Veröffentlicht:	Freiburg im Breisgau [2017]
Schlagworte:	Hochschulschrift
Online-Zugang:	Inhaltsverzeichnis Inhaltsverzeichnis
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adam_text	AUS DER KLINIK FUER HALS-NASEN-OHRENHEILKUNDE DES UNIVERSITAETSKLINIKUMS FREIBURG FOS-EXPRESSIONSMUSTER IM AUDITORISCHEN HIRNSTAMM DER RATTE VARIIEREN NACH SYNCHRONER UND ASYNCHRONER BINAURALER INTRACOCHLEAERER ELEKTRISCHER STIMULATION INAUGURAL - DISSERTATION ZUR ERLANGUNG DES MEDIZINISCHEN DOKTORGRADES DER MEDIZINISCHEN FAKULTAET DER ALBERT-LUDWIGS-UNIVERSITAET FREIBURG IM BREISGAU VORGELEGT 2016 VON ULRIKE DOERING GEBOREN IN JENA INHALTSVERZEICHNIS____________________ 1. EINLEITUNG.......................................................................................................... 8 1.1. AUDITORISCHES NERVENSYSTEM.................................................................8 1.1.1. DER SCHALL...............................................................................................9 1.1.2. AEUSSERES OHR UND MITTELOHR .................................................................. 12 1.1.3. INNENOHR, SPIRALGANGLION UND HOERNERV ................................................. 14 1.1.4. NUCLEUS COCHLEARIS KOMPLEX................................................................21 1.1.4.1 .VENTRALER NUCLEUS COCHLEARIS 22 1.1.4.2. DORSALER NUCLEUS COCHLEARIS 24 1.1.5. SUPERIORER OLIVENKOMPLEX................................................................... 25 1.1.5.1. LATERALE SUPERIORE OLIVE 25 1.1.5.2. MEDIALER NUCLEUS DES TRAPEZKOERPERS 26 1.1.5.3. MEDIALE SUPERIORE OLIVE 27 1.1.5.4. SUPERIORER PARAOLIVAERER NUCLEUS 27 1.1.5.5. PERIOLIVAERE NUCLEI 28 1.1.6. COLLICULUS INFERIOR................................................................................ 29 1.1.6.1. CENTRALER COLLICULUS INFERIOR 29 1.1.6.2. EXTEMAL CORTEX OF COLLICULUS INFERIOR 30 1.1.6.3. DORSAL CORTEX OF COLLICULUS INFERIOR 31 1.1.7. MEDIALES CORPUS GENICULATUM..............................................................31 1.1.8. AUDITORISCHER CORTEX............................................................................33 1.1.9. ABSTEIGENDE HOERBAHN...........................................................................36 1.1.10. ENTWICKLUNG DER AUDITORISEHEN NERVENBAHN ........................................ 37 1.2. NEURONALE PLASTIZITAET............................................................................40 1.2.1. AKTIVITAETSABHAENGIGE PLASTIZITAET ............................................................ 40 1.2.2. LANGZEITPOTENZIERUNG UND CREB ....................................................... 41 1.2.3. IMMEDIATE EARLY GENES........................................................................43 1.2.3.1. C-FOS 44 1.2.3.2. EGR-1 48 1.3. COCHLEA IMPLANTAT UND BINAURALES HOEREN ......................................... 49 1.3.1. SYSTEM UND ANWENDUNG EINES COCHLEA IMPLANTS.................................49 1.3.2. BINAURALES HOEREN.................................................................................. 51 2. MATERIAL UND METHODEN ................................................................................ 54 2.1. VORBEREITUNGEN ZUR ELEKTRISCHEN STIMULATION .................................. 54 2.1.1. VERWENDETE TIERE UND VERSUCHSAUFBAU................................................54 2.1.2. ERTAUBUNG DURCH KANAMYCININJEKTIONEN ............................................. 57 2.1.3. SCHWELLENWERTBESTIMMUNG .................................................................. 58 2.1.4. GEHOERKNOECHELCHENENTFEMUNG............................................................... 58 2.2. ELEKTRISCHE INTRACOCHLEAERE STIMULATION .............................................. 59 2.2.1. TECHNISCHES EQUIPMENT UND DURCHFUEHRUNG ......................................... 59 2.2.2. FIXIERUNG UND PRAEPARATION DES GEHIRNS................................................63 2.3. IMMUNHISTOCHEMIE................................................................................ 65 2.3.1. KRYOTOM-SCHNITTE ................................................................................. 65 2.3.2. DURCHFUEHRUNG DES FAERBEPROTOKOLLS ...................................................... 66 2.4. AUSWERTUNG........................................................................................... 71 2.4.1. MIKROSKOPIEREN UND BEARBEITEN ....................................... .................. 71 2.4.2. ZAEHLUNG DER ZELLKERNE...........................................................................71 2.4.3. STATISTISCHE AUSWERTUNG........................................................................74 3. ERGEBNISSE........................................................................................................ 77 3.1. KONTROLLEN.............................................................................................. 77 3.2. ANTEROVENTRALER NUCLEUS COCHLEARIS (AVCN) ..................................... 77 3.2.1. FOS-EXPRESSION IM AVCN BEI HOERENDEN RATTEN...................................77 3.2.2. FOS-EXPRESSION IM AVCN BEI ERTAUBTEN RATTEN ................................... 78 3.3. DORSALER NUCLEUS COCHLEARIS (DCN) ..................................................... 88 3.3.1. FOS-EXPRESSION IM DCN BEI HOERENDEN RATTEN ..................................... 88 3.3.2. FOS-EXPRESSION IM DCN BEI ERTAUBTEN RATTEN ..................................... 88 3.4. LATERALE SUPERIORE OLIVE (LSO) ........................................................... 98 3.4.1. FOS-EXPRESSION IN DER LSO BEI HOERENDEN RATTEN.................................98 3.4.2. FOS-EXPRESSION IN DER LSO BEI ERTAUBTEN RATTEN.................................98 3.4.3. TOPOGRAFIE FOS-POSITIVER KERNE IM SOC..............................................99 3.5. CENTRALER COLLICULUS INFERIOR (CIC) ................................................... 112 3.5.1. FOS-EXPRESSION IM CIC BEI HOERENDEN RATTEN ..................................... 112 3.5.2. FOS-EXPRESSION IM CIC BEI ERTAUBTEN RATTEN ..................................... 113 3.6. QUALITATIVE ERGEBNISSE ANDERER ANTIKOERPER ..................................... 123 4. DISKUSSION......................................................................................................127 4.1. TECHNISCHE ABWAEGUNGEN ................................................. 127 4.2. HOERENDE VS. ERTAUBTE TIERE................................................................. 129 4.3. MONAURALE VS. BINAURALE EIS............................................................. 131 4.4. SYNCHRONE VS. ASYNCHRONE BEIS ......................................................... 135 4.5. QUALITATIVE AUSWERTUNG EGR-1 UND ATF-2 ....................................... 138 5. ZUSAMMENFASSUNG........................................................................................140 6. ABKUERZUNGEN................................................................................................ 141 7. LITERATURVERZEICHNIS.....................................................................................143 8. LEBENSLAUF......................................................................................................176 9. EIDESTATTLICHE VERSICHERUNG.......................................................................177 10. ERKLAERUNG ZUM EIGENANTEIL.......................................................................178 11. DANKSAGUNG................................................................................................ 179
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