Sensitivitätsunterschiede in limnischen Muscheln gegenüber cyanobakteriellen Toxinen:
Gespeichert in:
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| Format: | Abschlussarbeit Buch |
| Sprache: | German |
| Veröffentlicht: |
Berlin
Winter-Industries
2015
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| Schriftenreihe: | Dissertationen
1721 |
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| Online-Zugang: | Inhaltsverzeichnis |
| Beschreibung: | IX, 132 S. Ill., graph. Darst. |
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Datensatz im Suchindex
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|---|---|
| adam_text | INHALTSVERZEICHNIS
I
INHALTSVERZEICHNIS
INHALTSVERZEICHNIS I
ABKUERZUNGEN IV
ZUSAMMENFASSUNG V
SUMMARY VIII
1. EINLEITUNG 1
1.1. CYANOBAKTERIEN UND IHRE TOXINE 7
1.2. MICROCYSTIN 9
1.3. BIOTRANSFORMATION VON MICROCYSTIN-LR UND OXIDATIVE STRESSABWEHR 14
1.3.1.BIOTRANSFORMATION VON MC-LR VIA GLUTATHION S-TRANSFERASE 14
1.3.2.OXIDATIVE STRESSABWEHR VIA SUPEROXIDDISMUTASE UND KATALASE 16
1.4. PHYSIOLOGISCHE KOSTEN FUER DIE DETOXIFIZIERUNG VON MICROCYSTIN-LR 16
1.4.1.GLUTATHIONPOOL 17
1.4.2. GLYKOGENGEHALT 18
1.4.3.LIPIDGEHALT 19
1.5. FETTSAEUREZUSAMMENSETZUNG 20
1.6. MOTIVATION UND ZIELSETZUNG DER ARBEIT 24
2. MATERIAL UND METHODEN 27
2.1. MATERIAL UND GERAETE 27
2.2. VERSUCHSDESIGN 31
VERSUCHSORGANISMEN 32
2.2.1.HAELTERUNG DER MUSCHELN 33
2.2.2. EXPOSITION MIT MICROCYSTIN-LR [EXPERIMENT 1 UND 3) 33
2.2.3. EXPOSITION MIT CYANOBAKTERIELLEM ROHEXTRAKT
(EXPERIMENT 2 UND 4} 34
2.2.4.EXPOSITION MIT MC-LR FUER DIE UNTERSUCHUNG DER FETTSAEUREMUSTER
(EXPERIMENT 5] 35
2.3. BEARBEITUNG DER PROBEN 36
2.3.1.ENZYMEXTRAKTION UND -MESSUNG 36
2.3.1.1.ENZYMEXTRAKTION 36
2.3.1.2.ENZYMMESSUNGEN 36
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II
INHALTSVERZEICHNIS
2.3.2.GLUTATHIONEXTRAKTION UND -QUANTIFIZIERUNG 40
2.3.2.
L.GLUTATHIONEXTRAKTION 40
2.3.2.2.GLUTATHIONQUANTIFIZIERUNG 40
2.3.3.GLYKOGENEXTRAKTION UND -QUANTIFIZIERUNG 41
2.3.3.1.
CLYKOGENEXTRAKTION 41
2.3.3.2.GLYKOGENQUANTIFIZIERUNG 42
2.3.4. LIPIDEXTRAKTION UND -QUANTIFIZIERUNG 42
2.3.4.1.LIPIDEXTRAKTION 42
2.3.4.2.LIPIDQUANTIFIZIERUNG 43
2.3.5. FETTSAEUREEXTRAKTION UND -QUANTIFIZIERUNG 43
2.3.5.1.LIPIDE UND FETTSAEUREN 43
2.3.5.2.FETTSAEURENQUANTIFIZIERUNG 46
2.3.6.TOXINQUANTIFIZIERUNG 48
2.3.6.1.
TOXINQUANTIFIZIERUNG MIT DER HPLC 48
2.3.6.2.
TOXINQUANTIFIZIERUNG MIT DEM LC-MS/MS 49
2.4. STATISTISCHE AUSWERTUNG 49
3. ERGEBNISSE 51
3.1. BIOTRANSFORMATION UND ANTIOXIDATIVE STRESSABWEHR 51
3.1.1. BIOTRANSFORMATIONSENZYME SGST UND MGST 51
3.1.1.1.SGST 51
3.1.1.2.MGST 54
3.1.2.ANTIOXIDATIVE ENZYME SOD UND KAT 57
3.1.2.1.SOD 57
3.1.2.2.KAT 60
3.2. PHYSIOLOGISCHE KOSTEN FUER DIE DETOXIFIZIERUNG VON MICROCYSTIN 63
3.2.1. GLYKOGENGEHALT 63
3.2.2. LIPIDGEHALT 66
3.2.3. GLUTATHIONPOOL [GLUTATHION
GE
SAMT,
GSH UND GSSG) 68
3.3. FETTSAEUREMUSTER ALS ANTWORT AUF MICROCYSTIN-LR EXPOSITION 71
3.3.1. FETTSAEUREMUSTER DER NAHRUNGSQUELLE SPIRULINA SP. 71
INHALTSVERZEICHNIS
III
3.3.2.FETTSAEUREMUSTER VON D. POLYMORPHA UND U. TUMIDUS 72
3.3.2.1.GESAMTFETTGEHALT 72
3.3.2.2.ZUSAMMENSETZUNG DER NEUTRALFETTE UND PHOSPHOLIPIDE 73
3.3.2.3.NMDS UND SIMPER ANALYSE 78
4. DISKUSSION 83
4.1. BIOTRANSFORMATION UND ANTIOXIDATIVE STRESSABWEHR 83
4.1.1.BIOTRANSFORMATIONS ENZYME SGST UND MGST 83
4.1.2.ANTIOXIDATIVE ENZYME SOD UND KAT 87
4.2. EFFEKTE DURCH DIE HEMMUNG DER PROTEIN-PHOSPHATASEN 1 UND 2A 90
4.3. PHYSIOLOGISCHE KOSTEN FUER DIE DETOXIFIZIERUNG VON MC-LR 91
4.3.1. GLYKOGEN 91
4.3.2.LIPIDE 93
4.3.3.GLUTATHIONPOOL (GLUTATHION
G
ESAMT, GSH, GSSG) 95
4.4. FETTSAEUREMUSTER NACH MC-LR EXPOSITION 97
4.4.1. FETTSAEUREMUSTER VON SPIRULINA SP. PULVER 97
4.4.2. FETTSAEUREMUSTER VON D. POLYMORPHA UND U. TUMIDUS 98
4.5. FAZIT 105
5. LITERATURVERZEICHNIS 107
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