Toxoplasma-Infektionen bei Schweinen: semi-automatisiertes Testsystem für Surveillance und Monitoring, Querschittstudie in Niedersachsen
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| Language: | German |
| Published: |
Gießen
DVG-Service
2011
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| Edition: | 1. Aufl. |
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| Physical Description: | 286 S. Ill., graph. Darst. 22 cm |
| ISBN: | 9783863450267 |
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| adam_text | Titel: Toxoplasma-Infektionen bei Schweinen
Autor: Görlich, Kirsten
Jahr: 2011
2.3.2.4. Enzyme-linked Immunosorbent Assay (ELISA) 74
2.3.2.4.1. ELISA auf Basis des surface antigen 1 von 81
T. gondii (TgSAGI)
2.3.3. Vorkommen von 7 .-gond//-lnfektionen bei Schweinen 83
3. Material und Methoden
3.1. Material
3.1.1. Chemikalien und Lösungen 97
3.1.2. Medikamente 97
3.1.3. Verbrauchsmaterialien und Geräte 97
3.1.4. Diagnostische Reagenzien und Kits 97
3.1.5. Parasitenstämme 98
3.1.6. Versuchstiere 98
3.1.7. Homologe und heterologe Referenzseren 98
3.1.8. Feldstudie 103
3.2. Methoden
3.2.1.1 nfektion derMäuseund Gewinnung der Zysten 103
von T. gondii
3.2.2. Infektion der Katzen und Gewinnung der Oozysten 104
von T. gondii
3.2.3. Infektion der Schweine und Gewinnung 105
von T.-gond/7-spezifischen Referenzproben
3.2.4. ELISA
3.2.4.1. Vergleich der kommerziellen ELISA 109
3.2.4.2. Optimierung des ELISA-Kit 1 für 113
Massenuntersuchungen von Schweineproben
auf Antikörper gegen 7. gondii
3.2.5. Semi-automatisierter Screeningtest für Feldproben
3.2.5.1. Feldproben 115
3.2.5.2. Durchführung des Screeningtests 116
3.2.6. Erhebung der epidemiologischen Daten
3.2.6.1. Fragebögen und Telefoninterview 121
3.2.6.2. Erhebung der Basisdaten 122
3.2.7. Auswertung der epidemiologischen Daten 123
4. Ergebnisse
4.1. Verlauf der experimentellen T.-gondVï-Infektion bei Schweinen 125
4.2. Vergleich der kommerziellen ELISA 126
4.2.1. Antikörperdetektion in homologen Seren
4.2.1.1. Serokonversion 127
4.2.1.2. Antikörperdynamik 127
4.2.2. Kreuzreaktivität mit heterologen Proben 131
4.2.3. Bewertung der kommerziellen ELISA 133
4.3. Validierung und Optimierung des mELISA-Kit 1
4.3.1. Antikörperdynamik bei Schweinen, die mit Oozysten von 133
T. gondii infiziert wurden
4.3.2. Antikörperdynamik bei Schweinen, die mit Zysten von 137
von T. gondii infiziert wurden
4.3.3. Untersuchung heterologer Proben 138
4.3.4. Vergleich der Antikörperdetektion in homologen Serum- und 140
Plasmaproben
4.3.5. Vergleich der Antikörperdetektion bei manueller 141
Testdurchführung und im semi-automatisierten System
4.3.6. Réhabilitât 142
4.3.7. Populationsbasierte Grenzwertberechnung 144
4.4. Feldstudie
4.4.1. Auswertung des Gesamtkollektivs 149
4.4.2. Auswertung des Teilkollektivs mit Fragebögen 156
4.4.2.1. Zusammenhang zwischen der geografischen Lage der 157
landwirtschaftlichen Betriebe, der Betriebsart sowie der
Tierklasse/Nutzungsrichtung und T.-gond//-lnfektionen
im Schweinebestand
4.4.2.2. Zusammenhang zwischen der Betriebsstruktur und 160
r.-gond/f-lnfektionen im Schweinebestand
4.4.2.3. Zusammenhang zwischen der Haltung anderer Tiere und 161
T.-goncW-Infektionen im Schweinebestand
4.4.2.4. Zusammenhang zwischen der Fütterung, der 164
Futterlagerung sowie der Tränketechnik und T.-gondii-
Infektionen im Schweinebestand
4.4.2.5. Zusammenhang zwischen dem Management und 167
T.-gondw-Infektionen im Schweinebestand
4.4.2.6. Zusammenhang zwischen der Reinigung sowie 169
Desinfektion und 7 .-gond//-lnfektionen im
Schweinebestand
4.4.2.7. Zusammenhang zwischen der Personalhygiene und 171
T.-gondw-Infektionen im Schweinebestand
5. Diskussion 173
5.1. Gewinnung von T.-gond/7-spezifischem Referenzmaterial 174
5.1.1. Klinische Ausprägung bei den mit T.-gondii-Oozyslen infizierten 174
Schweinen
5.2. Validierung und Standardisierung diagnostischer Methoden für 175
den Nachweis von Antikörpern gegen T. gondii beim Schwein
5.2.1. Auswahl der kommerziell erhältlichen ELISA-Kits sowie des 175
Probenmaterials für die Validierung und Standardisierung
5.2.2. Eigenschaften der kommerziellen ELISA 177
5.2.3. Validierung und Optimierung des mELISA-1 179
5.3. Querschnittsstudie bei Schweinen in Niedersachsen 180
5.3.1. Zusammenhang zwischen der Tierklasse/Nutzungsrichtung 181
und T.-gond//-lnfektionen
5.3.2. Zusammenhang zwischen der geografischen Lage und 184
7 .-gond//-lnfektionen
5.3.3. Zusammenhang zwischen der Betriebsstruktur und 185
T.-gond//-lnfektionen
5.3.4. Zusammenhang zwischen der Haltung anderer Tiere und 186
T.-gond//-lnfektionen
5.3.5. Zusammenhang zwischen der Fütterung sowie Futterlagerung 188
und T.-gond/;-lnfektionen
5.3.6. Zusammenhang zwischen der Tränketechnik und 189
T. -gondii-] nfektionen
5.3.7. Zusammenhang zwischen dem Management und 190
T.-gondw-lnfektionen
5.3.8. Zusammenhang zwischen der Schadnagerbekämpfung und 190
7 .-gond//-lnfektionen
5.3.9. Zusammenhang zwischen der Reinigung sowie Desinfektion 191
und T.-gond/V-lnfektionen
5.3.10. Zusammenhang zwischen der Personalhygiene und 192
T. -gondii- nfektionen
5.4. Ausblick 193
6. Zusammenfassung 195
7. Summary 197
8. Literaturverzeichnis 199
9. Anhang
9.1. Chemikalien und Lösungen 236
9.2. Medikamente 237
9.3. Verbrauchsmaterialien und Geräte 237
9.4. KSP / AK Erlass vom 16.02.2006 242
9.5. Datenschutzrechtliche Einverständniserklärung 244
9.6. Fragebögen
9.6.1. Deckblatt 247
9.6.2. Fragebogen Schwein 1 (Sauen und Ferkel) 248
9.6.3. Fragebogen Schwein 2 (Aufzucht und Mast) 252
9.6.4. Fragebogen Schwein 3 (Hobbybetrieb) 256
9.7. Validierung des mELISA-Kit 1
9.7.1. Antikörperdynamik bei Schweinen, die mit Oozysten von 260
T. gondii infiziert wurden
9.7.2. Antikörperdynamik bei Schweinen, die mit Zysten von 261
T. gondii infiziert wurden
9.7.3. Untersuchung heterologer Proben 262
9.7.4. Vergleich der Antikörperdetektion in homologen Serum- und 263
Plasmaproben
9.7.5. Vergleich der Antikörperdetektion bei manueller 263
Testdurchführung und im semi-automatisierten System
9.8. Feldstudie
9.8.1. Auswertung des Gesamtkollektivs 264
9.8.2. Auswertung des Teilkollektivs mit Fragebögen 266
10. Tabellenverzeichnis 282
11. Abbildungsverzeichnis 284
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