Der Einfluss des Zeitintervalls zwischen Stimulation und niedrig dosierter Bestrahlung auf die iNOS-Expression stimulierter und nicht stimulierter Makrophagen:
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2008
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245 | 1 | 0 | |a Der Einfluss des Zeitintervalls zwischen Stimulation und niedrig dosierter Bestrahlung auf die iNOS-Expression stimulierter und nicht stimulierter Makrophagen |c eingereicht von: Gabriela Loppnow |
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adam_text | Titel: Der Einfluss des Zeitintervalls zwischen Stimulation und niedrig dosierter Bestrahlung auf die iNOS-
Autor: Loppnow, Gabriela
Jahr: 2008
- Inhaltsverzeichnis -
Inhaltsverzeichnis
1. Einleitung 1-3
2. Theoretischer Teil 4-22
2.1. Entzündung und Entzündungsreaktionen 4
2.1.1. Der Begriff der Entzündung 4
2.1.2. Übersicht über die Entzündungsreaktionen und das
Abwehrsystem 4
2.1.3. Die Rolle der Makrophagen bei der Entzündung 6
2.1.4. Die Rolle des Stickoxids (NO) und der induzierbaren
Stickoxidsynthase (iNOS) bei der Entzündung 8
2.2. Strahlentherapie von gutartigen Erkrankungen 12
2.3. Antiinflammatorische Radiotherapie 15
2.3.1. Gegenwärtiger Stand der antiinflammatorischen
Radiotherapie 15
2.3.2. Der experimentelle Nachweis der antiinflammatorischen
Effektivität 17
2.3.3. //7-wVo-Experimente: Arthritismodelle und das Air-Pouch-
Modell 17
2.3.3.1. Arthritismodelle 17
2.3.3.2. Das Air-Pouch-Modell - ein Modell der chronisch
granulomatösen Entzündung 19
2.3.4. /n-wfro-Experimente: Effekte der niedrig dosierten
Bestrahlung auf zellulärer Ebene 20
2.3.4.1. Effekte der niedrig dosierten Bestrahlung auf Makrophagen 20
3. Problemstellung 23
4. Material und Methoden 24-32
4.1. Zellkultur von murinen RAW-264.7-Makrophagen 24
4.2. Zellstimulation 24
4.3. Behandlungsprotokolle 25
4.4. Die Untersuchung der iNOS-Aktivität mit dem Griess-Assay 28
- Inhaltsverzeichnis -
4.5 Die Untersuchung der metabolischen Aktivität mit dem MTT-
Assay 29
4.6. Die Untersuchung der reproduktiven Integrität mit dem
Clonogenic-Assay 30
4.7. Statistische Analyse 32
5. Ergebnisse 33-55
5.1. Beurteilung der reproduktiven Integrität unstimulierter und
stimulierter RAW-264.7-Makrophagen (Clonogenic-Assay) 33
5.2. Die metabolische Aktivität unstimulierter und stimulierter
RAW-264.7-Makrophagen (MTT-Assay) 35
5.3. Die kumulative Stickoxid-(NO-)Freisetzung nach Bestrahlung
unstimulierter und stimulierter RAW-264.7-Makrophagen
(Griess-Assay) 40
5.3.1. Die kumulative Stickoxid-(NO-)Freisetzung nach Bestrahlung
des kompletten Kulturmediums ergänzt mit 100uM NaNO2~
(Negativkontrolle) 40
5.3.2. Die kumulative Stickoxid-(NO-)Freisetzung nach Bestrahlung
von unstimulierten RAW-264.7-Makrophagen 40
5.3.3. Die dosisabhängige kumulative Stickoxid-(NO-)Freisetzung
nach Bestrahlung von stimulierten RAW-264.7-Makrophagen 42
5.3.3.1. Bestrahlung vor Zellstimulation 42
5.3.3.2. Bestrahlung nach Zellstimulation 47
6. Diskussion 56-70
6.1. Experimenteller Aufbau 57
6.1.1. Unstimulierte und stimulierte RAW-264.7-Makrophagen
- das verwendete /n-wf/u-Modell 57
6.1.2. Die verwendeten /n-wfro-Experimente 58
6.2. Modifikationen der unstimulierten und stimulierten RAW-
264.7-Makrophagen in-vitro durch die niedrig dosierte 61
Bestrahlung
6.3. Modifikationen der Stickoxid-(NO-)Freisetzung und der iNOS-
Produktion durch die niedrig dosierte Bestrahlung 62
6.4. Modifikationen im Entzündungsprozess durch die niedrig
dosierte Bestrahlung 69
- Inhaltsverzeichnis -
7. Zusammenfassung 71-74
8. Literaturverzeichnis 75-84
9. Anhang 85-90
9.1. Abbildungsverzeichnis 85
9.2. Tabellenverzeichnis 88
9.3. Abkürzungsverzeichnis 89
- Abbildungsverzeichnis -
9. Anhang
9.1. Abbildunosverzeichnis
Abb.-Nr. Bezeichnung Seite
Abb. 1 Reaktionsweg L-Arginin zu L-Citrullin katalysiert durch die
Stickoxidsynthase (NOS). 10
Abb. 2 Schematische Darstellung der Induktion der Stickoxid¬
synthase (iNOS) während der entzündlichen Aktivierung von
Makrophagen durch verschiedene Zytokine. 10
Abb. 3 Experimenteller Aufbau zur Untersuchung der Bedeutung
des Zeitintervalls zwischen Stimulation und niedrig dosierter
Bestrahlung auf die iNOS-Expression stimulierter und nicht
stimulierter Makrophagen. Zeitpunkte der Bestrahlung,
Mediumwechsel und Probenentnahme. 27
Abb. 4 Reproduktive Integrität unstimulierter RAW-264.7-
Makrophagen, die 0 h nach Mediumwechsel bestrahlt
wurden (Gruppe A). Auszählung der Kolonien 10 Tage nach
Bestrahlung. 34
Abb. 5 Metabolische Aktivität unstimulierter RAW-264.7-Makro-
phagen, die 0 h nach Mediumwechsel bestrahlt wurden
(Gruppe A). 35
Abb. 6 Metabolische Aktivität von RAW-264.7-Makrophagen, die
6 h vor LPS-/IFN-y-Stimulation (0,1 ug mlViOO U ml1)
bestrahlt wurden (Gruppe B). 36
Abb. 7 Metabolische Aktivität von RAW-264.7-Makrophagen, die
0 h nach LPS-/IFN-y-Stimulation (0,1 ug ml 1/100 U ml 1)
bestrahlt wurden (Gruppe E). 37
Abb. 8 Metabolische Aktivität von RAW-264.7-Makrophagen, die
6 h nach LPS-/IFN-y-Stimulation (0,1 ug mlViOO U ml 1)
bestrahlt wurden (Gruppe H). 38
Abb. 9a Kumulative NO2-Produktion durch RAW-264.7-Makro-
phagen, die 0 h nach Mediumwechsel mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe A). 41
Abb9b Zeitveriauf der kumulativen NO2-Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 0 h nach Mediumwechsel mit
0-10 Gy bestrahlt wurden (Gruppe A). 41
85
- Abbildungsverzeichnis -
Abb. 10a Dosisabhängigkeit der kumulativen N02 -Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 6 h vor LPS-/IFN^r-
Stimulation (0,1 ug mlViOO U ml 1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe B). 43
Abb. 10b Zeitverlauf der kumulativen NO2 -Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 6 h vor LPS-/IFN-y-Stimulation
(0,1 ug ml 1/ 100 U ml1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe B). 43
Abb. 11a Dosisabhängigkeit der kumulativen NO2 -Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 4 h vor LPS-/IFN-y-
Stimulation (0,1 ug ml 1/100 U ml 1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe C). 45
Abb. 11b Zeitverlauf der kumulativen NO2 -Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 4 h vor LPS-/IFN-7-Stimulation
(0,1 ug ml 7100 U ml 1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe C). 45
Abb. 12a Dosisabhängigkeit der kumulativen NO2-Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 2 h vor LPS-/IFN-y-
Stimulation (0,1 ug ml 1/100 U ml 1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe D). 46
Abb. 12b Zeitverlauf der kumulativen NO2 -Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 2 h vor LPS-/IFN-7-Stimulation
(0,1 pg ml 7100 U ml 1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe D). 46
Abb. 13a Dosisabhängigkeit der kumulativen NO2 -Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 0 h nach LPS-/IFN^-
Stimulation (0,1 ug ml 1/100 U ml 1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe E). 48
Abb. 13b Zeitverlauf der kumulativen NO2 -Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 0 h nach LPS-/IFN-y-Stimulation
(0,1 |jg ml 7100 U ml 1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe E). 48
Abb. 14a Dosisabhängigkeit der kumulativen N02 -Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 2 h nach LPS-/IFN-y-
Stimulation (0,1 M9 mrViO U mr1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe F). 49
Abb. 14b Zeitverfauf der kumulativen NO2 -Produktion durch RAW-
264 7-Makrophagen, die 2 h nach LPS/ IFN-y-Stimulation
(0,1 M9 ml 710 U ml 1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe F).
86
- Abbildungsverzeichnis -
Abb. 15a Dosisabhängigkeit der kumulativen NO2 -Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 4 h nach LPS-/IFN-y-
Stimulation (0,1 ug ml 1/100 U ml 1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe G). 51
Abb. 15b Zeitverlauf der kumulativen NO2 -Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 4 h nach LPS-/IFN^y-Stimulation
(0,1 pg ml 7100 U ml1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe G). 51
Abb. 16a Dosisabhängigkeit der kumulativen N02 -Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 6 h nach LPS-/IFN-y-
Stimulation (0,1 ug ml 1/100 U ml 1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe H). 52
Abb. 16b Zeitverlauf der kumulativen NO2 -Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 6 h nach LPS-/IFN-Y-Stimulation
(0,1 ug ml 7100 U ml 1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe H). 52
Abb. 17 Dosisabhängige kumulative NO2 -Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die nach LPS-/IFN-?-Stimulation (0,1
|jg mlViOO U ml 1 bzw. bei -2 h RT 0,1 ug ml 1/10 U ml 1) mit
0-10 Gy bestrahlt wurden zum Zeitpunkt 30 h nach
Zellstimulation. Die RT erfolgte 6, 4, 2 h vor oder 0, 2,4,6 h 53
nach Zellstimulation.
Abb. 18 Dosisabhängigkeit der kumulativen NO2-Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen in Experiment I (ausgesäte
Zellzahl der Proben entspricht knapp 2/3, der Proben des
Experiments II), die 0 h nach LPS-/IFN-y-Stimulation
(0,1 ug ml 1/100 U ml 1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe E). 55
Abb. 19 Dosisabhängigkeit der kumulativen NO2 -Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, in Experiment II, die 0 h nach
LPS-/IFN-y-Stimulation (0,1 ug ml 1/100 U ml 1) mit 0-10 Gy
bestrahlt wurden (Gruppe E). 55
87
- Tabellenverzeichnis -
9.2. Tabellenverzeichnis
Tab.-Nr. Bezeichnung Seite
Tab. 1 Bestrahlungszeiten für die verschiedenen Einzeitdosen. 25
Tab. 2 Gruppeneinteilung der /n-wfro-Experimente: Zeitpunkte der
Bestrahlung nach bzw. vor der Stimulation oder dem
Mediumwechsel. 26
Tab. 3 Erstellung der Eichkurve mit Natrium-Nitrit (100 mM). 29
88
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Titel: Der Einfluss des Zeitintervalls zwischen Stimulation und niedrig dosierter Bestrahlung auf die iNOS-
Autor: Loppnow, Gabriela
Jahr: 2008
- Inhaltsverzeichnis -
Inhaltsverzeichnis
1. Einleitung 1-3
2. Theoretischer Teil 4-22
2.1. Entzündung und Entzündungsreaktionen 4
2.1.1. Der Begriff der Entzündung 4
2.1.2. Übersicht über die Entzündungsreaktionen und das
Abwehrsystem 4
2.1.3. Die Rolle der Makrophagen bei der Entzündung 6
2.1.4. Die Rolle des Stickoxids (NO) und der induzierbaren
Stickoxidsynthase (iNOS) bei der Entzündung 8
2.2. Strahlentherapie von gutartigen Erkrankungen 12
2.3. Antiinflammatorische Radiotherapie 15
2.3.1. Gegenwärtiger Stand der antiinflammatorischen
Radiotherapie 15
2.3.2. Der experimentelle Nachweis der antiinflammatorischen
Effektivität 17
2.3.3. //7-wVo-Experimente: Arthritismodelle und das Air-Pouch-
Modell 17
2.3.3.1. Arthritismodelle 17
2.3.3.2. Das Air-Pouch-Modell - ein Modell der chronisch
granulomatösen Entzündung 19
2.3.4. /n-wfro-Experimente: Effekte der niedrig dosierten
Bestrahlung auf zellulärer Ebene 20
2.3.4.1. Effekte der niedrig dosierten Bestrahlung auf Makrophagen 20
3. Problemstellung 23
4. Material und Methoden 24-32
4.1. Zellkultur von murinen RAW-264.7-Makrophagen 24
4.2. Zellstimulation 24
4.3. Behandlungsprotokolle 25
4.4. Die Untersuchung der iNOS-Aktivität mit dem Griess-Assay 28
- Inhaltsverzeichnis -
4.5 Die Untersuchung der metabolischen Aktivität mit dem MTT-
Assay 29
4.6. Die Untersuchung der reproduktiven Integrität mit dem
Clonogenic-Assay 30
4.7. Statistische Analyse 32
5. Ergebnisse 33-55
5.1. Beurteilung der reproduktiven Integrität unstimulierter und
stimulierter RAW-264.7-Makrophagen (Clonogenic-Assay) 33
5.2. Die metabolische Aktivität unstimulierter und stimulierter
RAW-264.7-Makrophagen (MTT-Assay) 35
5.3. Die kumulative Stickoxid-(NO-)Freisetzung nach Bestrahlung
unstimulierter und stimulierter RAW-264.7-Makrophagen
(Griess-Assay) 40
5.3.1. Die kumulative Stickoxid-(NO-)Freisetzung nach Bestrahlung
des kompletten Kulturmediums ergänzt mit 100uM NaNO2~
(Negativkontrolle) 40
5.3.2. Die kumulative Stickoxid-(NO-)Freisetzung nach Bestrahlung
von unstimulierten RAW-264.7-Makrophagen 40
5.3.3. Die dosisabhängige kumulative Stickoxid-(NO-)Freisetzung
nach Bestrahlung von stimulierten RAW-264.7-Makrophagen 42
5.3.3.1. Bestrahlung vor Zellstimulation 42
5.3.3.2. Bestrahlung nach Zellstimulation 47
6. Diskussion 56-70
6.1. Experimenteller Aufbau 57
6.1.1. Unstimulierte und stimulierte RAW-264.7-Makrophagen
- das verwendete /n-wf/u-Modell 57
6.1.2. Die verwendeten /n-wfro-Experimente 58
6.2. Modifikationen der unstimulierten und stimulierten RAW-
264.7-Makrophagen in-vitro durch die niedrig dosierte 61
Bestrahlung
6.3. Modifikationen der Stickoxid-(NO-)Freisetzung und der iNOS-
Produktion durch die niedrig dosierte Bestrahlung 62
6.4. Modifikationen im Entzündungsprozess durch die niedrig
dosierte Bestrahlung 69
- Inhaltsverzeichnis -
7. Zusammenfassung 71-74
8. Literaturverzeichnis 75-84
9. Anhang 85-90
9.1. Abbildungsverzeichnis 85
9.2. Tabellenverzeichnis 88
9.3. Abkürzungsverzeichnis 89
- Abbildungsverzeichnis -
9. Anhang
9.1. Abbildunosverzeichnis
Abb.-Nr. Bezeichnung Seite
Abb. 1 Reaktionsweg L-Arginin zu L-Citrullin katalysiert durch die
Stickoxidsynthase (NOS). 10
Abb. 2 Schematische Darstellung der Induktion der Stickoxid¬
synthase (iNOS) während der entzündlichen Aktivierung von
Makrophagen durch verschiedene Zytokine. 10
Abb. 3 Experimenteller Aufbau zur Untersuchung der Bedeutung
des Zeitintervalls zwischen Stimulation und niedrig dosierter
Bestrahlung auf die iNOS-Expression stimulierter und nicht
stimulierter Makrophagen. Zeitpunkte der Bestrahlung,
Mediumwechsel und Probenentnahme. 27
Abb. 4 Reproduktive Integrität unstimulierter RAW-264.7-
Makrophagen, die 0 h nach Mediumwechsel bestrahlt
wurden (Gruppe A). Auszählung der Kolonien 10 Tage nach
Bestrahlung. 34
Abb. 5 Metabolische Aktivität unstimulierter RAW-264.7-Makro-
phagen, die 0 h nach Mediumwechsel bestrahlt wurden
(Gruppe A). 35
Abb. 6 Metabolische Aktivität von RAW-264.7-Makrophagen, die
6 h vor LPS-/IFN-y-Stimulation (0,1 ug mlViOO U ml1)
bestrahlt wurden (Gruppe B). 36
Abb. 7 Metabolische Aktivität von RAW-264.7-Makrophagen, die
0 h nach LPS-/IFN-y-Stimulation (0,1 ug ml'1/100 U ml"1)
bestrahlt wurden (Gruppe E). 37
Abb. 8 Metabolische Aktivität von RAW-264.7-Makrophagen, die
6 h nach LPS-/IFN-y-Stimulation (0,1 ug mlViOO U ml"1)
bestrahlt wurden (Gruppe H). 38
Abb. 9a Kumulative NO2-Produktion durch RAW-264.7-Makro-
phagen, die 0 h nach Mediumwechsel mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe A). 41
Abb9b Zeitveriauf der kumulativen NO2-Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 0 h nach Mediumwechsel mit
0-10 Gy bestrahlt wurden (Gruppe A). 41
85
- Abbildungsverzeichnis -
Abb. 10a Dosisabhängigkeit der kumulativen N02"-Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 6 h vor LPS-/IFN^r-
Stimulation (0,1 ug mlViOO U ml"1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe B). 43
Abb. 10b Zeitverlauf der kumulativen NO2"-Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 6 h vor LPS-/IFN-y-Stimulation
(0,1 ug ml"1/ 100 U ml1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe B). 43
Abb. 11a Dosisabhängigkeit der kumulativen NO2"-Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 4 h vor LPS-/IFN-y-
Stimulation (0,1 ug ml"1/100 U ml"1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe C). 45
Abb. 11b Zeitverlauf der kumulativen NO2"-Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 4 h vor LPS-/IFN-7-Stimulation
(0,1 ug ml" 7100 U ml"1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe C). 45
Abb. 12a Dosisabhängigkeit der kumulativen NO2-Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 2 h vor LPS-/IFN-y-
Stimulation (0,1 ug ml"1/100 U ml"1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe D). 46
Abb. 12b Zeitverlauf der kumulativen NO2"-Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 2 h vor LPS-/IFN-7-Stimulation
(0,1 pg ml" 7100 U ml"1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe D). 46
Abb. 13a Dosisabhängigkeit der kumulativen NO2"-Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 0 h nach LPS-/IFN^-
Stimulation (0,1 ug ml'1/100 U ml"1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe E). 48
Abb. 13b Zeitverlauf der kumulativen NO2'-Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 0 h nach LPS-/IFN-y-Stimulation
(0,1 |jg ml" 7100 U ml"1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe E). 48
Abb. 14a Dosisabhängigkeit der kumulativen N02"-Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 2 h nach LPS-/IFN-y-
Stimulation (0,1 M9 mrViO U mr1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe F). 49
Abb. 14b Zeitverfauf der kumulativen NO2"-Produktion durch RAW-
264 7-Makrophagen, die 2 h nach LPS/ IFN-y-Stimulation
(0,1 M9 ml" 710 U ml'1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe F).
86
- Abbildungsverzeichnis -
Abb. 15a Dosisabhängigkeit der kumulativen NO2"-Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 4 h nach LPS-/IFN-y-
Stimulation (0,1 ug ml'1/100 U ml"1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe G). 51
Abb. 15b Zeitverlauf der kumulativen NO2"-Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 4 h nach LPS-/IFN^y-Stimulation
(0,1 pg ml" 7100 U ml1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe G). 51
Abb. 16a Dosisabhängigkeit der kumulativen N02"-Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, die 6 h nach LPS-/IFN-y-
Stimulation (0,1 ug ml"1/100 U ml"1) mit 0-10 Gy bestrahlt
wurden (Gruppe H). 52
Abb. 16b Zeitverlauf der kumulativen NO2"-Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die 6 h nach LPS-/IFN-Y-Stimulation
(0,1 ug ml"7100 U ml"1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe H). 52
Abb. 17 Dosisabhängige kumulative NO2 -Produktion durch RAW-
264.7-Makrophagen, die nach LPS-/IFN-?-Stimulation (0,1
|jg mlViOO U ml"1 bzw. bei -2 h RT 0,1 ug ml"1/10 U ml"1) mit
0-10 Gy bestrahlt wurden zum Zeitpunkt 30 h nach
Zellstimulation. Die RT erfolgte 6, 4, 2 h vor oder 0, 2,4,6 h 53
nach Zellstimulation.
Abb. 18 Dosisabhängigkeit der kumulativen NO2-Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen in Experiment I (ausgesäte
Zellzahl der Proben entspricht knapp 2/3, der Proben des
Experiments II), die 0 h nach LPS-/IFN-y-Stimulation
(0,1 ug ml"1/100 U ml"1) mit 0-10 Gy bestrahlt wurden
(Gruppe E). 55
Abb. 19 Dosisabhängigkeit der kumulativen NO2"-Produktion durch
RAW-264.7-Makrophagen, in Experiment II, die 0 h nach
LPS-/IFN-y-Stimulation (0,1 ug ml"1/100 U ml"1) mit 0-10 Gy
bestrahlt wurden (Gruppe E). 55
87
- Tabellenverzeichnis -
9.2. Tabellenverzeichnis
Tab.-Nr. Bezeichnung Seite
Tab. 1 Bestrahlungszeiten für die verschiedenen Einzeitdosen. 25
Tab. 2 Gruppeneinteilung der /n-wfro-Experimente: Zeitpunkte der
Bestrahlung nach bzw. vor der Stimulation oder dem
Mediumwechsel. 26
Tab. 3 Erstellung der Eichkurve mit Natrium-Nitrit (100 mM). 29
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