Wirkung von Erythropoietin bei experimentellem Trauma des Nervus opticus:
Gespeichert in:
| 1. Verfasser: | |
|---|---|
| Format: | Buch |
| Sprache: | German |
| Veröffentlicht: |
2005
|
| Schlagworte: | |
| Online-Zugang: | Inhaltsverzeichnis |
| Beschreibung: | Tübingen, Univ., Diss., 2005 (Nur beschränkt für den Austausch) |
| Beschreibung: | 118 S. Ill., graph. Darst. 21 cm |
Internformat
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Datensatz im Suchindex
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|---|---|
| adam_text | Inhaltsverzeichnis 3
Inhaltsverzeichnis
Darstellungsverzeichnis 2
Abkürzungsverzeichnis 2
1 Einleitung 2
1.1 Erythropoietin 2
1.1.1 Erythropoietin als hämatopoetischer Faktor 2
1.1.2 Erythropoietinproduktion in Niere und Leber 2
1.1.3 Signaltransduktionsmechanismen des Erythropoietins 2
1.1.3.1 Aktivierung des JAK2 / STAT5-Pathway 2
1.1.3.2 Bcl-2-Familie, ERK und PI(3)K/Akt 2
1.1.4 Rekombinantes humanes Erythropoietin 2
1.1.5 Erythropoietin im nicht-hämatopoetischen Gewebe 2
1.1.6 Erythropoietin im Gehirn 2
1.1.6.1 Neuroprotektive Wirkung von Erythropoietin in in
vitro Studien 2
1.1.6.2 Neuroprotektive Wirkung von Erythropoietin in in
vivo Studien 2
1.1.7 Erythropoietin in der Retina 2
1.1.7.1 Erythropoietin in retinalen Neuronen 2
1.2 Traumatische Optikusneuropathie (TON) 2
1.2.1 Problemstellung 2
1.2.2 Definition und Pathophysiologie der traumatischen
Optikusneuropathie 2
1.2.2.1 Zelluläre Pathomechanismen bei der traumatischen
Optikusneuropathie 2
1.2.3 Therapeutische Ansätze 2
1.3 Studienziel 2
Inhaltsverzeichnis 4
2 Material und Methode 2
2.1 Tiermodell 2
2.1.1 Operationsschritte und Blutentnahmen zur Bestimmung der
EPO-Pharmakokinetik 2
2.1.2 Bestimmung von Erythropoietin im Enzymimmunoassay
(ELISA) 2
2.1.3 Erzeugung einer standardisierten TON 2
2.1.4 Mikroläsionsapparatur 2
2.1.5 Perfusion 2
2.1.6 Präparation der whole-mounts 2
2.1.7 Kresylviolettfärbung der whole mounts 2
2.1.8 Auswertung 2
2.1.8.1 Histologische Befundung und morphometrische
Auswertung der retinalen Ganglienzellschicht 2
2.1.8.2 Datenverarbeitung und statistische Auswertung 2
2.2 Versuchsprotokoll 2
2.2.1 Tiergruppen zur Bestimmung der EPO-Pharmakokinetik 2
2.2.2 Tiergruppen zur Erzeugung einer standardisierten TON 2
3 Ergebnisse 2
3.1 Pharmakokinetik des Erythropoietins 2
3.1.1 Zeitabhängige Kinetik nach einmaliger subkutaner EPO-
Applikation 2
3.1.2 Zeitabhängige Kinetik unter multipler EPO-Applikation 2
3.2 Erythropoietinbehandlung im tierexperimentellen Modell der TON 2
3.2.1 Histomorphologische Veränderungen in der retinalen
Ganglienzellschicht (RGL) 2
Inhaltsverzeichnis 5
4 Diskussion 2
4.1 Erythropoietin in der Therapie der traumatischen Optikusneuropathie 2
4.1.1 Das Tiermodell 2
4.1.1.1 Die Läsionsapparatur 2
4.1.1.2 Der Perfusionszeitpunkt 2
4.1.2 Die histomorphometrische Auswertung 2
4.1.2.1 Bewertung der whole mounf -Färbung mit
Kresylviolett 2
4.1.2.2 Histomorphometrische Evaluation 2
4.1.3 Gegenwärtiger Stand und Perspektiven in der Behandlung
der traumatischen Optikusneuropathie 2
4.1.3.1 Chirurgische Therapie der traumatischen
Optikusneuropathie 2
4.1.3.2 Medikamentöse Therapie der traumatischen
Optikusneuropathie 2
4.1.3.3 Kombinationstherapie und neue therapeutische
Ansätze 2
4.1.4 Ausblick 2
5 Zusammenfassung 2
Literaturverzeichnis 2
Anhang 2
Danksagung 2
Lebenslauf 2
Darstellungsverzeichnis 6
Darstellungsverzeichnis
Abb. 1.1 Regulation des HIF-1-Transkriptionsfaktors 2
Abb. 2.1 Darstellung der Supraorbitalkante 2
Abb. 2.2 Präparation von V. und N. supratrochlearis 2
Abb. 2.3 Sicht auf den N. opticus 2
Abb. 2.4 Positionierung der Basisplatte unter dem N. opticus 2
Abb. 2.5 Sehnervkompression 2
Abb. 2.6 Schematische Darstellung der kalibrierten Sehnervschädigung. Modifiziert
nach Gellrich [66] 2
Abb. 2.7 Anordnung der beiden Netzhäute einer Ratte als whole-mounts und
Kennzeichnung der Netzhautlappen L1 bis L.5 auf beiden Seiten. Modifiziert
nach Zerfowski [198] 2
Abb. 2.8 Screenshot der Bildanalyse 2
Abb. 2.9 Links: Gruppierte „Mean Diamonds , rechts: Vergleichskreise des Dunnett-
Tests 2
Abb. 2.10 Interpretation der Dunnett-Vergleichskreise 2
Abb. 3.1 Zeitabhängige Kinetik der mittleren EPO-Serumkonzentrationen nach
einmaliger s.c. Applikation von 500 U/kg KG bei 3 Ratten über 24 h 2
Abb. 3.2 Zusammenfassende Darstellung der zeitabhängigen Kinetik der mittleren
EPO-Serumkonzentrationen (CSSmln) nach einmaliger s.c. Applikation von
500 U/kg KG bei 3 Ratten über 24 h, sowie nach s.c. Applikation von 500
U/kg KG alle 24 h über 120 h bei 3 weiteren Ratten. Theoretisch
angenommene EPO-Serumkonzentrationen innerhalb der 24-Stunden-
Rhythmen in Form eines gestrichelten, sinusähnlichen Kurvenverlaufs
eingezeichnet 2
Abb. 3.3 Übersichtsyergrößerung (10fach) einer ungeschädigten linken Netzhaut mit
Papillenregion am unteren rechten Bildrand 2
Abb. 3.4 Dieselbe linke Netzhaut wie in Abb. 3.3 bei 40facher Vergrößerung 2
Abb. 3.5 Stark kompressionsgeschädigte rechte Netzhaut in 40facher Vergrößerung
(vgl. Abb. 3.4) 2
Abb. 3.6 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit vom Gesichtsfeld
(=Bildnummer) in der Kontrollgruppe EPOi ontr 2
Abb. 3.7 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit vom Gesichtsfeld
(=Bildnummer) in der Behandlungsgruppe EPOprä 2
Abb. 3.8 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit vom Gesichtsfeld
(=Bildnummer) in der Behandlungsgruppe EPOp„st 2
Abb. 3.9 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der zentralen (1),
intermediären (2) und peripheren (3) Zone in der Kontrollgruppe EPOKomr 2
Abb. 3.10 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der zentralen (1),
intermediären (2) und peripheren (3) Zone in der Behandlungsgruppe EPOp,a 2
Abb. 3.11 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der zentralen (1),
intermediären (2) und peripheren (3) Zone in der Behandlungsgruppe
EPOPos, 2
Darstellungsverzeichnis 7
Abb. 3.12 Links: Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten
und rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der
Behandlungsgruppe (EPOKomr=1, EPOPra=2, EPOP„51=3) für die zentrale
Zone, rechts: graphische Darstellung des Dunnett-Testergebnisses 2
Abb. 3.13 Links: Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten
und rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der
Behandlungsgruppe (EPOKomr=1. EPOpra=2, EPOpost=3) für die intermediäre
Zone, rechts: graphische Darstellung des Dunnett-Testergebnisses 2
Abb. 3.14 Links: Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten
und rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der
Behandlungsgruppe (EPOKomf1, EP0Pra=2, EPOPos,=3) für die periphere
Zone, rechts: graphische Darstellung des Dunnett-Testergebnisses 2
Abb. 3.15 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der Lappenzugehörigkeit
(L,-L5) der ausgezählten Gesichtsfelder für die Kontrollgruppe EPOK0nir 2
Abb. 3.16 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der Lappenzugehörigkeit
(L,-L5) der ausgezählten Gesichtsfelder für die Behandlungsgruppe EPOPra 2
Abb. 3.17 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der Lappenzugehörigkeit
(L,-L5) der ausgezählten Gesichtsfelder für die Behandlungsgruppe EPOPra, 2
Abb. 3.18 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der Behandlungsgruppe
(EPOKor*=1. EP0Prä=2 und EPOPos,=3). Links: Gruppenmittelwerte mit 95%-
Vertrauensbereich in Form von „Mean Diamonds , rechts: Dunnett-Kreise 2
Abb. 3.19 Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der Behandlungsgruppe
(EPOKont,=1, EPOp,ä=2 und EPOPost=3). Links: Gruppenmittelwerte mit 95%-
Vertrauens-bereicn in Form von „Mean Diamonds , rechts: Dunnett-Kreise 2
Abb. 3.20 Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der zentralen (1),
intermediären (2) und peripheren (3) Zone in der Kontrollgruppe EPOXOnir 2
Abb. 3.21 Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der zentralen (1),
intermediären (2) und peripheren (3) Zone in der Behandlungsgruppe EPOPra 2
Abb. 3.22 Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der zentralen (1),
intermediären (2) und peripheren (3) Zone in der Behandlungsgruppe
EPOPos, 2
Abb. 3.23 Links: Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken
nichtgeschädigten und rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von
der Behandlungsgruppe (EPOKonir=1, EPOPtä=2 und EPOPos,=3) für die
zentrale Zone, rechts: graphische Darstellung des Dunnett-Testergebnisses 2
Abb. 3.24 Links: Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken
nichtgeschädigten und rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von
der Behandlungsgruppe (EPOKo«^1, EPOPra=2 und EPOP 1S,=3) für die
intermediäre Zone, rechts: graphische Darstellung des Dunnett-
Testergebnisses 2
Abb. 3.25 Links: Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken
nichtgeschädigten und rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von
der Behandlungsgruppe (EP0K„r«,=1. EPOPra=2 und EPOPos,=3) für die
periphere Zone, rechts: graphische Darstellung des Dunnett-Testergebnisses 2
Abb. 4.1 Links: schematische Darstellung der 10 Retinaschichten, rechts: senkrechter
Schnitt durch isoliertes histologisches Netzhautpräparat der Ratte [102] 2
Abb. 4.2 Darstellung einiger möglicher Signaltransduktionsmechanismen des EPOs.
Modifiziert nach Dawson [39] 2
Darstellungsverzeichnis 8
Tab. 1 Gruppenbezeichnung, Anzahl der Versuchstiere, Art des Sehnervtraumas,
Dosierung und zeitlicher Ablauf der Epoetin beta-Gabe 2
Tab. 2 Anzahl der Ganglien im linken nichtgeschädigten (GZ li) und rechten
geschädigten (GZ re) Auge pro Gesichtsfeld (Bildnummer [BN]), sowie die
Differenz (diff GZ li-re), entsprechend dem Gesichtsfeld (Bildnummer [BN]),
der Zone (Z) und des Lappens (L) für die jeweils 6 Tiere einer Gruppe
(EPOKont„ EPOPrt, EPOPO81) 2
Tab. 3 Mittlere Fläche der Ganglien im linken nichtgeschädigten (mF li) und rechten
geschädigten (mF re) Auge pro Gesichtsfeld (Bildnummer [BN]), sowie die
Differenz (diff mF li-re), entsprechend dem Gesichtsfeld (Bildnummer [BN]),
der Zone (Z) und des Lappens (L) für die jeweils 6 Tiere einer Gruppe
(EPOKo«r, EPOprä, EPO osl). Werte auf zweite Nachkommastelle gerundet 2
|
| adam_txt |
Inhaltsverzeichnis 3
Inhaltsverzeichnis
Darstellungsverzeichnis 2
Abkürzungsverzeichnis 2
1 Einleitung 2
1.1 Erythropoietin 2
1.1.1 Erythropoietin als hämatopoetischer Faktor 2
1.1.2 Erythropoietinproduktion in Niere und Leber 2
1.1.3 Signaltransduktionsmechanismen des Erythropoietins 2
1.1.3.1 Aktivierung des JAK2 / STAT5-Pathway 2
1.1.3.2 Bcl-2-Familie, ERK und PI(3)K/Akt 2
1.1.4 Rekombinantes humanes Erythropoietin 2
1.1.5 Erythropoietin im nicht-hämatopoetischen Gewebe 2
1.1.6 Erythropoietin im Gehirn 2
1.1.6.1 Neuroprotektive Wirkung von Erythropoietin in in
vitro Studien 2
1.1.6.2 Neuroprotektive Wirkung von Erythropoietin in in
vivo Studien 2
1.1.7 Erythropoietin in der Retina 2
1.1.7.1 Erythropoietin in retinalen Neuronen 2
1.2 Traumatische Optikusneuropathie (TON) 2
1.2.1 Problemstellung 2
1.2.2 Definition und Pathophysiologie der traumatischen
Optikusneuropathie 2
1.2.2.1 Zelluläre Pathomechanismen bei der traumatischen
Optikusneuropathie 2
1.2.3 Therapeutische Ansätze 2
1.3 Studienziel 2
Inhaltsverzeichnis 4
2 Material und Methode 2
2.1 Tiermodell 2
2.1.1 Operationsschritte und Blutentnahmen zur Bestimmung der
EPO-Pharmakokinetik 2
2.1.2 Bestimmung von Erythropoietin im Enzymimmunoassay
(ELISA) 2
2.1.3 Erzeugung einer standardisierten TON 2
2.1.4 Mikroläsionsapparatur 2
2.1.5 Perfusion 2
2.1.6 Präparation der "whole-mounts" 2
2.1.7 Kresylviolettfärbung der"whole mounts" 2
2.1.8 Auswertung 2
2.1.8.1 Histologische Befundung und morphometrische
Auswertung der retinalen Ganglienzellschicht 2
2.1.8.2 Datenverarbeitung und statistische Auswertung 2
2.2 Versuchsprotokoll 2
2.2.1 Tiergruppen zur Bestimmung der EPO-Pharmakokinetik 2
2.2.2 Tiergruppen zur Erzeugung einer standardisierten TON 2
3 Ergebnisse 2
3.1 Pharmakokinetik des Erythropoietins 2
3.1.1 Zeitabhängige Kinetik nach einmaliger subkutaner EPO-
Applikation 2
3.1.2 Zeitabhängige Kinetik unter multipler EPO-Applikation 2
3.2 Erythropoietinbehandlung im tierexperimentellen Modell der TON 2
3.2.1 Histomorphologische Veränderungen in der retinalen
Ganglienzellschicht (RGL) 2
Inhaltsverzeichnis 5
4 Diskussion 2
4.1 Erythropoietin in der Therapie der traumatischen Optikusneuropathie 2
4.1.1 Das Tiermodell 2
4.1.1.1 Die Läsionsapparatur 2
4.1.1.2 Der Perfusionszeitpunkt 2
4.1.2 Die histomorphometrische Auswertung 2
4.1.2.1 Bewertung der "whole mounf'-Färbung mit
Kresylviolett 2
4.1.2.2 Histomorphometrische Evaluation 2
4.1.3 Gegenwärtiger Stand und Perspektiven in der Behandlung
der traumatischen Optikusneuropathie 2
4.1.3.1 Chirurgische Therapie der traumatischen
Optikusneuropathie 2
4.1.3.2 Medikamentöse Therapie der traumatischen
Optikusneuropathie 2
4.1.3.3 Kombinationstherapie und neue therapeutische
Ansätze 2
4.1.4 Ausblick 2
5 Zusammenfassung 2
Literaturverzeichnis 2
Anhang 2
Danksagung 2
Lebenslauf 2
Darstellungsverzeichnis 6
Darstellungsverzeichnis
Abb. 1.1 Regulation des HIF-1-Transkriptionsfaktors 2
Abb. 2.1 Darstellung der Supraorbitalkante 2
Abb. 2.2 Präparation von V. und N. supratrochlearis 2
Abb. 2.3 Sicht auf den N. opticus 2
Abb. 2.4 Positionierung der Basisplatte unter dem N. opticus 2
Abb. 2.5 Sehnervkompression 2
Abb. 2.6 Schematische Darstellung der kalibrierten Sehnervschädigung. Modifiziert
nach Gellrich [66] 2
Abb. 2.7 Anordnung der beiden Netzhäute einer Ratte als "whole-mounts" und
Kennzeichnung der Netzhautlappen L1 bis L.5 auf beiden Seiten. Modifiziert
nach Zerfowski [198] 2
Abb. 2.8 Screenshot der Bildanalyse 2
Abb. 2.9 Links: Gruppierte „Mean Diamonds", rechts: Vergleichskreise des Dunnett-
Tests 2
Abb. 2.10 Interpretation der Dunnett-Vergleichskreise 2
Abb. 3.1 Zeitabhängige Kinetik der mittleren EPO-Serumkonzentrationen nach
einmaliger s.c. Applikation von 500 U/kg KG bei 3 Ratten über 24 h 2
Abb. 3.2 Zusammenfassende Darstellung der zeitabhängigen Kinetik der mittleren
EPO-Serumkonzentrationen (CSSmln) nach einmaliger s.c. Applikation von
500 U/kg KG bei 3 Ratten über 24 h, sowie nach s.c. Applikation von 500
U/kg KG alle 24 h über 120 h bei 3 weiteren Ratten. Theoretisch
angenommene EPO-Serumkonzentrationen innerhalb der 24-Stunden-
Rhythmen in Form eines gestrichelten, sinusähnlichen Kurvenverlaufs
eingezeichnet 2
Abb. 3.3 Übersichtsyergrößerung (10fach) einer ungeschädigten linken Netzhaut mit
Papillenregion am unteren rechten Bildrand 2
Abb. 3.4 Dieselbe linke Netzhaut wie in Abb. 3.3 bei 40facher Vergrößerung 2
Abb. 3.5 Stark kompressionsgeschädigte rechte Netzhaut in 40facher Vergrößerung
(vgl. Abb. 3.4) 2
Abb. 3.6 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit vom Gesichtsfeld
(=Bildnummer) in der Kontrollgruppe EPOi ontr 2
Abb. 3.7 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit vom Gesichtsfeld
(=Bildnummer) in der Behandlungsgruppe EPOprä 2
Abb. 3.8 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit vom Gesichtsfeld
(=Bildnummer) in der Behandlungsgruppe EPOp„st 2
Abb. 3.9 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der zentralen (1),
intermediären (2) und peripheren (3) Zone in der Kontrollgruppe EPOKomr 2
Abb. 3.10 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der zentralen (1),
intermediären (2) und peripheren (3) Zone in der Behandlungsgruppe EPOp,a 2
Abb. 3.11 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der zentralen (1),
intermediären (2) und peripheren (3) Zone in der Behandlungsgruppe
EPOPos, 2
Darstellungsverzeichnis 7
Abb. 3.12 Links: Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten
und rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der
Behandlungsgruppe (EPOKomr=1, EPOPra=2, EPOP„51=3) für die zentrale
Zone, rechts: graphische Darstellung des Dunnett-Testergebnisses 2
Abb. 3.13 Links: Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten
und rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der
Behandlungsgruppe (EPOKomr=1. EPOpra=2, EPOpost=3) für die intermediäre
Zone, rechts: graphische Darstellung des Dunnett-Testergebnisses 2
Abb. 3.14 Links: Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten
und rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der
Behandlungsgruppe (EPOKomf1, EP0Pra=2, EPOPos,=3) für die periphere
Zone, rechts: graphische Darstellung des Dunnett-Testergebnisses 2
Abb. 3.15 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der Lappenzugehörigkeit
(L,-L5) der ausgezählten Gesichtsfelder für die Kontrollgruppe EPOK0nir 2
Abb. 3.16 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der Lappenzugehörigkeit
(L,-L5) der ausgezählten Gesichtsfelder für die Behandlungsgruppe EPOPra 2
Abb. 3.17 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der Lappenzugehörigkeit
(L,-L5) der ausgezählten Gesichtsfelder für die Behandlungsgruppe EPOPra, 2
Abb. 3.18 Differenz der Ganglienzellzahl diff(NZ) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der Behandlungsgruppe
(EPOKor*=1. EP0Prä=2 und EPOPos,=3). Links: Gruppenmittelwerte mit 95%-
Vertrauensbereich in Form von „Mean Diamonds", rechts: Dunnett-Kreise 2
Abb. 3.19 Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der Behandlungsgruppe
(EPOKont,=1, EPOp,ä=2 und EPOPost=3). Links: Gruppenmittelwerte mit 95%-
Vertrauens-bereicn in Form von „Mean Diamonds", rechts: Dunnett-Kreise 2
Abb. 3.20 Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der zentralen (1),
intermediären (2) und peripheren (3) Zone in der Kontrollgruppe EPOXOnir 2
Abb. 3.21 Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der zentralen (1),
intermediären (2) und peripheren (3) Zone in der Behandlungsgruppe EPOPra 2
Abb. 3.22 Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken nichtgeschädigten und
rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von der zentralen (1),
intermediären (2) und peripheren (3) Zone in der Behandlungsgruppe
EPOPos, 2
Abb. 3.23 Links: Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken
nichtgeschädigten und rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von
der Behandlungsgruppe (EPOKonir=1, EPOPtä=2 und EPOPos,=3) für die
zentrale Zone, rechts: graphische Darstellung des Dunnett-Testergebnisses 2
Abb. 3.24 Links: Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken
nichtgeschädigten und rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von
der Behandlungsgruppe (EPOKo«^1, EPOPra=2 und EPOP 1S,=3) für die
intermediäre Zone, rechts: graphische Darstellung des Dunnett-
Testergebnisses 2
Abb. 3.25 Links: Differenz der Ganglienzellgröße diff(fläche) der linken
nichtgeschädigten und rechten geschädigten Netzhaut in Abhängigkeit von
der Behandlungsgruppe (EP0K„r«,=1. EPOPra=2 und EPOPos,=3) für die
periphere Zone, rechts: graphische Darstellung des Dunnett-Testergebnisses 2
Abb. 4.1 Links: schematische Darstellung der 10 Retinaschichten, rechts: senkrechter
Schnitt durch isoliertes histologisches Netzhautpräparat der Ratte [102] 2
Abb. 4.2 Darstellung einiger möglicher Signaltransduktionsmechanismen des EPOs.
Modifiziert nach Dawson [39] 2
Darstellungsverzeichnis 8
Tab. 1 Gruppenbezeichnung, Anzahl der Versuchstiere, Art des Sehnervtraumas,
Dosierung und zeitlicher Ablauf der Epoetin beta-Gabe 2
Tab. 2 Anzahl der Ganglien im linken nichtgeschädigten (GZ li) und rechten
geschädigten (GZ re) Auge pro Gesichtsfeld (Bildnummer [BN]), sowie die
Differenz (diff GZ li-re), entsprechend dem Gesichtsfeld (Bildnummer [BN]),
der Zone (Z) und des Lappens (L) für die jeweils 6 Tiere einer Gruppe
(EPOKont„ EPOPrt, EPOPO81) 2
Tab. 3 Mittlere Fläche der Ganglien im linken nichtgeschädigten (mF li) und rechten
geschädigten (mF re) Auge pro Gesichtsfeld (Bildnummer [BN]), sowie die
Differenz (diff mF li-re), entsprechend dem Gesichtsfeld (Bildnummer [BN]),
der Zone (Z) und des Lappens (L) für die jeweils 6 Tiere einer Gruppe
(EPOKo«r, EPOprä, EPO osl). Werte auf zweite Nachkommastelle gerundet 2 |
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