Isolierung und Untersuchung von dimethyldisulfid-abbauenden Bakterienstämmen aus Biofiltern:
Gespeichert in:
1. Verfasser: | |
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Format: | Buch |
Sprache: | German |
Veröffentlicht: |
1999
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Schlagworte: | |
Online-Zugang: | Inhaltsverzeichnis |
Beschreibung: | Leipzig, Univ., Diss., 1999 |
Beschreibung: | 135, [16] S. Ill., graph. Darst. : 21 cm |
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INHALTSVERZEICHNIS
INHALTSVERZEICHNIS
1.
EINLEITUNG
UND
ZIELSTELLUNG
1
2.
LITERATURUEBERSICHT
3
2.1.
BIOLOGISCHE
ABLUFTREINIGUNG
3
2.1.1.
VERFAHREN
DER
BIOLOGISCHEN
ABLUFTREINIGUNG
4
2.1.2.
MIKROBIOLOGISCHE
ASPEKTE
DER
BIOLOGISCHEN
ABLUFTREINIGUNG
6
2.2.
EIGENSCHAFTEN
UND
VORKOMMEN
VON
DMDS
9
2.2.1.
DMDS-EMISSIONEN
IM
NATUERLICHEN
OEKOSYSTEM
10
2.2.2.
DMDS
ALS
PROZESSSPEZIFISCHER
GERUCHSSTOFF
IN
INDUSTRIE
UND
LANDWIRTSCHAFT
12
2.3.
DER
MIKROBIELLE
ABBAU
VON
DMDS
14
3.
MATERIAL
UND
METHODEN
19
3.1.
GEWINNUNG
VON
DMDS-ABBAUENDEN
MIKROORGANISMEN
19
3.1.1.
BETRIEB
EINES
MODELLBIOFILTERS
19
3.1.1.1.
BIOFILTERAUFBAU
19
3.1.1.2.
VERSUCHSPARAMETER
21
3.1.1.3.
PHYSIKOCHEMISCHE
ANALYSEN
21
3.1.1.3.1.
BESTIMMUNG
DER
TROCKENSUBSTANZ
UND
MATERIALFEUCHTE
21
3.1.1.3.2.
BESTIMMUNG
DES
PH-WERTES
22
3.1.1.3.3.
BESTIMMUNG
DES
DMDS-GEHALTES
IN
ROH
UND
REINGAS
22
3.1.2.
ANREICHERUNG
DMDS-ABBAUENDER
MIKROORGANISMEN
23
3.1.3.
ISOLIERUNG
VON
REINKULTUREN
24
3.2.
STAMMHALTUNG
24
3.3.
TAXONOMISCHE
UNTERSUCHUNGEN
25
3.3.1.
ZELL
UND
KOLONIEMORPHOLOGIE
25
INHALTSVERZEICHNIS
3.3.2.
MOLEKULARBIOLOGISCHE
UNTERSUCHUNGEN
26
3.3.2.1.
DURCHFUEHRUNG
DER
16S
RRNA-ANALYSEN
26
3.3.2.2.
DURCHFUEHRUNG
DER
DNA-DNA-HYBRIDISIERUNGEN
27
3.3.2.3.
BESTIMMUNG
DES
G+C-GEHALTES
DER
DNA
27
3.3.3.
CHEMOTAXONOMISCHE
UNTERSUCHUNGEN
27
3.3.3.1.
BESTIMMUNG
DES
GESAMTZELLFETTSAEUREMUSTERS
27
3.3.3.2.
BESTIMMUNG
DER
POLYAMINE
29
3.3.3.3.
BESTIMMUNG
DER
POLAREN
LIPIDE
29
3.3.3.4.
BESTIMMUNG
DER
CHINONE
29
3.3.4.
PHYSIOLOGISCH-BIOCHEMISCHE
UNTERSUCHUNGEN
29
3.3.4.1.
VERWENDUNG
VON
API-TESTSYSTEMEN
30
3.3.4.2.
VERWERTUNG
VERSCHIEDENER
KOHLENSTOFF
UND
SCHWEFELVERBINDUNGEN
30
3.3.4.3.
WEITERE
PHYSIOLOGISCH-BIOCHEMISCHE
UNTERSUCHUNGEN
31
3.3.4.4.
UNTERSUCHUNG
DER
OPTIMALEN
WACHSTUMSBEDINGUNGEN
32
3.3.4.4.I.
ERMITTLUNG
DER
TEMPERATURABHAENGIGKEIT
DES
WACHSTUMS
33
3.3.4.4.2.
ERMITTLUNG
DER
PH-ABHAENGIGKEIT
DES
WACHSTUMS
33
3.3.4.4.3.
ERMITTLUNG
DER
OSMOTISCHEN
EMPFINDLICHKEIT
(HALOTOLERANZ)
33
3.4.
UNTERSUCHUNGEN
ZUM
DMDS-ABBAU
34
3.4.1.
UNTERSUCHUNGEN
ZUM
DMDS-ABBAU
DURCH
REINKULTUREN
35
3.4.2.
ABBAU
BEI
VERSCHIEDENEN
DMDS-KONZENTRATIONEN
35
3.4.3.
ANALYTISCHE
METHODEN
36
3.4.3.1.
BESTIMMUNG
DES
BAKTERIENWACHSTUMS
36
3.4.3.1.1.
TRUEBUNGSMESSUNG
36
3.4.3.1.2.
TROCKENMASSEBESTIMMUNG
36
3.4.3.2.
BESTIMMUNG
DES
PH-WERTES
36
3.4.3.3.
SAUERSTOFFMESSUNG
37
3.4.3.4.
QUANTITATIVE
BESTIMMUNG
VON
DMDS
37
3.4.3.5.
QUALITATIVE
BESTIMMUNG
DER
ABBAUPRODUKTE
38
3.4.3.6.
QUANTITATIVE
BESTIMMUNG
VON
SULFAT
39
3.5.
REAGENZIEN
UND
CHEMIKALIEN
39
3.6.
MIKROORGANISMEN
39
3.7.
STATISTISCHE
AUSWERTUNG
40
INHALTSVERZEICHNIS
4.
ERGEBNISSE
41
4.1.
GEWINNUNG
VON
DMDS-ABBAUENDEN
MIKROORGANISMEN
41
4.1.1.
BETRIEB
EINES
MODELLBIOFILTERS
41
4.1.1.1.
ABBAU
VON
DMDS
IM
MODELLBIOFILTER
41
4.1.1.2.
ERMITTLUNG
DES
PH-WERTES
UND
DER
MATERIALFEUCHTE
43
4.12.
ANREICHERUNG
DMDS-ABBAUENDER
MIKROORGANISMEN
44
4.1.3.
ABBAU
VON
DMDS
DURCH
MISCHKULTUREN
45
4.1.4.
ISOLIERUNG
VON
REINKULTUREN
46
4.2.
KULTIVIERUNG
DER
ISOLATE
42
UND
5
1
47
4.3.
TAXONOMISCHE
EINORDNUNG
DER
DMDS-ABBAUENDEN
ISOLATE
42
UND
51
48
4.3.1.
TAXONOMISCHE
EINORDNUNG
DES
ISOLATES
42
48
4.3.1.1.
ZELL
UND
KOLONIEMORPHOLOGIE
48
4.3.1.2.
MOLEKULARBIOLOGISCHE
CHARAKTERISIERUNG
50
4.3.1.3.
CHEMOTAXONOMISCHE
CHARAKTERISIERUNG
51
4.3.1.4.
PHYSIOLOGISCH-BIOCHEMISCHE
CHARAKTERISIERUNG
55
43.1.4.1.
UNTERSUCHUNG
DER
OPTIMALEN
WACHSTUMSBEDINGUNGEN
57
43.1.5.
UNTERSUCHUNG
DES
DMDS-ABBAUS
DURCH
REFERENZSTAEMME
62
4.3.2.
TAXONOMISCHE
EINORDNUNG
DES
ISOLATES
51
62
43.2.1.
ZELL-
UND
KOLONIEMORPHOLOGIE
62
43.2.2.
MOLEKULARBIOLOGISCHE
CHARAKTERISIERUNG
63
43.2.3.
CHEMOTAXONOMISCHE
CHARAKTERISIERUNG
63
43.2.4.
PHYSIOLOGISCH-BIOCHEMISCHE
CHARAKTERISIERUNG
64
43.2.4.1.
UNTERSUCHUNG
DER
OPTIMALEN
WACHSTUMSBEDINGUNGEN
65
4.4.
ABBAU
VON
DMDS
DURCH
DIE
ISOLATE
71
4.4.1.
ABBAU
VON
DMDS
DURCH
DAS
ISOLAT
42
IN
BATCH-KULTUR
71
4.4.1.1.
ISOLIERUNG
UND
CHARAKTERISIERUNG
VON
METABOLITEN
DES
DMDS-ABBAUS
72
4.4.1.2.
EINFLUSS
DER
SUBSTRATKONZENTRATION
AUF
DEN
ABBAU
VON
DMDS
74
4.4.2.
ABBAU
VON
DMDS
DURCH
DAS
ISOLAT
51
IN
BATCH-KULTUR
75
4.4.2.1.
ISOLIERUNG
UND
CHARAKTERISIERUNG
VON
METABOLITEN
DES
DMDS-ABBAUS
77
4.4.22.
EINFLUSS
DER
SUBSTRATKONZENTRATION
AUF
DEN
ABBAU
VON
DMDS
78
INHALTSVERZEICHNIS
5.
DISKUSSION
79
5.1.
GEWINNUNG
VON
DMDS-ABBAUENDEN
MIKROORGANISMEN
79
5.1.1.
ABBAU
VON
DMDS
IM
MODELLBIOFILTER
79
5.1.2.
ANREICHERUNG
UND
ISOLIERUNG
DMDS-ABBAUENDER
MIKROORGANISMEN
81
5.2.
TAXONOMISCHE
EINORDNUNG
DER
ISOLATE
84
5.2.1.
TAXONOMISCHE
EINORDNUNG
DES
ISOLATES
42
84
5.2.1.1.
ABGRENZUNG
DES
ISOLATES
42
VON
DEN
SPEZIES
DER
GATTUNGEN
METHYLOVORUS
88
UND
METKYLORHABDUS
5.2.1.2.
ABGRENZUNG
DES
ISOLATES
42
VON
DEN
BISHER
BESCHRIEBENEN
SPEZIES
91
DER
GATTUNG
METHYLOPHILUS
5.2.2.
TAXONOMISCHE
EINORDNUNG
DES
ISOLATES
51
94
5.3.
ABBAU
VON
DMDS
DURCH
DIE
ISOLATE
42
UND
51
97
5.3.1.
EINFLUSS
DER
SUBSTRATKONZENTRATION
AUF
DEN
ABBAU
VON
DMDS
103
DURCH
DIE
ISOLATE
5.4.
AUSBLICK
104
6.
ZUSAMMENFASSUNG
106
6.1.
SUMMARY
108
7.
LITERATURVERZEICHNIS
110
ANHANG
DANKSAGUNG |
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author | Raschke, Annett |
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