Borna-Enzephalitis und Mikroglia: immunhistochemische und photometrische Untersuchungen
Gespeichert in:
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| Format: | Buch |
| Sprache: | German |
| Veröffentlicht: |
Hamburg
Kovač
1996
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| Beschreibung: | Zugl.: Düsseldorf, Univ., Diss., 1996 |
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ABKÜRZUNGEN 1
1 EINLEITUNG 3
2 STAND DER FORSCHUNG 5
2.1 Borna Krankheit 5
2.1.1 Historischer Überblick 5
2.1.2 Erregercharakterisierung 6
2.1.3 Wirtsspektrum 9
2.1.4 Epidemiologie 11
2.1.5 Klinisches Bild 13
2.1.5.1 Natürliche Infektion 13
2.1.5.2 Experimentelle Infektion 14
2.1.6 Übertragung 15
2.1.7 Gewebstropismen 15
2 1.7.1 Viruseintritt, Ausbreitungsweg und Verteilung
des Antigens 15
2.1.7.2 Zentralnervensystem und Auge 16
2.1.7.3 Peripheres (PNS) und autonomes (ANS) Nervensystem 16
2.1.7.4 Extraneurale Gewebe 17
2.1.8 Pathogenese 17
2.1.9 Neuropathologie 19
2.2 Mikroglia 22
2.2.1 Einführung 22
2.2.2 Zytotoxische Mechanismen 26
2.2.2.1 Tumornekrosefaktor (TNF) 26
2.2.2.2 Exzitatorische Aminosäuren 27
2.2.2.3 Reaktive Sauerstoffspezies 27
2.2.2.4 Reaktive Stickstoffspezies 27
2.3 Markierung von Mikrogliazellen, Makrophagen und
Zytokinen der Ratte 29
2.3 1 Identifizierung von Mikroglia 29
2.3.1. 1 EDl,ED2undED3 30
2.3.1.2. Muc 101 und Muc 102 32
2.3.1.3 TRPM l,TRPM 2undTRPM 3 34
2.3.2 Identifizierung von Zytokinen 35
2.3.2.1 anti Tumornekrosefaktor (TNF) a ß 35
2.3.2.2 anti Interferon (IFN) y 35
3 EIGENE UNTERSUCHUNGEN 37
3.1 Material 37
3.1.1 Virus 37
3.1.2 Chemikalien 37
3.1.3 Normalseren 38
3.1.4 Antikörper 38
3.1.4.1 Primäre Antikörper 38
3.1.4.2 Sekundäre Antikörper 40
3.1.5 Versuchstiere 40
3.2 Methoden 41
3.2.1 Infektion 41
3 22 Probenentnahme 41
3 23 Gefrierschnitte 42
3 24 Paraffinschnitte 42
3 2 5 Konventionelle Färbungen 4^
3.2.6 Immunhistologie 43
3.2.6.1 Färbung 43
3.2.6.2 Auswertung 44
3.2.6.3 Zusätzliche mikrokopische Untersuchungen 44
3.2.6.4 Immunhistologische Kontrollen 45
3 2.7 Photometrische Messung der Aktivität der
Superoxiddismutase (SOD) 45
3.2.7.1 Prinzip 45
3.2.7.2 Methode 45
3.3 Ergebnisse 47
3.3.1 Immunmorphologische Darstellung von Mikroglia, Makrophagen und
Zytokinen mit monoklonalen Antikörpern (mAk) 50
3.3.1.1 EDI 50
3.3.1.2 ED2 51
3.3.1.3 ED3 52
3.3.1.4 Muc 101 55
3.3.1.5 Muc 102 55
3.3.1.6 TRPM 1 57
3.3.1.7 TRPM 2 57
3.3.1.8 TRPM 3 57
3 3 19 anti Tumornekrosefaktor a ß 59
3.3.1.10 anti Interferon y 59
3 3 2 Immunmorphologische Darstellung von Lymphozyten
Subpopulationen und vonMHC Antigenen 60
3 3.2.1 W3/25 (T Helferlymphozyten) 60
3.3.2.2 MRC Ox 8 (Suppressor /zytotoxische Lymphozyten 60
3 3 23 MRCOx 18(MHC Klasse I Antigen) 60
3 3 2 4 MRC Ox 6 (MHC Klasse Il Antigen) 61
3.3.3 Photometrische Messung der Aktivität der Superoxiddismutase (SOD) 64
4 DISKUSSION 67
4 1 Darstellung von Mikroglia und Zellen des Monozyten
Makrophagen Systems (MMS) sowie von Zytokinen mit
monoklonalen Antikörpern 67
4.1.1 Kontrolltiere 67
4.1.2 BDV infizierte Tiere 67
4.1.2.1 EDl,ED2undED3 69
4.1.2.2 Muc 101 undMuc 102 70
4.1.2.3 TRPM l,TRPM 2undTRPM 3 71
4.1.2.4 anti Tumornekrosefaktor a ß 72
4.1.2.5 anti Interferon y 76
4 2 Photometrische Messung der Aktivität der
Superoxiddismutase (SOD) 78
4.3 Ausblick: Bestimmung von Pathogenitätsfaktoren und therapeutische
Möglichkeiten bei der Borna Krankheit 80
4.3.1 Untersuchungen von Serum und Liquor 80
4.3.2 Behandlung von Versuchstieren 80
4.3.2.1 Maßnahmen zur Verhinderung oder Besserung der Krankheit 80
4.3 2.2. Maßnahmen zur Identifizierung von Pathogenitätsfaktoren über
Verabreichung potentiell verstärkender Substanzen 8
4 3.3 Immunhistochemische Untersuchungen 81
4.3.4 Zellkuitur 81
5 LITERATURVERZEICHNIS 83
VERZEICHNIS DER ABBILDUNGEN, DIAGRAMME
UND TABELLEN 107
DANKSAGUNG
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