Elektrophysiologische Charakterisierung eines Ca2+-Kanals aus dem Endoplasmatischen Reticulum von Bryonia dioica Jacq.:
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1995
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-
I
-
INHALIMMLDMIA
ABKURZUNGSVERZELCHIILA
SEITE
IV
1
EINLEITUNG
1
1.1
BEWEGUNGSREAKTIONEN
HOEHERER
PFLANZEN
1
1.2
ANATOMISCHER
UND
MORPHOLOGISCHER
AUFBAU
DER
BLATTRANKEN
VON
BRYONIA
DIOICA
JACQ.
1
1.3
VERLAUF
DER
RANKENBEWEGUNG
2
1.4
SIGNALSTOFFE
UND
MECHANISMEN
DER
SIGNALTRANSDUKTION
4
L.S
CA
2
-KANAELE
IN
HOEHEREN
PFLANZEN
6
1.5.1
SPANNUNGSABHAENGIGE
CA
2+
-KANAELE
6
1.5.2
MECHANOSENSITIVE
CA
2
^-KANAELE
7
1.5.3
ABSCISINSAEURE-AKTIVIERTE
CA
2
^-PERMEABLE
LONENKANAELE
8
1.5.4
IPJ-ABHAENGIGE
CA
2
-KANAELE
8
1.5.5
CAMP
UND
CADP-RIBOSE
ABHAENGIGE
CA
2
^-PERMEABLE
LONENKANAELE
8
1.6
TOPOLOGISCHE
STRUKTUR
VON
CA2+
-KANAELEN
9
1.7
TRANSMEMBRANE
ORGANISATION
DER
OQ
UNTEREINHEIT
11
1.8
PROBLEMSTELLUNG
13
2
MATERIAL
UND
METHODEN
14
2.1
MATERIALIEN
UND
BEZUGSQUELLEN
14
2.1.1
GERAETELISTE
14
2.1.2
CHEMIKALIEN
15
2.1.3
V
ERBRAUCHSMATERIALIEN
16
2.2
ANZUCHTBEDINGUNGEN
UND
ERNTE
DES
PFIANZENMATERIALS
16
2.2.1
BRYONIA
DIOICA
JACQ.
16
2.2.2
LEPIDIUM
SATIVUM
L.
CV
KRAUSE
17
2.3
PRAEPARATIVE
METHODEN
17
2.3.1
PRAEPARATION
MIKROSOMALER
MEMBRANEN
AUS
RANKEN
VON
BRYONIA
DIOICA
17
2.3.2
PRAEPARATION
DER
FRAKTIONEN
DES
ENDOPLASMATISCHEN
RETICULUMS
VON
BRYONIA
DIOICA
DURCH
ISOPYKNISCHE
SACCHAROSE-DICHTEGRADIENTENZENTRIFUGATION
17
-
N
-
2.3.3
PRAEPARATION
DER
FRAKTIONEN
DES
ENDOPLASMATISCHEN
RETICULUMS
VON
LEPIDIUM
SATIVUM
DURCH
ISOPYKNISCHE
SACCHAROSE-DICHTEGRADIENTENZENTRIFUGATION
19
2.3.4
LIPOSOMENPRAEPARATION
19
2.3.5
TONOPLASTENPRAEPARATION
20
2.4
ENZYMATISCHE
ANALYSEN
20
2.4.1
VANADAT-SENSLTIVE,
K
+
,
MG
2+
-PROTONEN-ATPASE
20
2.4.2
NITRAT-SENSITIVE
MG
2+
-ATPASE
21
2.4.3
NADH-CYTOCHROM
C
REDUKTASE
21
2.4.4
SUCCINAT-DEHYDROGENASE
21
2.5
PROTEINBESTIMMUNG
22
2.6
ELEKTROPHYSIOLOGISCHE
METHODEN
22
2.6.1
DIE
MUELLER-RUDIN-TECHNIK
22
2.6.1.1
VERSUCHSAUFBAU
23
2.6.1.2
VORZEICHENKONVENTION
25
2.6.1.3
VERSUCHSDURCHFUHRUNG
26
2.6.1.4
KORREKTUR
VON
OFFSETT-POTENTIALEN
27
2.6.1.5
VERSUCHSAUSWERTUNG
27
2.6.2
DIE
PATCH-CLAMP
TECHNIK
29
2.6.2.1
VERSUCHSAUFBAU
UND
VERSUCHSDURCHFUHRUNG
29
3
ERGEBNISSE
31
3.1
OPTIMIERUNG
DER
BILAYER-TECHNIK
FUR
DIE
REKONSTITUTION
VON
ER-VESIKELN
AUS
RANKEN
VON
BRYONIA
DIOICA
JACQ.
31
3.2
REKONSTITUTION
EINES
CA
2+
-KANALS
AUS
DEM
ER
VON
32
BRYONIA
DIOICA
JACQ.
3.3
LOKALISATION
VON
BCC1
38
3.3.1
MEMBRANSPEZIFISCHE
LOKALISATION
38
3.3.2
GEWEBESPEZIFISCHE
LOKALISATION
40
3.3.3
ORGANSPEZIFISCHE
LOKALISATION
40
3.4
LEITWERT
VON
BCC1
IN
CALCIUMNITRAT
UND
HEMICALCIUM-
42
GLUCONATLOESUNGEN
3.5
GLEICHRICHTENDE
EIGENSCHAFTEN
VON
BCC1
43
3.6
STROM-SPANNUNGSKENNLINIE
VON
BCC1
45
3.7
CALCIUM/KALIUMSELEKTIVITAET
47
3.8
PERMEABILITAET
VON
BCC1
FUR
DIVALENTE
KATIONEN
48
-
M
-
3.9
SPANNUNGSABHAENGIGKEIT
DES
LONENKANALS
SO
3.10
ABHAENGIGKEIT
DES
LEITWERTS
VON
DER
CALCIUMKONZENTRATION
SS
3.11
EINFLUSS
DES
PH-WERTS
AUF
DAS
REKONSTITUTIONSVERHALTEN
UND
DEN
LEITWERT
VON
BCC1
58
3.12
BLOCKIERBARKEIT
VON
BCC1
DURCH
DIVALENTE
KATIONEN
63
3.13
BLOCKIERBARKEIT
DURCH
LANTHANOIDE
65
3.14
CALCIUMKANAL
ANTAGONISTEN
68
3.1S
EINFLUSS
VON
ATP
UND
CYCLISCHEN
NUKLEOTIDEN
70
3.16
ATPASE
HEMMSTOFFE
72
3.17
CALCIUMKANAL
EFFEKTOREN
73
3.18
STRATEGIEN
ZUR
UEBERPRUEFUNG
EINER
MOEGLICHEN
MECHANO
SENSITIVITAET
VON
BCC1
74
3.19
CHARAKTERISIERUNG
EINES
CALCLUMPERMEABLEN
LONENKANALS
AUS
DEM
ER
VON
KRESSEWURZELN
78
3.19.1
LEITENZYMMESSUNGEN
78
3.19.2
ELEKTROPHYSIOLOGISCHE
ANALYSE
81
4
DISKUSSION
87
4.1
ELEKTROPHYSIOLOGISCHE
EIGENSCHAFTEN
VON
BCC1
88
4.2
PHARMAKOLOGISCHE
CHARAKTERISIERUNG
VON
BCC1
95
4.3
DAS
CALCIUMOSZILLATIONSMODELL
98
4.4
ER
CALCIUMKANAELE
IN
ANDEREN
RANKENORGANEN
UND
ANDEREN
PFLANZENSPEZIES
100
S
ZUAAMINEIIFAMIUIK
102
6
LLTERATURRERZELCHIILS
104 |
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