Transkriptionsfaktoren im Farn Anemia phyllitidis (L.) Sw.:
Gespeichert in:
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| Format: | Buch |
| Sprache: | German |
| Veröffentlicht: |
1994
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| Beschreibung: | Ulm, Univ., Diss., 1995 |
| Beschreibung: | 131 Bl. Ill., graph. Darst. |
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INHALTSVERZEICHNIS
SEITE
1.
EINLEITUNG
1
2.
MATERIAL
UND
METHODEN
15
2.1.
MATERIAL
15
2.1.1.
ALLGEMEINE
MATERIALIEN
UND
GERAETE
15
2.1.2.
CHEMIKALIEN
UND
RADIOCHEMIKALIEN
16
2.1.3.
PUFFER
UND
LOESUNGEN
17
2.1.4.
PFLANZENMATAERIAL
19
2.1.5.
DNA,
CDNAS,
HYBRIDISIERUNGSSONDEN
UND
19
PLASMIDVEKTOREN
2.1.6.
BAKTERIENSTAEMME
UND
PHAGEN
20
2.1.7.
GELE
UND
MARKER
21
2.1.8.
ENZYME
UND
KITS
21
2.1.9.
PRIMER
23
2.1.10.
SOFTWARE
25
2.2.
METHODEN
26
2.2.1.
PFLANZENZUCHT
26
2.2.2.
RNA
ISOLIERUNG
27
GESAMT-RNA
ISOLIERUNG
27
POLY(A)*-MRNA
ISOLIERUNG
28
2.2.3.
CDNA-SYNTHESE
29
ERSTE
STRANGSYNTHESE
29
ZWEITE
STRANGSYNTHESE
30
2.2.4.
HYBRID
SELEKTION
31
2.2.5.
PCR
32
2.2.6.
RACE
36
3
'RACE
36
5
'RACE
37
2.2.7.
KLONIERUNG
38
VEKTORVORBEREITUNG
38
INSERTVORBEREITUNG
39
LIGATION
41
2.2.8.
TRANSFORMATION
42
ELEKTROPORATION
43
2.2.9.
ETABLIERUNG
EINER
CDNA-BIBLIOTHEK
IN
44
EIN
PLASMID
PSPORT
1
LIGATION
DER
SALL-ADAPTOREN
45
NOTL
VERDAU
45
GROESSENFRAKTIONIERUNG
46
LIGATION
DER
CDNA-MOLEKUELE
MIT
DEM
VEKTOR
47
2.2.10.
SCREENING
VON
PLASMID-CDNA-BANKEN
48
FIRST
SCREENING
49
SECOND
SCREENING
50
2.2.11.
SCREENING
VON
LAMBDA-ZAP-CDNA-BANKEN
50
FIRST
SCREENING
50
SECOND
SCREENING
52
AUSSCHLEUSEN
DES
PBLUESCRIPT
(EXCISION)
52
2.2.12.
DNA
ISOLIERUNG
54
2.2.13.
PLASMID-DNA
ISOLIERUNG
55
ONE-STEP-METHODE
55
MINI-/MAXIPRAEPARATION
56
2.2.14.
PHAGEN-DNA
ISOLIERUNG
57
2.2.15.
OLIGONUKLEOTID
SYNTHESE
58
2.2.16.
DNA
ISOLIERUNG
AUS
GELEN
58
ELUTION
AUS
ACRYLAMIDGELEN
59
GELASEVERDAU
59
STICKSTOFFMETHODE
59
2.2.17.
RESTRIKTIONSANALYSE
60
2.2.18.
BLOTTING
61
PCR-BLOT
61
SOUTHERN-BLOT
61
NORTHERN-BLOT
62
2.2.19.
RADIOAKTIVE
MARKIERUNG
VON
DNA
62
RANDOM-PRIMED
OLIGOLABELLING
63
OLIGOLABELLING
64
2.2.20.
HYBRIDISIERUNG
65
SDS/BSA-METHODE
65
FORMAMIDMETHODE
66
2.2.21.
KOLONIEHYBRIDISIERUNG
67
2.2.22.
SEQUENZIERUNG
68
2.2.23.
NESTED
DELETION
70
2.2.24.
AUTORADIOGRAPHIE
71
3.
ERGEBNISSE
72
3.1.
ZINK-FINGER
VOM
TYP
C
2
HI
72
3.1.1.
PCR
AUS
GENOMISCHER
DNA VON
XENOPUS
LAEVIS
73
3.1.2.
"
PCR
AUS
DER
CDNA
VON
7
TAGE
ALTEN
75
VEGETATIVEN
ANEMIA
PHYLLITIDIS
PROTHALLIEN
3.1.3.
SEQUENZANALYSE
DER
"ISOLIERTEN
PCR-PRODUKTE"
78
3.1.4.
SCREENING
DER
CDNA-PLASMID-BANK
VON
ANEMIA
80
PHYLLITIDIS
(7
D
VEGETATIV)
3.1.5.
SEQUENZANALYSE
DER
LIBRARY-KLONE
83
3.1.6.
NORTHERN-BLOT
ANALYSEN
87
3.1.7.
SOUTHERN-BLOT
ANALYSE
89
3.2.
ZINK
FINGER
VOM
TYP
C
2
C
2
(LIM-MOTIV)
90
3.2.1.
PCR
AUS
DER
GENOMISCHEN
DNA
VON
ARABIDOPSIS
91
THALIANA
3.2.2.
PCR
AUS
DER
CDNA
VON
ANEMIA
PHYLLITIDIS
91
3.2.3.
SCREENING
DER
CDNA
BANKEN
(7
D
GENERATIV/
92
7
D
VEGETATIV)
3.2.4.
SEQUENZANALYSE
DES
ISOLIERTEN
ZINK
FINGER
93
CODIERENDEN
GENS
UND
DES
PCR-FRAGMENTS
3.2.5.
NORTHERN-BLOT
ANALYSEN
95
3.2.6.
SOUTHERN-BLOT
ANALYSE
98
3.3.
TRANSKRIPTIONSFAKTOR,
FORK
HEAD
99
3.3.1.
PCR
AUS
DER
GENOMISCHEN
DNA
VON
XENOPUS
100
LAEVIS
3.3.2.
PCR
MIT
GENOMISCHER
DNA
AUS
ANEMIA
100
PHYLLITIDIS
UND
ARABIDOPSIS
THALIANA
3.3.3.
PCR
AUS
DER
CDNA
VON
ANEMIA
PHYLLITIDIS
102
3.3.4.
SEQUENZANALYSE
DER
FORK
HEAD-PCR-PRODUKTE
103
3.3.5.
SCREENING
DER
CDNA
BANKEN
VON
ANEMIA
105
PHYLLITIDIS
3.3.6.
NORTHERN-BLOT
ANALYSEN
107
3.3.7.
SOUTHERN-BLOT
ANALYSE
110
3.3.8.
HYBRID
SELEKTION
111
3.3.9.
5'
UND
3
'RACE
EXPERIMENTE
112
3.3.10.
ERSTELLEN
EINER
SPEZIFISCHEN
CDNA-GENBANK
115
4.
DISKUSSION
117
5.
ZUSAMMENFASSUNG
134
6.
LITERATUR
7.
ANHANG |
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