Effekt der Pankreasinseltransplantation auf die experimentelle diabetische Neuropathie der Ratte:
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| Format: | Buch |
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1994
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INHALT
1.
EINLEITUNG
1.1
EPIDEMIOLOGIE
.
1
1.2
DIE
DIABETISCHE
NEUROPATHIE
IM
HISTORISCHEN
UEBERBLICK
.
2
1.3
INSULINTHERAPIE
VERSUS
PANKREASORGAN
BZW.
-INSELTRANSPLANTATION
.
6
1.4
AUFGABENSTELLUNG
.
9
2.
MATERIAL
UND
METHODEN
2.1
VERSUCHSTIERE,
HERKUNFT
UND
UNTERBRINGUNG
.
10
2.2
VERSUCHSGESTALTUNG
.
10
2.3
INDUKTION
DES
DIABETES
.
12
2.4
BEOBACHTUNGSKRITERIEN
(IN
VIVO
UND
IN
VITRO-PARAMETER)
.12
2.4.1
KOERPERGEWICHT
.
12
2.4.2
FUTTER
UND
TRINKWASSERVERBRAUCH
.
12
2.4.3
KLINISCHES
ERSCHEINUNGSBILD
DER
TIERE
.
13
2.4.4
BLUT-GLUKOSE-BESTIMMUNGEN
.
13
2.4.5
GLUKOSE
UND
KETONKOERPER
IM
URIN
.
13
2.4.6
GLYKOSYLIERTE
HAEMOGLOBINE
(HBA^
.
14
2.4.7
MORTALITAET
.
14
2.5.
INSELTRANSPLANTATION
.
14
2.5.1
PANKREATEKTOMIE
DER
SPENDERTIERE
UND
DIGESTION
.
14
2.5.2
ISOLATION
UND
ANREICHERUNG
LANGERHANSSCHER
INSELN
.16
2.5.3
INTRAPORTALE
TRANSPLANTATION
.
18
2.6.
PRAEPARATEENTNAHME
UND
FIXIERUNG
.
19
2.6.1
PRAEPARATIONSTECHNIK
.
20
2.6.1.1
PRAEPARATION
DES
NERVUS
TIBIALIS
.
20
2.6.1.2
PRAEPARATION
DES
NERVUS
SURALIS
.
21
2.6.1.3
ENTNAHME
ANDERER
ORGANE
.
22
2.6.2
ERSTE
FIXIERUNG
.
22
2.6.3
SCHNEIDEN
UND
PUFFERUNG
DER
PRAEPARATE
.
;.23
2.6.4
POSTFIXATION
UND
KONTRASTIERUNG
DURCH
OSMIERUNG
.
24
2.6.5
ALKOHOLISCHE
ENTWAESSERUNGSREIHE
.
24
2.6.6
EINBETTUNG
IN
EPOXIDHARZ
(EPON)
.
25
2.6.6.1
ELEKTRONENMIKROSKOPISCHE
REIHE
.
25
2.6.6.2
LICHTMIKROSKOPISCHE
REIHE
.
26
2.7
QUANTITATIVE
AUSWERTUNG,
MORPHOMETRIE
.
27
2.7.1
MIKROTOMIE
UND
KONTRASTIERUNG
DER
ELEKTRONENMIKROSKOPISCHEN
GEWEBESCHNITTE
.
27
2.7.2
LICHT
UND
ELEKTRONENMIKROSKOPISCHE
AUFNAHMETECHNIK,
PHOTOENTWICKLUNG
.
29
2.7.3
STICHPROBENVERFAHREN
UND
MORPHOMETRIE
.
31
2.7.4
PRAEPARATION
UND
KLASSIFIKATION
VON
ISOLIERTEN
NERVENFASERN
.
32
2.8
STATISTISCHE
VERFAHREN
.
34
3.
ERGEBNISSE
3.1
STREPTOZOTOCIN-DIABETES
.
35
3.2
ISOLATION
LANGERHANSSCHER
INSELN
.
35
3.3
EFFEKTE
DER
INSELTRANSPLANTATION
.
36
3.3.1
EFFEKT
AUF
IN
VIVO
UND
IN
VITRO-PARAMETER
.
36
3.3.1.1
KOERPERGEWICHT
.
36
3.3.1.2 HABITUS
.
38
3.3.1.3
TRINKWASSER
UND
FUTTERVERBRAUCH
.
39
3.3.1.4
EFFEKT
AUF
AUGENVERAENDERUNGEN
.
39
3.3.1.5
MORTALITAET
.
40
3.3.1.6
BLUT-GLUKOSE
.
41
3.3.1.7
URIN-GLUKOSE
UND
-KETONKOERPER
.
42
3.3.1.8
GLYKOSYLIERTE
HAEMOGLOBINE
(HBAJ)
.
43
3.4
EFFEKT
AUF
DIE
VERAENDERUNGEN
PERIPHERER
NERVEN
.
44
3.4.1
UMFANG
MYELINISIERTER
NERVENFASERN
.
44
3.4.2
FLAECHE
MYELINISIERTER
NERVENFASERN
.
46
3.4.3
INDEX
OF
CIRCULARITY
MYELINISIERTER
NERVENFASERN
.49
3.4.4
UMFANG
MYELINISIERTER
AXONE
.
52
3.4.5
FLAECHE
MYELINISIERTER
AXONE
.
54
3.4.6
INDEX
OF
CIRCULARITY
(
=
IC)
MYELINISIERTER
AXONE
.
57
3.4.7
ISOLIERTE
GEZUPFTE
NERVENFASERN
.
57
4.
DISKUSSION
4.1
DER
STREPTOZOTOZIN-INDUZIERTE
DIABETES
MELLITUS
DER
RATTE
ALS
MODELL
FUER
DEN
HUMANEN
TYP
I-DIABETES
.
61
4.2
ISOLATION
LANGERHANS
'
SCHER
INSELN
.
62
4.2.1
KOLLAGENASE-DIGESTION
.
62
4.2.2
DICHTEGRADIENTEN-ZENTRIFUGATION
.
62
4.2.3
ZAHL
UND
BESCHAFFENHEIT
DER
GEWONNENEN
INSELN
.
63
4.3
INSELTRANSPLANTATION
.
64
4.3.1
INZUCHTSYSTEM
.
64
4.3.2
WAHL
DES
TRANSPLANTATIONSORTES
.
64
4.3.3
FUNKTION
DER
IMPLANTIERTEN
INSELN
.
65
4.3.4
ZAHL
DER
ERFORDERLICHEN
INSELN
.
66
4.3.5
EFFEKT
AUF
IN
VIVO
UND
IN
VITRO-PARAMETER
.
66
4.3.6
EFFEKT
AUF
DIE
DIABETISCHE
KATARAKT .
67
4.3.7
EFFEKT
AUF
DIE
PERIPHERE
DIABETISCHE
NEUROPATHIE
.
68
5.
ZUSAMENFASSUNG
.
74
6.
LITERATUR
.
76
7.
DANKSAGUNG
.
95
8.
LEBENSLAUF
.
96 |
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