Untersuchungen zur Biosynthese und Reaktivität von Furanfettsäuren:
Gespeichert in:
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| Format: | Abschlussarbeit Buch |
| Sprache: | German |
| Veröffentlicht: |
1993
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| Online-Zugang: | Inhaltsverzeichnis |
| Beschreibung: | 157 S. graph. Darst. |
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INHALTSVERZEICHNIS
1.
EINLEITUNG
UND
PROBLEMSTELLUNG
1
2.
UNTERSUCHUNGEN
ZUR
BIOSYNTHESE
VON
FURANFETTSAEUREN
12
2.1
STAND
DER
ERKENNTNISSE
ZUR
BIOSYNTHESE
DER
FURANFETTSAEUREN
13
2.2
DIE
MODELLSYSTEME
ZUCKERROHRZELLKULTUR
UND
ALGENKULTUREN
20
2.3
ANALYTIK
DER
FURANFETTSAEUREN
22
2.3.1
NACHWEIS
UND
QUANTIFIZIERUNG
VON
FURANFETTSAEUREN
IN
PFLANZLICHEM
MATERIAL
23
2.3.2
MASSENSPEKTROMETRISCHE
IDENTIFIZIERUNG
DER
FURAN
FETTSAEUREN
UND
IHRER
THF-DERIVATE
26
2.4
HERKUNFT
DES
SAUERSTOFFATOMS
IM
FURANRING
VON
FURANFETTSAEUREN
28
2.4.1
18
O
ALS
STABILE
ISOTOPEN-MARKERSUBSTANZ
29
2.4.2
DER
KULTURKOLBEN
FUER
DAS
INKUBATIONSEXPERIMENT
31
2.4.3
DURCHFUEHRUNG
DES
INKUBATIONSVERSUCHES
34
2.4.3.1
FURANFETTSAEUREN
IN
ZUCKERROHRZELLEN
35
2.4.3.2
MARKIERUNG
VON
FURANFETTSAEUREN
MIT
18
O
36
2.5
DIE
CA
2
+-ABHAENGIGKEIT
DER
F-SAEURE
BIOSYNTHESE
IN
ZUCKERROHRZELLEN
41
2.5.1
BEDEUTUNG
VON
CA
2+
FUER
BIOCHEMISCHE
REAKTIONEN
41
2.5.2
DURCHFUEHRUNG
DES
CA
2+
-DEFIZIT
VERSUCHES
43
2.5.3
REVERSIBILITAET
DER
CA
2+
-ABHAENGIGKEIT
46
2.6
ZUSAMMENHANG
ZWISCHEN
F-SAEURE-GEHALT
UND
FETT
SAEUREZUSAMMENSETZUNG
IN
ALGEN
48
2.6.1
FETTSAEUREZUSAMMENSETZUNG
VON
ISOCHRYSIS
SPP.
UND
PHAEODACTYLUM
TRICOMUTUM
51
2.6.2
BESTIMMUNG
DER
LAGE
DER
DOPPELBINDUNGEN
IN
16:2(9,12)
52
2.6.3
GEHALT
AN
FURANFETTSAEUREN
IN
ISOCHRYSIS
SPP.
UND
PHAEDACTYLUM
TRICOMUTUM
57
2.7
MOEGLICHER
BIOSYNTHESEWEG
FUER
FURANFETTSAEUREN
58
3.
UNTERSUCHUNGEN
ZUR
REAKTIVITAET
DER
FURANFETTSAEUREN
63
3.1
PHYSIOLOGISCH
AKTIVE
LIPID
UND
FETTSAEUREMOLEKUELE
64
3.1.1
THROMBOZYTEN
AKTIVIERENDER
FAKTOR
(PLATELET
ACTIVATING
FACTOR)
64
3.1.2
OXIDATIONSPRODUKTE
DER
ARACHIDONSAEURE
65
3.1.3
OXIDATIONSPRODUKTE
VON
C
18
FETTSAEUREN
IN
PFLANZEN
71
3.2
REAKTIVITAET
DES
FURANRINGES
IN
F-SAEUREN
74
3.3
REAKTION
VON
FURANFETTSAEUREN
MIT
DEM
ENZYM
LIPOXYGENASE
80
3.3.1
DER
MECHANISMUS
DER
LIPOXYGENASE
REAKTION
82
3.3.2
INKUBATIONEN
VON
FURANFETTSAEUREN
MIT
SOJA
LIPOXYGENASE
1
86
3.3.2.1
REAKTION
VON
F(9,5)
MIT
SOJA
LIPOXYGENASE
1
87
3.3.2.2
REAKTION
VON
DIMEF(LL,4)
MIT
SOJA
LIPOXYGENASE
1
91
3.3.2.2.1
INKUBATIONSVERSUCHE
MIT
DIMEF(L
L,4)-METHYLESTER
91
3.3.2.2.2
OXIDATIONSEXPERIMENTE
MIT
F-SAEURE-HALTIGEN
PHOSPHOLIPIDEN
92
3.4
FURANFETTSAEUREN
ALS
CO-OXIDANTIEN
WAEHREND
DER
OXIDATION
UNGESAETTIGTER
FETTSAEUREN
MIT
LIPOXYGENASE
96
4.
ABSCHLUSSDISKUSSION
UND
AUSBLICK
102
5.
EXPERIMENTELLER
TEIL
105
5.1
VERWENDETE
GERAETE
UND
AUFNAHMEBEDINGUNGEN
DER
GASCHROMATOGRAMME
UND
SPEKTREN
105
5.1.1
GASCHROMATOGRAPHIE
105
5.1.2
MASSENSPEKTROMETRIE
105
5.1.2.1
GC/MS-KOPPLUNG
105
5.1.2.2
HOCHAUFLOESENDE
MASSENSPEKTROMETRIE
106
5.1.2.3
LIQUID
SECONDARY
ION
MASS
SPECTROMETRY
106
5.1.3
KEMRESONANZSPEKTROSKOPIE
107
5.1.4
FLAMMENPHOTOMETRIE
107
5.1.5
SCHUETTLER
107
5.1.6
ULTRASCHALLBAD
107
5.1.7
FRAKTIONSSAMMLER
107
5.1.8
REINRAUMARBEITSPLATZ
108
5.2
LOESUNGSMITTEL
108
5.3
DUENNSCHICHTCHROMATOGRAPHIE
108
5.4
STANDARD
UND
REFERENZSUBSTANZEN
109
5.5
BENUTZTE
PFLANZENMATERIALIEN
109
5.5.1
ZUCKERROHRZELLKULTUR
109
5.5.2
ALGENKULTUREN
110
5.6
KULTURBEDINGUNGEN
UND
KULTURMEDIEN
110
5.6.1
ZUCKERROHRZELLKULTUR
110
5.6.2
ALGENKULTUREN
112
5.7
NACHWEIS
UND
QUANTIFIZIERUNG
VON
FURANFETTSAEUREN
IN
BIOLOGISCHEM
MATERIAL
113
5.7.1
EXTRAKTION
DER
GESAMTLIPIDE
113
5.7.2
BASENKATALYSIERTE
UMESTERUNG
DER
LIPIDE
114
5.7.3
ISOLIERUNG
DER
UNPOLAREN
FETTSAEUREMETHYLESTER
115
5.7.4
KATALYTISCHE
HYDRIERUNG
DER
UNPOLAREN
FETTSAEUREMETHYLESTER
115
5.7.5
DUENNSCHICHTCHROMATOGRAPHISCHE
ABTRENNUNG
DER
THF-SAEUREMETHYLESTER
115
5.8
DURCHFUEHRUNG
DES
18
O2-MARKIERUNGSEXPERIMENTES
116
5.9
UNTERSUCHUNG
DER
CA
2+
-ABHAENGIGKEIT
DER
BIOSYNTHESE
VON
FURANFETTSAEUREN
117
5.9.1
BESTIMMUNG
DES
TROCKENGEWICHTES
117
5.9.2
BESTIMMUNG
DES
CA
2+
-GEHALTES
IM
CA
2+
-DEFIZIT
MEDIUM
118
5.10
VERGLEICHENDE UNTERSUCHUNG
DER
FETTSAEURE
UND
F-SAEURE
ZUSAMMENSETZUNG
VON
ALGEN
118
5.10.1
ARGENTATIONSCHROMATOGRAPHIE
ZUR
ANREICHERUNG
ZWEIFACH
UNGESAETTIGTER
FETTSAEUREN
118
5.10.2
HERSTELLUNG
DER
4,4-DIMETHYLOXAZOLIN-DERIVATE
VON
ZWEIFACH
UNGESAETTIGTEN
FETTSAEUREN
119
5.11
UNTERSUCHUNGEN
ZUR
OXIDATION
ZWEIFACH-SUBSTITUIERTER
FURANFETTSAEUREN
120
5.11.1
INKUBATION
VON
10,13-EPOXY-OCTADECA-10,12-DIENSAEURE
METHYLESTER
UND
DESSEN
NATRIUM-SALZ
[F(9,5)]
MIT
SOJA
LIPOXYGENASE-1
120
5.11.1.1
ZUSAMMENSETZUNG
DER
INKUBATIONSANSAETZE
120
5.11.1.2
AUFARBEITUNG
DER
INKUBATIONSANSAETZE
FUER
DIE
GC
UND
GC/MS-ANALYSE
121
5.11.2
REAKTION
VON
F(9,5)-METHYLESTER
MIT
13S-HPOD
121
5.12
UNTERSUCHUNGEN
ZUR
OXIDATION
TETRAALKYLSUBSTITUIERTER
FURANFETTSAEUREN
121
5.12.1
INKUBATION
VON
LL-(3,4-DIMETHYL-5-BUTYL-FURAN-2-YL)
UNDECANSAEUREMETHYLESTER
[DIMEF(LL,4)]
MIT
SOJA
LIPOXYGENASE-1
122
5.12.2
INKUBATION
VON
14:0-F-PC
UND
18:2-F-PC
MIT
SOJA
LIPOXYGENASE-1
123
5.13
SYNTHESEN
124
5.13.1
SYNTHESE
VON
10,13-EPOXY-OCTADECA-10,12-DIENSAEURE
METHYLESTER
UND
NATRIUM-SALZ
[F(9,5)]
124
5.13.2
SYNTHESE
VON
13(S)-HYDROPEROXY-10(E),12(Z)
OCTADECADIENSAEURE
125
5.13.3
SYNTHESE
VON
14:0-F-PC
UND
18:2-F-PC
126
5.13.3.1
SYNTHESE
VON
LL-(3,4-DIMETHYL-5-BUTYL-FURAN-2-YL)
UNDECANSAEUREMETHYLESTER
126
5.13.3.2
SYNTHESE
VON
L-TETRADECANOYL-2-[LL-(3,4-DIMETHYL
5-BUTYL-FURAN-2-YL)UNDECANOYL]-SN-GLYCERO
3-PHOSPHOCHOLIN
(14:0-F-PC)
126
5.13.3.3
SYNTHESE
VON
L-(CIS-9,CIS-12-OCTADECADIENOYL)-2
[
11
-(3
,4-DIMETHYL-5-BUTYL-FURAN-2-YL)UNDECANOYL]
SN-GLYCERO-3-PHOSPHOCHOLIN
(F-18:2-PC)
128
6.
ZUSAMMENFASSUNG
131
6.
SUMMARY
137
7.
LITERATURVERZEICHNIS
143 |
| any_adam_object | 1 |
| author | Batna, Andreas |
| author_facet | Batna, Andreas |
| author_role | aut |
| author_sort | Batna, Andreas |
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