Biochemische und Molekularbiologische Untersuchungen Ozon-induzierter Abwehrreaktionen in Petersilie (Petroselinum crispum L.):
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| 1. Verfasser: | |
|---|---|
| Format: | Abschlussarbeit Buch |
| Sprache: | German |
| Veröffentlicht: |
1992
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| Online-Zugang: | Inhaltsverzeichnis |
| Beschreibung: | VIII, 243 S. Ill., graph. Darst. |
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| adam_text | BIOCHEMISCHE UND MOLEKULARBIOLOGISCHE UNTERSUCHUNGEN OZON-INDUZIERTER
ABWEHRREAKTIONEN IN PETERSILIE ( PETROSELINUM CRISPUM L.)
INAUGURAL-DISSERTATION ZUR ERLANGUNG DES DOKTORGRADES DER FAKULTAET FUER
BIOLOGIE DER LUDWIG-MAXIMILIANS-UNIVERSITAET MUENCHEN VORGELEGT VON
HEIDRUN ECKEY AUS SOEST /WESTFALEN 1992 INHALTSVERZEICHNIS I. EINLEITUNG
1. ABWEHRSTRATEGIEN DER PFLANZEN 1 1.1. PATHOGENABWEHR IN PETERSILIE 4
1.2. UV-BELICHTUNG ALS ABIOTISCHER STRESSOR 11 1.3. ABWEHRSTRATEGIEN DER
TABAKPFLANZEN NACH EINER VIRUS-INFEKTION 13 1.4. EMISSION VON
STRESS-ETHYLEN 14 1.5. SIGNALTRANSDUKTION DER STRESSREAKTIONEN 15 1.6.
OXIDATIVER STRESS 18 2. OZON ; 19 2.1. CHEMIE DES OZONS 19 2.2. OZON ALS
PHOTOOXIDANS DER TROPOSPHAERE 21 2.3. MECHANISMUS DER OZON-AUFNAHME 22
2.4. WIRKUNGEN VON OZON AUF PFLANZEN 24 3. THEMENSTELLUNG 28 II. MATER
IAL UND METHODEN 1. MATERIALIEN 30 1.1. CHEMIKALIEN, ENZYME UND
NATURSTOFFE 30 1.2. ISOTOPEN-MARKIERTE VERBINDUNGEN 30 1.3.
VERBRAUCHSMATERIALIEN 31 1.4. VERWENDETE GENSONDEN 32 1.5. MEDIEN UND
PUFF ER 33 2. PFLANZENMATERIAL 33 2.1. ANZUCHT VON PETERSILIE-PFLANZEN
33 2.2. KULTIVIERUNG VON ZELLSUSPENSIONS- UND KALLUSKULTUREN DER
PETERSILIE 34 3. ISOLIERUNG VON PROTOPLASTEN 34 4. PRAEPARATION DES
ELICITORS VON PHYTOPHTHORA MEGASPERMA . 34 5. BEHANDLUNG DER
ZELLKULTUREN MIT VERSCHIEDENEN STRESSOREN 35 5.1. BEHANDLUNG MIT DEM
PMG-ELICITOR ODER HEFEEXTRAKT 35 5.2. BEHANDLUNG DER ZELLKULTUREN MIT
WASSERSTOFFPEROXID 36 6. OZON-EXPOSITION 36 6.1. BESCHREIBUNG DER
SCHADGASKUEVETTEN 36 6.2. OZONERZEUGUNG UND -ANALYSE 36 6.3.
OZON-EXPOSITION VON PETERSILIE-PFLANZEN 37 6.4. EXPOSITION VON
ZELLSUSPENSIONSKULTUREN 37 7. MESSUNG DER STOMATAEREN LEITFAEHIGKEIT 39 8.
PROTEINBESTINUNUNG 39 9. MESSUNG DER RADIOAKTIVITAET 39 10.
ENZYMAKTIVITAETSBESTIMMUNGEN 40 10.1. BESTIMMUNG DER PHENYLALANIN
AMMONIUM-LYASE (PAL)-AKTIVITAET 40 10.2. BESTIMMUNG DER SAM :
XANTHOTOXOL-O-METHYLTRANSFERASE (XMT)-AKTIVITAET 41 10.3. BESTIMMUNG DER
CHALKON-SYNTHASE (CHS)-AKTIVITAET 41 10.4. BESTIMMUNG DER
ZIMTALKOHOL-DEHYDROGENASE (CAD)-AKTIVITAET 41 11. WESTERN BLOT-ANALYSE 42
12. NACHWEIS DER INHALTSSTOFFE 44 12.1. BESTIMMUNG DER FURANOCOUMARINE
44 12.2. BESTIMMUNG DER FLAVONOIDGLYKOSIDE 45 12.3. NACHWEIS VONETHYLEN
46 12.4. NACHWEIS DER MONOTERPENE 47 13. MESSUNGEN IM
ANTIOXIDANTIENSTOFFWECHSEL 47 13.1. BESTIMMUNG DES ASCORBATGEHALTES 47
13.2. BESTIMMUNG DER FREIEN POLYAMINE 48 14. BESTIMMUNG DES
ANTIOXIDATIVEN POTENTIALS IM MEDIUM 48 15. BESTIMMUNG DER
MEMBRANPERMEABILITAET 49 INHALTSVERZEICHNIS 16. ISOLIERUNG DER
APOPLASTENFLUESSIGKEIT (VAKUUMINFILTRATION) 50 17. HISTOCHEMISCHE
UNTERSUCHUNGEN 50 18. STRUKTURAUFKLAERUNG VON 6 -MALONYLAPIIN 51 18.1.
ISOLIERUNG DES PHENOLISCHEN INHALTSSTOFFES 51 18.2. ANALYSE MITTELS HPLC
52 18.3. AUFNAHME VON UV-ABSORPTIONS- UND FLUORESZENZSPEKTREN 52 18.4.
SPALTUNG MIT SS-GLUKOSIDASE 53 18.5. ABSPALTUNG VON ACYLGRUPPEN 53 18.6.
NACHWEIS VON APIOSE 53 18.7. FAST ATOM BOMBARDMENT (FAB)- MASSENSPEKTRUM
53 18.8. INFRAROT-SPEKTROSKOPIE (FT-IR) 54 18.9.
KERNRESONANZSPEKTROSKOPIE (NMR) 54 19. MOLEKULARBIOLOGISCHE
STANDARDMETHODEN 54 19.1. HERSTELLUNG VON LOESUNGEN UND PUFFERN 54 19.2.
STERILISATION UND RNASE-INHIBITION 54 19.3. PHENOL-CHLOROFORM-EXTRAKTION
55 19.4. FAELLUNG VON NUKLEINSAEUREN MIT ETHANOL ODER ISOPROPANOL... 55
19.5. BESTIMMUNG DER NUKLEINSAEURE-KONZENTRATION 55 19.6.
ELEKTROPHORETISCHE AUFTRENNUNG VON NUKLEINSAEUREN 55 19.7. FLUOROGRAPHIE,
AUTORADIOGRAPHIE UND AUSWERTUNG DER BLOTS 56 20. ISOLIERUNG VON
PLASMID-DNA 56 20.1. ANZUCHT VON BAKTERIEN 56 20.2.
PLASMID-DNA-ISOLIERUNG 57 20.3. SPALTUNGEN DER DNA MIT
RESTRIKTIONSENZYMEN 57 20.4. ELEKTROPHORESE UND ELUTION DER
DNA-FRAGMENTE AUS AGAROSEGELEN 57 21. RNA-EXTRAKTION 58 22. ISOLIERUNG
DER POLY(A)+ RNA 59 23. IN VITRO TRANSLATION UND ELEKTROPHORETISCHE
AUFTRENNUNG DER TRANSLATIONSPRODUKTE 59 24. NORTHERN-BLOT-ANALYSE 60
24.1. LOESUNGEN 60 24.2. AUFTRENNUNG DER RNA IN FORMALDEHYDGELEN 60 24.3.
DURCHFUEHRUNG DER HYBRIDISIERUNGEN 61 24.4. ENTFERNUNG DER GENSONDEN FUER
DIE ERNEUTE VERWENDUNG DER MEMBRAN 61 25. SLOT-BLOT-ANALYSEN 61 26.
MARKIERUNG VON DNA MIT [ 32 P]-NUKLEOTIDEN 62 27. CDNA-SYNTHESE 62 27.1.
ERSTSTRANG-SYNTHESE 62 27.2. ZWEITSTRANG-SYNTHESE 63 27.3. REINIGUNG DER
CDNA 63 27.4. BESTIMMUNG DER EINBAURATE 63 27.5. METHYLIERUNG DER
ECORI-ERKENNUNGSSEQUENZEN IN DER CDNA 63 27.6. PHOSPHORYLIERUNGSREAKTION
DER ECORI-LINKER 64 27.7. LIGATION DER ECORI-LINKER AN DIE CDNA 64 27.8.
SPALTUNG DER CDNA 65 27.9. GROESSENFRAKTIONIERUNG DER CDNA DURCH
CHROMATOGRAPHIE 65 27.10. ALKALISCHE GELELEKTROPHORESE 65 28. KLONIERUNG
DER CDNA IN DEN VEKTOR XZAPII 66 28.1. LIGATION DERCDNA IN DEN
KLONIERUNGSVEKTOR XZAPII 66 28.2. ANZUCHT DER WIRTSBAKTERIEN XLL-BLUE 66
28.3. VERPACKUNG DER CDNA IN PHAGENKOEPFE 67 28.4. PLATTIERUNG DER
VERPACKTEN PHAGEN 67 29. AMPLIFIZIERUNG DER CDNA 67 30. SCREENING DER
CDNA 67 30.1. PLATTIERUNG ZUR HERSTELLUNG DER DUPLIKATE 68 30.2. PLAQUC
DOT ASSAY 68 30.3. HYBRIDISIERUNG DER FILTER 69 30.4. AUFFINDUNG UND
ISOLIERUNG DER KLONE 69 INHALTSVERZEICHNIS III 30.5. SYNTHESE DER
RADIOAKTIV-MARKIERTEN CDNA-SONDEN 69 31. BESTIMMUNG DER FRAGMENTGROESSEN
DER CDNA-KLONE 70 31.1. ISOLIERUNG DER PHAGEN-DNA 70 31.2. BESTIMMUNG
DER CDNA-FRAGMENTGROESSEN 71 32. SEQUENZANALYSE DER CDNA-KLONE 72 33.
STATISTISCHE METHODEN 72 III. ERGEBNISSE 1. OZON-EFFEKTE BEI PFLANZEN
UNTER DAUERLICHT-BEDINGUNGEN 73 1.1. SCHADBILD 73 1.1.1. BESCHREIBUNG
DES HABITUS DER PFLANZEN 73 1.1.2. OZON-EXPOSITION VON
PETERSILIE-PFLANZEN 73 1.1.3. SCHADBILDAUSPRAEGUNG NACH EINER
STANDARDEXPOSITION 74 1.1.4. ENTWICKLUNG DER NEKROSEN 74 1.1.5.
VERTEILUNG UND ALTERSABHAENGIGKEIT DER NEKROSEN 77 1.1.6. OZON-DOSIS
ABHAENGIGKEIT DES SCHADBILDES 78 1.2. KAILOSE UND PHENOLISCHE
INHALTSSTOFFE 78 1.3. MESSUNG DER STOMATAEREN LEITFAEHIGKEIT 79 1.4.
BESTIMMUNG DER PHENYLALANIN AMMONIUM-LYASE (PAL)-AKTIVITAET 80 1.4.1.
PAL-AKTIVITAET WAEHREND DER STANDARD-EXPOSITION 81 1.4.2.
OZON-DOSIS-EFFEKTE DER PAL-AKTIVITAET 82 1.4.3. ALTERSABHAENGIGE
OZON-EFFEKTE BEI DER PAL-AKTIVITAET 83 1.4.4. WESTERN BLOT-ANALYSE DER
PAL 84 1.5. BESTIMMUNG DER SAM : XANTHOTOXOL-O-METHYLTRANSFERASE (XMT)-
AKTIVITAET 85 1.5.1. XMT-AKTIVITAET WAEHREND DER EXPOSITION UNTER
STANDARDBEDINGUNGEN 85 1.5.2. OZON-DOSIS-EFFEKTE DER XMT-AKTIVITAET 85
1.5.3. ALTERSABHAENGIGE OZON-EFFEKTE BEI DER XMT-AKTIVITAET 86 1.6.
BESTIMMUNG DER ZIMTALKOHOL-DEHYDROGENASE(CAD)-AKTIVITAET 86 1.7. MESSUNG
DER CHALKON-SYNTHASE (CHS)-AKTIVITAET 87 1.7.1. BESTIMMUNG DER
CHS-AKTIVITAET 87 1.7.2. WESTERN-BLOT-ANALYSE DER CHS 88 1.8. ANALYSE DER
MALONYL-COA : FIAVON/FLAVONOL-3-O-GLYKOSID-MALONYL- TRANSFERASE (MAT-3)
88 1.9. NACHWEIS DER FURANOCOUMARINE 89 1.9.1. AUFTRENNUNG DER
FURANOCOUMARINE AN DER HPLC 89 1.9.2. NACHWEIS DER FURANOCOUMARINE NACH
EINER STANDARDEXPOSITION ; 90 1.9.3. OZON-DOSIS-EFFEKTE DER
FURANOCOUMARIN-GEHALTE 91 1.9.4. ALTERSABHAENGIGE OZON-EFFEKTE DER
FURANOCOUMARIN-KONZENTRATION 92 1.10. NACHWEIS DER FLAVONOIDGLYKOSIDE 92
1.10.1. FLAVONOIDGLYKOSID-GEHALTE NACH EINER STANDARDEXPOSITION 92
1.10.2. OZON-DOSIS-EFFEKTE DER FLAVONOIDGLYKOSID-GEHALTE 94 1.10.3.
ALTERSABHAENGIGE OZON-EFFEKTE DER FLAVONOIDGLYKOSID-GEHALTE 94 1.10.4.
AUFTRENNUNG DER FLAVONOIDGLYKOSIDE AN DER HPLC 94 1.10.5.
DUENNSCHICHTCHROMATOGRAPHISCHE ANALYSE DER FLAVONOID-AGLYKA 95 1.11.
NACHWEIS WEITERER PHENOLISCHER INHALTSSTOFFE 96 1.11.1. NACHWEIS DER
PHENOLISCHEN INHALTSSTOFFE AN DER HPLC 96 1.11.2. GEHALTE DER
PHENOLISCHEN INHALTSSTOFFE NACH EINER STANDARDEXPOSITION 97 1.11.3.
OZON-DOSIS-EFFEKTE DER PHENOLISCHEN INHALTSSTOFFE 98 1.11.4.
ALTERSABHAENGIGE OZON-EFFEKTE DER PHENOLISCHEN INHALTSSTOFFE 99 IV
INHALTSVERZEICHNIS 1.12. IDENTIFIZIERUNG UND STRUKTURAUFKLAERUNG DES
OZON-INDUZIERTEN PHENOLISCHEN INHALTSSTOFFES 99 1.12.1. ISOLIERUNG DES
PHENOLISCHEN INHALTSSTOFFES 99 1.12.2. AUFNAHME VON UV-ABSORPTIONS- UND
FLUORESZENZSPEKTREN 100 1.12.3. ANALYSE AN DER HPLC 102 1.12.4. ANALYSE
AN DER HPLC MIT DIODEN ARRAY-DETEKTOR 103 1.12.5. SPALTUNG MIT
SS-GLUKOSIDASE 103 1.12.6. ABSPALTUNG VON ACYLGRUPPEN 104 1.12.7.
NACHWEIS VON APIOSE 104 1.12.8. FOURIER-TRANSFORM-LNFRAROT-SPEKTREN 105
1.12.9. FAB-MASSENSPEKTROMETRIE 107 1.12.10. NMR-SPEKTROSKOPIE 108
1.12.11. IDENTIFIZIERUNG VON 6 -MALONYLAPIIN 110 1.13. NACHWEIS VON
ASCORBAT 111 1.14. NACHWEIS DER TERPENE 112 1.15. UNTERSUCHUNG DER
APOPLASTENFLUESSIGKEIT 114 1.15.1. ISOLIERUNG DER APOPLASTENFLUESSIGKEIT
DURCH VAKUUMINFILTRATION 114 1.15.2. PHENOLISCHE INHALTSSTOFFE DER
APOPLASTENFLUESSIGKEIT 115 1.15.3. NACHWEIS VON ASCORBAT 116 1.16.
VERAENDERUNGEN DES GENEXPRESSIONSMUSTERS 117 2. OZON-EFFEKTE BEI PFLANZEN
MIT TAG-NACHT-RHYTHMUS 122 2.1. HABITUS UND OZON-EXPOSITION DER PFLANZEN
MIT TAG-NACHT-RHYTHMUS 122 2.2. BESTIMMUNG DER PHENYLALANIN
AMMONIUM-LYASE (PAL)-AKTIVITAET 123 2.3. BESTIMMUNG DER SAM :
XANTHOTOXOL-O-METHYLTRANSFERASE (XMT)- AKTIVITAET 124 2.4. NACHWEIS DER
FURANOCOUMARINE 124 2.5. BESTIMMUNG DER FLAVONOIDGLYKOSIDE 125 2.6.
NACHWEIS WEITERER PHENOLISCHER INHALTSSTOFFE 126 2.7. NACHWEIS DER
VERAENDERUNGEN IM GENEXPRESSIONSMUSTER 126 3. UNTERSUCHUNGEN AN WURZELN
UND STENGELN DER PETERSILIE 127 3.1. HABITUS UND OZON-EXPOSITION VON
WURZELN UND STENGELN 127 3.2. BESTIMMUNG DER PHENYLALANIN AMMONIUM-LYASE
(PAL)-AKTIVITAET 127 3.3. BESTIMMUNG DER ZIMTALKOHOL-DEHYDROGENASE
(CAD)-AKTIVITAET 128 3.4. NACHWEIS DER FLAVONOIDGLYKOSIDE 128 3.5.
NACHWEIS DER GENINDUKTIONEN IN WURZELEXTRAKTEN 129 4. OZON-EFFEKTE BEI
ZELLKULTUREN 130 4.1. OZON-EXPOSITION VON ZELLKULTUREN 130 4.2.
BESTIMMUNG DES PH-WERTES IM MEDIUM DER ZELLKULTUREN 132 4.3. MESSUNG DER
MEMBRANPERMEABILITAET 132 4.4. HISTOCHEMISCHE UNTERSUCHUNGEN DER
ZELLKULTUREN 134 4.5. BESTIMMUNG DER PHENYLALANIN
AMMONIUM-LYASE-(PAL)-AKTIVITAET 134 4.6. BESTIMMUNG DER
ZIMTALKOHOL-DEHYDROGENASE (CAD)-AKTIVITAET 135 4.7. BESTIMMUNG DER
CHALKON-SYNTHASE (CHS)-AKTIVITAET 136 4.8. BESTIMMUNG DER FURANOCOUMARINE
136 4.9. NACHWEIS DER FLAVONOIDGLYKOSIDE 137 4.10. NACHWEIS WEITERER
PHENOLISCHER INHALTSSTOFFE 138 4.11. NACHWEIS VON ETHYLEN 139 4.12.
NACHWEIS VON POLYAMINEN 141 4.13. NACHWEIS VON ASCORBAT 142 4.14.
BESTIMMUNG DER RADIKALFANGENDEN EIGENSCHAFTEN DES MEDIUMS 142 4.15.
BESTIMMUNG DER GENEXPRESSION IN ZELLKULTUREN 144 5. OZON-EFFEKTE BEI
ZELLKULTUREN UNTER VARIATION DER EXPOSITIONSBEDINGUNGEN 146 5.1.
VARIATIONEN DER BEDINGUNGEN BEI DER OZON-EXPOSITION VON ZELLKULTUREN 146
5.2. MESSUNG DER MEMBRANPERMEABILITAET 148 5.3. BESTIMMUNG DER
PHENYLALANIN AMMONIUM-LYASE (PAL)-AKTIVITAET 149 5.4. NACHWEIS DER
FURANOCOUMARINE 151 INHALTSVERZEICHNIS 5.5. BESTIMMUNG DER
FLAVONOIDGLYKOSIDE 152 5.6. NACHWEIS WEITERER PHENOLISCHER INHALTSSTOFFE
152 5.7. BESTIMMUNG DER POLYAMINE 152 5.8. NACHWEIS DER GENINDUKTIONEN
153 6. BEHANDLUNG VON ZELLSUSPENSIONSKULTUREN MIT ELICITOR ODER
HEFEEXTRAKT 154 6.1. INDUKTION DER ZELLEN MIT DEM PMG-ELICITOR ODER
HEFEEXTRAKT 154 6.2. OZON-EXPOSITION DER ELICITOR-BEHANDELTEN ZELLEN 155
6.3. BESTIMMUNG DER PHENYLALANIN AMMONIUM-LYASE (PAL)-AKTIVITAET 155 6.4.
BESTIMMUNG DER FURANOCOUMARINE 156 6.5. BESTIMMUNG DER
FLAVONOIDGLYKOSID- UND MALONYLAPIIN-GEHALTE 157 6.6. NACHWEIS DER
GENINDUKTIONEN 158 7. BEHANDLUNG DER ZELLKULTUREN MIT WASSERSTOFFPEROXID
159 7.1. ZUGABE VON WASSERSTOFFPEROXID ZU DEN ZELLKULTUREN 159 7.2.
MESSUNG DER MEMBRANPERMEABILITAET 159 7.3. BESTIMMUNG DER PHENYLALANIN
AMMONIUM-LYASE (PAL)-AKTIVITAET 160 7.4. NACHWEIS DER FURANOCOUMARINE 160
7.5. BESTIMMUNG DER FLAVONOIDGLYKOSIDE 161 7.6. NACHWEIS WEITERER
PHENOLISCHER INHALTSSTOFFE 161 7.7. NACHWEIS DER GENINDUKTIONEN 162 8.
ERSTELLUNG UND ANALYSE EINER CDNA-BANK 163 8.1. PLANUNG DER
CDNA-BANK-GROESSE 163 8.2. DIE POLY(A)+ RNA ALS MATRIZE FUER DIE
CDNA-SYNTHESE 163 8.2.1. INTEGRITAET DER POIY(A) + RNA 164 8.2.2.
ZWEIDIMENSIONALE AUFTRENNUNG DER TRANSLATIONSPRODUKTE 164 8.3.
KONSTRUKTIONSPRINZIP DER CDNA-BANK UND KLONIERUNGSSTRATEGIE 166 8.4.
KLONIERUNG DER CDNA IN DEN VEKTOR XZAPII 168 8.4.1. BESCHREIBUNG DES
VEKTORS ZAP11 168 8.4.2. TEST-KLONIERUNGEN DER CDNA-BANK 169 8.4.3.
KLONIERUNG UND AMPLIFIZIERUNG DER CDNA 169 8.5. ISOLIERUNG VON
OZON-INDUZIERTEN UND -REPRIMIERTEN CDNA-KLONEN AUS DER GENBANK 170
8.5.1. STRATEGIE ZUM AUFFINDEN DER KLONE 170 8.5.2. DAS PRIMAERE
SCREENING 170 8.5.3. SEKUNDAERES SCREENING MIT DEM PLAQUE DOT ASSAY 172
8.5.4. TERTIAERES SCREENING 172 8.6. CHARAKTERISIERUNG UND
IDENTIFIZIERUNG DER KLONE 173 8.6.1. BESTIMMUNG DER CDNA-FRAGMENTGROESSEN
DER KLONE 173 8.6.2. SEQUENZANALYSE ZUR IDENTIFIZIERUNG DER KLONE 174
IV. DISKUSSION 1. OZON-EFFEKTE BEI PETERSILIE-PFLANZEN 179 1.1.
SCHADBILD DER OZON-BELASTETEN PETERSILIE-PFLANZEN 179 1.2. AKTIVIERUNG
DES ALLGEMEINEN PHENYLPROPANSTOFFWECHSELS 181 1.3. INDUKTION DER
FURANOCOUMARIN-SYNTHESE 183 1.4. AKKUMULATION DER FLAVONOIDGLYKOSIDE 185
1.5. AKTIVIERUNG DER LIGNINBIOSYNTHESE 190 1.6. DIE OZON-BEDINGTE
STRESSREAKTION IM VERGLEICH MIT DER HYPERSENSITIVITAETSREAKTION 190 1.7.
MESSUNGEN IM ANTIOXIDANTIENSTOFFWECHSEL 191 1.8. EMISSION VON ETHYLEN
UND ETHAN 192 1.9. VERAENDERUNGEN DER TERPEN-KONZENTRATIONEN 193 1.10.
STRESSREAKTIONEN IM APOPLASTEN 193 1.11. VERAENDERUNGEN DER GENEXPRESSION
195 1.12. ISOLIERUNG OZON-INDUZIERTER KLONE AUS EINER CDNA-GENBANK 199
VI INHALTSVERZEICHNIS 2. OZON-EFFEKTE BEI PETERSILIE-PFLANZEN IN
ABHAENGIGKEIT VON DEN KULTIVIERUNGSBEDINGUNGEN UND DER GEWEBESPEZIFITAET
200 3. OZON-EFFEKTE BEI ZELLKULMREN 201 4. INDUKTION DER PATHOGENABWEHR
DURCH BEHANDLUNG MIT DEM PMG- ELICITOR 205 5. INDUKTION DER ZELLEN DURCH
WASSERSTOFFPEROXID 207 6. RESUEMEE: EINORDNUNG DER OZON-INDUZIERTEN
STRESSANTWORT 208 7. UEBERSICHT DER OZON-INDUZIERTEN STRESSREAKTION IM
ZEITLICHEN VERLAUF 214 V. ZUSAMMENFASSUNG 215 VI. LITERATURVERZEICHNIS
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