Metabolische Veränderungen während der Trächtigkeit bei einem polygenen Mausmodell mit gestörter Glucosetoleranz:
Gespeichert in:
| 1. Verfasser: | |
|---|---|
| Format: | Abschlussarbeit Buch |
| Sprache: | German |
| Veröffentlicht: |
Braunschweig
[2021]
|
| Schlagworte: | |
| Online-Zugang: | Inhaltsverzeichnis Inhaltsverzeichnis |
| Beschreibung: | 143 Seiten Illustrationen, Diagramme 21 cm |
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Datensatz im Suchindex
| _version_ | 1804184060373762048 |
|---|---|
| adam_text | INHALTSVERZEICHNIS
1
EINLEITUNG
................................................................................................................................
1
1.1
DEFINITION
UND
KLASSIFIKATION
DES
DIABETES
MELLITUS
........................................................
1
1.2
PHYSIOLOGISCHE
VERAENDERUNGEN
WAEHREND
DER
SCHWANGERSCHAFT
UND
PATHOPHYSIOLOGIE
DES
GESTATIONSDIABETES
.....................................................................
2
1.2.1
METABOLISCHE
VERAENDERUNGEN
WAEHREND
DER
SCHWANGERSCHAFT
............................
3
1.2.2
MECHANISMEN
DER
/3-ZELLADAPTION
WAEHREND
DER
SCHWANGERSCHAFT
........................
3
1.2.3
THERAPIE
UND
FOLGEN
DES
GESTATIONSDIABETES
........................................................
5
1.3
DIE
LANGERHANS-INSEL
........................................................................................................
6
1.3.1
INSELARCHITEKTUR
UND
FUNKTION
DER
INSELZELLTYPEN
....................................................
6
1.3.2
MECHANISMEN
DER
INSULINSEKRETION
...........................................................................
8
1.4
AUFBAU
UND
FUNKTION
DER
MITOCHONDRIEN
.........................................................................
9
1.4.1
ATMUNGSKETTE
UND
OXIDATIVE
PHOSPHORYLIERUNG
...................................................
10
1.4.2
DER
EINFLUSS
EINER
MITOCHONDRIALEN
DYSFUNKTION
AUF
DIE
ENTSTEHUNG
DES
TYP-2-DIABETES
...............................................................................................
11
1.5
MODELLE
IN
DER
DIABETESFORSCHUNG
..................................................................................
12
1.5.1
MODELLE
DES
GESTATIONSDIABETES
..........................................................................
13
1.5.2
DIE
NEW
ZEALAND
OBESE-MAUS
.............................................................................
14
1.5.3
AUSWAHL
EINES
GEEIGNETEN
KONTROLLSTAMMES
.......................................................
16
1.6
ZIELSETZUNG
.....................................................................................................................
18
2
MATERIAL
UND
METHODEN
.......................................................................................................
19
2.1
MATERIAL
............................................................................................................................
19
2.2
VERWENDETE
LOESUNGEN
UND
PUFFER
.................................................................................
24
2.2.1
KREBS-RINGER-LOESUNG
............................................................................................
24
2.2.2
PUFFER
......................................................................................................................
25
2.3
TIEREXPERIMENTE
.............................................................................................................
26
2.3.1
MAUSSTAEMME
.........................................................................................................
26
2.3.2
HALTUNG
UND
ZUCHT
.................................................................................................
26
2.3.3
VERPAARUNGEN
........................................................................................................
27
2.3.4
ORALER
GLUCOSETOLERANZTEST
(OGTT)
......................................................................
27
2.3.5
ORGANENTNAHME
UND
PLASMAGEWINNUNG
.............................................................
27
2.3.6
ISOLATION
PRIMAERER
LANGERHANS-INSELN
..................................................................
28
2.4
HISTOLOGIE
.........................................................................................................................
29
2.4.1
GEWEBEPROZESSIERUNG
...........................................................................................
29
2.4.2
IMMUNHISTOCHEMIE
.................................................................................................
30
2.4.3
MIKROSKOPISCHE
AUSWERTUNG
.................................................................................
32
2.5
MOLEKULARBIOLOGISCHE
METHODEN
.....................................................................................
33
2.5.1
ISOLATION
VON
RNA
AUS
LANGERHANS-INSELN
............................................................
33
2.5.2
BESTIMMUNG
DER
RNA
KONZENTRATION
....................................................................
33
2.5.3
CDNA
SYNTHESE
......................................................................................................
34
2.5.4
GENEXPRESSIONSANALYSE
MITTELS
QUANTITATIVER
REAL
TIME
PCR
(QPCR)
.............
34
2.5.5
GENEXPRESSIONSANALYSE
MITTELS
DNA-MICROARRAY
................................................
37
2.6
BIOCHEMISCHE
METHODEN
.................................................................................................
37
2.6.1
BESTIMMUNG
VON
PLASMAPARAMETERN
...................................................................
37
2.6.2
BESTIMMUNG
DER
PANKREASHORMONE
IM
GEWEBE
.................................................
38
2.7
EX
VIVO-VERSUCHE
FRISCH
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
...................................................
39
2.7.1
PERIFUSION
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
................................................................
39
2.7.2
MIKROFLUORIMETRISCHE
MESSUNG
DER
CYTOSOLISCHEN
CALCIUMKONZENTRATION
..........
41
2.7.3
MESSUNG
DER
NAD(P)H
UND
FAD
AUTOFLUORESZENZ
..............................................
43
2.7.4
BESTIMMUNG
DER
ADENINNUKLEOTIDE
ATP
UND
ADP
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
.................................................................................................
45
2.8
DATENANALYSE
...................................................................................................................
48
2.8.1
BERECHNUNG
DER
INSULINSENSITIVITAET
MITTELS
HOMA
UND
MATSUDA-INDEX
............
48
2.8.2
STATISTISCHE
AUSWERTUNG
UND
GRAPHISCHE
DARSTELLUNG
.........................................
49
3
ERGEBNISSE
............................................................................................................................
50
3.1
IN
VIVO-CHARAKTERISIERUNG
WEIBLICHER
NZO-MAEUSE
VOR,
WAEHREND
UND
NACH
DER
TRAECHTIGKEIT
......................................................................................................................
50
3.1.1
PHAENOTYPISCHE
PARAMETER
.....................................................................................
50
3.1.2
VERAENDERUNG
DER
BLUTGLUCOSE
UND
DES
PLASMAINSULINS
WAEHREND
DER
TRAECHTIGKEIT
.............................................................................................................
52
3.1.3
UNTERSUCHUNG
DER
GLUCOSETOLERANZ
UND
DER
GLUCOSE-STIMULIERTEN
INSULINSEKRETION
IN
VIVO
...........................................................................................
54
3.1.4
EINFLUSS
DER
TRAECHTIGKEIT
AUF
DIE
INSULINSENSITIVITAET
.............................................
57
3.2
KINETIK
DER
INSULINSEKRETION
FRISCH
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
IN
EX
VIVO
STIMULATIONSVERSUCHEN
....................................................................................................
59
3.2.1
EINFLUSS
VON
20
MM
GLUCOSE
AUF
DIE
INSULINSEKRETION
.......................................
59
3.2.2
EINFLUSS
VON
30
MM
GLUCOSE
AUF
DIE
INSULINSEKRETION
.......................................
60
3.3
UNTERSUCHUNG
DER
CYTOSOLISCHEN
CALCIUMKONZENTRATION
PRIMAERER
LANGERHANS-INSELN
..........................................................................................................
62
3.4
UNTERSUCHUNG
DER
ADAPTATION
DER
INSELZELLMASSE
WAEHREND
DER
TRAECHTIGKEIT
...........
63
3.5
EINFLUSS
DER
TRAECHTIGKEIT
AUF
VERAENDERUNGEN
DER
PANKREASHORMONE
GLUCAGON
UND
SOMATOSTATIN
..........................................................................................
64
3.5.1
REGULATION
DES
GLUCAGONS
WAEHREND
DER
TRAECHTIGKEIT
........................................
64
3.5.2
REGULATION
DES
SOMATOSTATINS
WAEHREND
DER
TRAECHTIGKEIT
..................................
67
3.6
EINFLUSS
DER
TRAECHTIGKEIT
AUF
DIE
JSS-ZELLPROLIFERATION
......................................................
69
3.6.1
MORPHOMETRISCHE
UND
HISTOLOGISCHE
CHARAKTERISIERUNG
......................................
69
3.6.2
UNTERSUCHUNG
DER
GENEXPRESSION
VON
REGULATOREN
DER
SS-ZELLPROLIFERATION
MITHILFE
VON
MICROARRAYS
........................................................................................
70
3.6.3
VALIDIERUNG
DER
M/CROARRAY-ANALYSEN
MITTELS
QPCR
...........................................
76
3.7
UNTERSUCHUNG
DER
MITOCHONDRIALEN
ATMUNGSKETTE
UND
DER
OXIDATIVEN
PHOSPHORYLIERUNG
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
...........................................................
78
3.7.1
PATTWAY-ANALYSEN
DER
MITTELS
MICROARRAY
ERHALTENEN
GENEXPRESSION
..............
78
3.7.2
VALIDIERUNG
AUSGEWAEHLTER
GENE
DER
OXIDATIVEN
PHOSPHORYLIERUNG
MITTELS
QPCR
.........................................................................................................
80
3.7.3
NAD(P)H
UND
FAD
AUTOFLUORESZENZ
PRIMAERER
LANGERHANS-INSELN
......................
83
3.7.4
UNTERSUCHUNG
DER
ATP/ADP-RATIO
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
........................
85
4
DISKUSSION
............................................................................................................................
87
4.1
UNTERSUCHUNG
DER
GLUCOSETOLERANZ
IN
DER
WEIBLICHEN
NZO-MAUS
.............................
88
4.1.1
DER
EINFLUSS
EINER
GESTOERTEN
GLUCOSETOLERANZ
WAEHREND
DER
TRAECHTIGKEIT
AUF
DIE
ENTWICKLUNG
EINES
MANIFESTEN
DIABETES
..................................................
90
4.1.2
AUSWIRKUNGEN
DER
TRAECHTIGKEIT
AUF
DIE
PRAEKONZEPTIONELLE
HYPERINSULINAEMIE
DER
NZO-MAUS
.......................................................................................................
91
4.1.3
VERGLEICHENDE
UNTERSUCHUNGEN
ZUR
GLUCOSE-STIMULIERTEN
INSULINSEKRETION
IN
EX
VIVO-STIMULATIONSVERSUCHEN
PRIMAERER
LANGERHANS-INSELN
.......................
92
4.1.4
MESSUNG
DER
CYTOSOLISCHEN
CALCIUMKONZENTRATION
([CA
2
],)
PRIMAERER
LANGERHANS-INSELN
.................................................................................................
94
4.2
UNTERSUCHUNGEN
DER
PANKREATISCHEN
HORMONE
GLUCAGON
UND
SOMATOSTATIN
...........
95
4.2.1
EINFLUSS
DER
TRAECHTIGKEIT
AUF
DIE
PRAEKONZEPTIONELLE
HYPERGLUCAGONAEMIE
DER
NZO-MAUS
.......................................................................................................
95
4.2.2
DAS
VERTEILUNGSMUSTER
DER
A-ZELLEN
IN
DER
LANGERHANS-INSEL
............................
96
4.2.3
HISTOLOGISCHE
UNTERSUCHUNGEN
DER
OE-ZELLEN
PANKREATISCHER
LANGERHANS-INSELN
.................................................................................................
97
4.3
ADAPTIVE
MECHANISMEN
DER
SS-ZELLE
WAEHREND
DER
TRAECHTIGKEIT
....................................
98
4.3.1
BESTIMMUNG
DER
SS-ZELLPROLIFERATION
MITHILFE
DES
MARKERS
KI-67
.........................
98
4.3.2
UNTERSUCHUNG
VON
REGULATOREN
DER
SS-ZELLPROLIFERATION
MITTELS
GENEXPRESSIONSANALYSEN
....................................................................................
101
4.4
UNTERSUCHUNGEN
ZUR
MITOCHONDRIALEN
FUNKTION
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
..........
102
4.4.1
IDENTIFIZIERUNG
VON
SIGNALWEGEN
MITHILFE
VON
PATHWAY-ANALYSEN
UND
VALIDIERUNG
AUSGEWAEHLTER
GENE
DER
OXIDATIVEN
PHOSPHORYLIERUNG
MITTELS
QPCR
........................................................................................................
102
4.4.2
UNTERSUCHUNG
DES
EINFLUSSES
DER
VERAENDERTEN
GENEXPRESSION
AUF
DIE
NAD(P)H
SOWIE
FAD
AUTOFLUORESZENZ
UND
DIE
ATP/ADP-RATIO
PRIMAERER
LANGERHANS-INSELN
IN
EX
VIVO-STIMULATIONSVERSUCHEN
.......................
105
4.5
MAUSMODELLE
IN
DER
DIABETESFORSCHUNG
UND
BEURTEILUNG
DER
INNERHALB
DIESER
ARBEIT
UNTERSUCHTEN
MAUSSTAEMME
....................................................................
108
4.5.1
VERGLEICH
DER
KONTROLLSTAEMME
NMRI
UND
C57BL/6N
..........................................
109
4.5.2
BEURTEILUNG
DER
NZO-MAUS
ALS
MODELL
FUER
DEN
GDM
.........................................
111
5
ZUSAMMENFASSUNG
..............................................................................................................
114
6
LITERATURVERZEICHNIS
.............................................................................................................
115
7
ABKUERZUNGSVERZEICHNIS
......................................................................................................
130
8
ABBILDUNGS
VERZEICHNIS
.......................................................................................................
136
9
TABELLENVERZEICHNIS
...........................................................................................................
138
10
ANHANG
................................................................................................................................
139
|
| adam_txt |
INHALTSVERZEICHNIS
1
EINLEITUNG
.
1
1.1
DEFINITION
UND
KLASSIFIKATION
DES
DIABETES
MELLITUS
.
1
1.2
PHYSIOLOGISCHE
VERAENDERUNGEN
WAEHREND
DER
SCHWANGERSCHAFT
UND
PATHOPHYSIOLOGIE
DES
GESTATIONSDIABETES
.
2
1.2.1
METABOLISCHE
VERAENDERUNGEN
WAEHREND
DER
SCHWANGERSCHAFT
.
3
1.2.2
MECHANISMEN
DER
/3-ZELLADAPTION
WAEHREND
DER
SCHWANGERSCHAFT
.
3
1.2.3
THERAPIE
UND
FOLGEN
DES
GESTATIONSDIABETES
.
5
1.3
DIE
LANGERHANS-INSEL
.
6
1.3.1
INSELARCHITEKTUR
UND
FUNKTION
DER
INSELZELLTYPEN
.
6
1.3.2
MECHANISMEN
DER
INSULINSEKRETION
.
8
1.4
AUFBAU
UND
FUNKTION
DER
MITOCHONDRIEN
.
9
1.4.1
ATMUNGSKETTE
UND
OXIDATIVE
PHOSPHORYLIERUNG
.
10
1.4.2
DER
EINFLUSS
EINER
MITOCHONDRIALEN
DYSFUNKTION
AUF
DIE
ENTSTEHUNG
DES
TYP-2-DIABETES
.
11
1.5
MODELLE
IN
DER
DIABETESFORSCHUNG
.
12
1.5.1
MODELLE
DES
GESTATIONSDIABETES
.
13
1.5.2
DIE
NEW
ZEALAND
OBESE-MAUS
.
14
1.5.3
AUSWAHL
EINES
GEEIGNETEN
KONTROLLSTAMMES
.
16
1.6
ZIELSETZUNG
.
18
2
MATERIAL
UND
METHODEN
.
19
2.1
MATERIAL
.
19
2.2
VERWENDETE
LOESUNGEN
UND
PUFFER
.
24
2.2.1
KREBS-RINGER-LOESUNG
.
24
2.2.2
PUFFER
.
25
2.3
TIEREXPERIMENTE
.
26
2.3.1
MAUSSTAEMME
.
26
2.3.2
HALTUNG
UND
ZUCHT
.
26
2.3.3
VERPAARUNGEN
.
27
2.3.4
ORALER
GLUCOSETOLERANZTEST
(OGTT)
.
27
2.3.5
ORGANENTNAHME
UND
PLASMAGEWINNUNG
.
27
2.3.6
ISOLATION
PRIMAERER
LANGERHANS-INSELN
.
28
2.4
HISTOLOGIE
.
29
2.4.1
GEWEBEPROZESSIERUNG
.
29
2.4.2
IMMUNHISTOCHEMIE
.
30
2.4.3
MIKROSKOPISCHE
AUSWERTUNG
.
32
2.5
MOLEKULARBIOLOGISCHE
METHODEN
.
33
2.5.1
ISOLATION
VON
RNA
AUS
LANGERHANS-INSELN
.
33
2.5.2
BESTIMMUNG
DER
RNA
KONZENTRATION
.
33
2.5.3
CDNA
SYNTHESE
.
34
2.5.4
GENEXPRESSIONSANALYSE
MITTELS
QUANTITATIVER
REAL
TIME
PCR
(QPCR)
.
34
2.5.5
GENEXPRESSIONSANALYSE
MITTELS
DNA-MICROARRAY
.
37
2.6
BIOCHEMISCHE
METHODEN
.
37
2.6.1
BESTIMMUNG
VON
PLASMAPARAMETERN
.
37
2.6.2
BESTIMMUNG
DER
PANKREASHORMONE
IM
GEWEBE
.
38
2.7
EX
VIVO-VERSUCHE
FRISCH
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
.
39
2.7.1
PERIFUSION
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
.
39
2.7.2
MIKROFLUORIMETRISCHE
MESSUNG
DER
CYTOSOLISCHEN
CALCIUMKONZENTRATION
.
41
2.7.3
MESSUNG
DER
NAD(P)H
UND
FAD
AUTOFLUORESZENZ
.
43
2.7.4
BESTIMMUNG
DER
ADENINNUKLEOTIDE
ATP
UND
ADP
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
.
45
2.8
DATENANALYSE
.
48
2.8.1
BERECHNUNG
DER
INSULINSENSITIVITAET
MITTELS
HOMA
UND
MATSUDA-INDEX
.
48
2.8.2
STATISTISCHE
AUSWERTUNG
UND
GRAPHISCHE
DARSTELLUNG
.
49
3
ERGEBNISSE
.
50
3.1
IN
VIVO-CHARAKTERISIERUNG
WEIBLICHER
NZO-MAEUSE
VOR,
WAEHREND
UND
NACH
DER
TRAECHTIGKEIT
.
50
3.1.1
PHAENOTYPISCHE
PARAMETER
.
50
3.1.2
VERAENDERUNG
DER
BLUTGLUCOSE
UND
DES
PLASMAINSULINS
WAEHREND
DER
TRAECHTIGKEIT
.
52
3.1.3
UNTERSUCHUNG
DER
GLUCOSETOLERANZ
UND
DER
GLUCOSE-STIMULIERTEN
INSULINSEKRETION
IN
VIVO
.
54
3.1.4
EINFLUSS
DER
TRAECHTIGKEIT
AUF
DIE
INSULINSENSITIVITAET
.
57
3.2
KINETIK
DER
INSULINSEKRETION
FRISCH
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
IN
EX
VIVO
STIMULATIONSVERSUCHEN
.
59
3.2.1
EINFLUSS
VON
20
MM
GLUCOSE
AUF
DIE
INSULINSEKRETION
.
59
3.2.2
EINFLUSS
VON
30
MM
GLUCOSE
AUF
DIE
INSULINSEKRETION
.
60
3.3
UNTERSUCHUNG
DER
CYTOSOLISCHEN
CALCIUMKONZENTRATION
PRIMAERER
LANGERHANS-INSELN
.
62
3.4
UNTERSUCHUNG
DER
ADAPTATION
DER
INSELZELLMASSE
WAEHREND
DER
TRAECHTIGKEIT
.
63
3.5
EINFLUSS
DER
TRAECHTIGKEIT
AUF
VERAENDERUNGEN
DER
PANKREASHORMONE
GLUCAGON
UND
SOMATOSTATIN
.
64
3.5.1
REGULATION
DES
GLUCAGONS
WAEHREND
DER
TRAECHTIGKEIT
.
64
3.5.2
REGULATION
DES
SOMATOSTATINS
WAEHREND
DER
TRAECHTIGKEIT
.
67
3.6
EINFLUSS
DER
TRAECHTIGKEIT
AUF
DIE
JSS-ZELLPROLIFERATION
.
69
3.6.1
MORPHOMETRISCHE
UND
HISTOLOGISCHE
CHARAKTERISIERUNG
.
69
3.6.2
UNTERSUCHUNG
DER
GENEXPRESSION
VON
REGULATOREN
DER
SS-ZELLPROLIFERATION
MITHILFE
VON
MICROARRAYS
.
70
3.6.3
VALIDIERUNG
DER
M/CROARRAY-ANALYSEN
MITTELS
QPCR
.
76
3.7
UNTERSUCHUNG
DER
MITOCHONDRIALEN
ATMUNGSKETTE
UND
DER
OXIDATIVEN
PHOSPHORYLIERUNG
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
.
78
3.7.1
PATTWAY-ANALYSEN
DER
MITTELS
MICROARRAY
ERHALTENEN
GENEXPRESSION
.
78
3.7.2
VALIDIERUNG
AUSGEWAEHLTER
GENE
DER
OXIDATIVEN
PHOSPHORYLIERUNG
MITTELS
QPCR
.
80
3.7.3
NAD(P)H
UND
FAD
AUTOFLUORESZENZ
PRIMAERER
LANGERHANS-INSELN
.
83
3.7.4
UNTERSUCHUNG
DER
ATP/ADP-RATIO
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
.
85
4
DISKUSSION
.
87
4.1
UNTERSUCHUNG
DER
GLUCOSETOLERANZ
IN
DER
WEIBLICHEN
NZO-MAUS
.
88
4.1.1
DER
EINFLUSS
EINER
GESTOERTEN
GLUCOSETOLERANZ
WAEHREND
DER
TRAECHTIGKEIT
AUF
DIE
ENTWICKLUNG
EINES
MANIFESTEN
DIABETES
.
90
4.1.2
AUSWIRKUNGEN
DER
TRAECHTIGKEIT
AUF
DIE
PRAEKONZEPTIONELLE
HYPERINSULINAEMIE
DER
NZO-MAUS
.
91
4.1.3
VERGLEICHENDE
UNTERSUCHUNGEN
ZUR
GLUCOSE-STIMULIERTEN
INSULINSEKRETION
IN
EX
VIVO-STIMULATIONSVERSUCHEN
PRIMAERER
LANGERHANS-INSELN
.
92
4.1.4
MESSUNG
DER
CYTOSOLISCHEN
CALCIUMKONZENTRATION
([CA
2
'
],)
PRIMAERER
LANGERHANS-INSELN
.
94
4.2
UNTERSUCHUNGEN
DER
PANKREATISCHEN
HORMONE
GLUCAGON
UND
SOMATOSTATIN
.
95
4.2.1
EINFLUSS
DER
TRAECHTIGKEIT
AUF
DIE
PRAEKONZEPTIONELLE
HYPERGLUCAGONAEMIE
DER
NZO-MAUS
.
95
4.2.2
DAS
VERTEILUNGSMUSTER
DER
A-ZELLEN
IN
DER
LANGERHANS-INSEL
.
96
4.2.3
HISTOLOGISCHE
UNTERSUCHUNGEN
DER
OE-ZELLEN
PANKREATISCHER
LANGERHANS-INSELN
.
97
4.3
ADAPTIVE
MECHANISMEN
DER
SS-ZELLE
WAEHREND
DER
TRAECHTIGKEIT
.
98
4.3.1
BESTIMMUNG
DER
SS-ZELLPROLIFERATION
MITHILFE
DES
MARKERS
KI-67
.
98
4.3.2
UNTERSUCHUNG
VON
REGULATOREN
DER
SS-ZELLPROLIFERATION
MITTELS
GENEXPRESSIONSANALYSEN
.
101
4.4
UNTERSUCHUNGEN
ZUR
MITOCHONDRIALEN
FUNKTION
ISOLIERTER
LANGERHANS-INSELN
.
102
4.4.1
IDENTIFIZIERUNG
VON
SIGNALWEGEN
MITHILFE
VON
PATHWAY-ANALYSEN
UND
VALIDIERUNG
AUSGEWAEHLTER
GENE
DER
OXIDATIVEN
PHOSPHORYLIERUNG
MITTELS
QPCR
.
102
4.4.2
UNTERSUCHUNG
DES
EINFLUSSES
DER
VERAENDERTEN
GENEXPRESSION
AUF
DIE
NAD(P)H
SOWIE
FAD
AUTOFLUORESZENZ
UND
DIE
ATP/ADP-RATIO
PRIMAERER
LANGERHANS-INSELN
IN
EX
VIVO-STIMULATIONSVERSUCHEN
.
105
4.5
MAUSMODELLE
IN
DER
DIABETESFORSCHUNG
UND
BEURTEILUNG
DER
INNERHALB
DIESER
ARBEIT
UNTERSUCHTEN
MAUSSTAEMME
.
108
4.5.1
VERGLEICH
DER
KONTROLLSTAEMME
NMRI
UND
C57BL/6N
.
109
4.5.2
BEURTEILUNG
DER
NZO-MAUS
ALS
MODELL
FUER
DEN
GDM
.
111
5
ZUSAMMENFASSUNG
.
114
6
LITERATURVERZEICHNIS
.
115
7
ABKUERZUNGSVERZEICHNIS
.
130
8
ABBILDUNGS
VERZEICHNIS
.
136
9
TABELLENVERZEICHNIS
.
138
10
ANHANG
.
139 |
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| spellingShingle | Grupe, Katharina Rebecca Metabolische Veränderungen während der Trächtigkeit bei einem polygenen Mausmodell mit gestörter Glucosetoleranz 3\p Tiermodell (DE-588)4140660-6 gnd 4\p Genexpression (DE-588)4020136-3 gnd 5\p Phosphorylierung (DE-588)4174459-7 gnd 6\p Immuncytochemie (DE-588)4161368-5 gnd 7\p Mitochondrium (DE-588)4124939-2 gnd 8\p Diabetes mellitus (DE-588)4070446-4 gnd |
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