Einfluss Leptin-funktionalisierter Calciumphosphat-Scaffolds auf die osteogene Differenzierung von hMSC:
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Aachen
[2020?]
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|---|---|
| adam_text | INHALTSVERZEICHNIS
1
EINLEITUNG
UND
ZIELSETZUNG
....................................................................................
1
2
STAND
DER
ERKENNTNISSE
..........................................................................................4
2.1
KNOCHEN
.................................................................................................................
4
2.1.1
FUNKTIONEN
......................................................................................................
4
2.1.2
STRUKTURELLER
AUFBAU
........................................................................................
5
2.1.3
CHEMISCHE
ZUSAMMENSETZUNG
....................................................................
5
2.1.4
ZELLEN
DES
KNOCHENS
.....................................................................................
5
2.1.5
KNOCHENUMBAU
..............................................................................................
8
2.1.6
KRANKHEITEN
.....................................................................................................
9
2.2
KNOCHENERSATZ
.......................................................................................................
9
2.2.1
HYDROXYLAPATIT
(HA)
.......................................................................................
11
2.2.2
SS-TRICALCIUMPHOSPHAT
(SS-TCP)
....................................................................
11
2.2.3
POLY
(D,
L-LAKTID)
(PDLLA)
..........................................................................
12
2.3
LEPTIN
....................................................................................................................
12
2.3.1
WIRKUNG
VON
LEPTIN
AUF
DEN
KNOCHEN
........................................................
13
2.4
HUMANE
MESENCHYMALE
STAMMZELLEN
..............................................................
15
2.4.1
KLINISCHE
BEDEUTUNG
VON
HMSC
.................................................................
16
3
MATERIAL
UND
METHODEN
...........................................................................................
17
3.1
CHEMIKALIEN
.........................................................................................................
17
3.2
ZELLLINIEN
...............................................................................................................
17
3.3
HERSTELLUNG
DER
PRUEFKOERPER
..................................................................................
17
3.3.1
BESCHICHTUNG
DER
PRUEFKOERPER
MIT
PDLLA
....................................................
18
3.3.2
FUNKTIONALISIERUNG
MIT
LEPTIN
......................................................................
19
3.3.3
BESCHICHTUNG
MIT
LAMININ,
POLY-L-LYSIN
UND
KOLLAGEN
G
..........................20
3.4
ZELLBIOLOGISCHE
METHODEN
..................................................................................20
3.4.1
ALLGEMEINES
..................................................................................................20
3.4.2
NAEHRMEDIEN
..................................................................................................
21
3.4.3
AUFTAUEN
VON
ZELLLINIEN
................................................................................
21
3.4.4
MEDIUMWECHSEL
...........................................................................................22
3.4.5
SUBKULTIVIERUNG
VON
ZELLLINIEN
.....................................................................
22
3.4.6
ZELLZAHLBESTIMMUNG
.....................................................................................22
3.5
PROLIFERATION
UND
ZYTOTOXIZITAET
............................................................................23
3.6
ANALYSE
OSTEOGENER
DIFFERENZIERUNG
DURCH
ALIZARIN
ROT
S
FAERBUNG
................24
3.6.1
RELEASE-VERSUCHE
.......................................................................................
25
3.6.2
NACHWEIS
VON
BSA/BCA
TEST
....................................................................25
4
ERGEBNISSE
...............................................................................................................
27
4.1
UNTERSUCHUNG
ZUR
ZELLVIABILITAET
..........................................................................
27
4.2
VERSUCHE
ZUR
OSTEOGENEN
DIFFERENZIERUNG
DURCH
ALIZARIN
ROT
.........................30
4.3
RELEASE-VERSUCHE
MIT
BSA
...............................................................................
32
5
DISKUSSION
...............................................................................................................
37
5.1
ZELLVIABILITAET
VON
HMSC
UNTER
DEM
EINFLUSS
VON
LEPTIN
...................................
37
5.2
VERSUCHE
ZUR
OSTEOGENEN
DIFFERENZIERUNG
MIT
ALIZARIN
ROT
.............................38
5.3
RELEASE-VERSUCHE
MIT
BSA
...............................................................................
38
5.4
AUSSICHT
...............................................................................................................39
6
ZUSAMMENFASSUNG
.................................................................................................
40
7
LITERATUR
....................................................................................................................
42
IX
|
| adam_txt |
INHALTSVERZEICHNIS
1
EINLEITUNG
UND
ZIELSETZUNG
.
1
2
STAND
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.4
2.1
KNOCHEN
.
4
2.1.1
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.
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2.1.2
STRUKTURELLER
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.
5
2.1.3
CHEMISCHE
ZUSAMMENSETZUNG
.
5
2.1.4
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DES
KNOCHENS
.
5
2.1.5
KNOCHENUMBAU
.
8
2.1.6
KRANKHEITEN
.
9
2.2
KNOCHENERSATZ
.
9
2.2.1
HYDROXYLAPATIT
(HA)
.
11
2.2.2
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.
11
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.
12
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12
2.3.1
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KNOCHEN
.
13
2.4
HUMANE
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.
15
2.4.1
KLINISCHE
BEDEUTUNG
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HMSC
.
16
3
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UND
METHODEN
.
17
3.1
CHEMIKALIEN
.
17
3.2
ZELLLINIEN
.
17
3.3
HERSTELLUNG
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PRUEFKOERPER
.
17
3.3.1
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.
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3.3.2
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.
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3.4
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.20
3.4.1
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.22
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.
22
3.4.6
ZELLZAHLBESTIMMUNG
.22
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.23
3.6
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.24
3.6.1
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.
25
3.6.2
NACHWEIS
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.25
4
ERGEBNISSE
.
27
4.1
UNTERSUCHUNG
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ZELLVIABILITAET
.
27
4.2
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.30
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LEPTIN
.
37
5.2
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.38
5.3
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.
38
5.4
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.39
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| spelling | Löwe, Hiela Verfasser (DE-588)1211204529 aut Einfluss Leptin-funktionalisierter Calciumphosphat-Scaffolds auf die osteogene Differenzierung von hMSC vorgelegt von Hiela Löwe, geb. Farouq Aachen [2020?] IX, 53 Seiten Illustrationen 21 cm txt rdacontent n rdamedia nc rdacarrier Dissertation Rheinisch-Westfälische Technische Hochschule Aachen 2020 1\p Calciumphosphat (DE-588)1103519999 gnd 2\p Alizarin (DE-588)4324617-5 gnd 3\p Zelle (DE-588)4067537-3 gnd 4\p Knochen (DE-588)4128031-3 gnd 5\p Differenzierung (DE-588)4121138-8 gnd (DE-588)4113937-9 Hochschulschrift gnd-content DNB Datenaustausch application/pdf http://bvbr.bib-bvb.de:8991/F?func=service&doc_library=BVB01&local_base=BVB01&doc_number=032333238&sequence=000001&line_number=0001&func_code=DB_RECORDS&service_type=MEDIA Inhaltsverzeichnis 1\p aep-gnd 0,15938 20200827 DE-101 https://d-nb.info/provenance/plan#aep-gnd 2\p aep-gnd 0,05227 20200827 DE-101 https://d-nb.info/provenance/plan#aep-gnd 3\p aep-gnd 0,02721 20200827 DE-101 https://d-nb.info/provenance/plan#aep-gnd 4\p aep-gnd 0,01808 20200827 DE-101 https://d-nb.info/provenance/plan#aep-gnd 5\p aep-gnd 0,01659 20200827 DE-101 https://d-nb.info/provenance/plan#aep-gnd |
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