Signalwege des programmierten Zelltodes bei Erythrozyten und bei Infektion des Parvovirus B19:
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|---|---|
| adam_text | Abstract 5
1. Einleitung 7
1.1 Die Apoptose, der programmierte Zelttod 7
1.2 Die Eryptose 9
1.3 Die physiologische Relevanz der Eryptose 11
1.4 Bekannte Signalwege der Eryptose 12
1.5 Ziele dieser Doktorarbeit 13
1.6 Ca2* und Parvovjrus B19 Infektion 14
2. Methoden 16
2.1 Blutzellen und Aufreinigung der Erythrozyten 16
2.2 Analyse der Blutzellzahlen in Gesatntblut und Erythrozytenkonzentraten 16
2.3 Lösungen 17
2.4 Patch clamp 19
2.5 Herstellung von Erythrozytenmembranen und Western blotting 20
2.6 Bestimmung der PAF Freisetzung 21
2.7 FACS Analyse 22
2.8 Ceramidbestimniung _ 22
2.9 Cholin Markierung der Erythrozyten 23
2.10 Sphingomyelinase Assay . 24
2.111ntrazelluläre Ca2* Messungen 24
2.12 Weizenkeim-Lectin-Annexin V Doppelfärbung 25
2.13 Bestimmung der PGE2 Bildung 25
2.14 Immunoblotting 26
2.15 Ermittlung von Hämolyse 27
2.16 HUS-Patient und Plasma 27
2.17 Plasmide des Parvovirus B19 28
2.18 Zelllinien mit Pronasterone aktivierter Expression der Proteine des Parvovirus B19.30
2.19 Ca2* Messungen in den Proteinexperimierenden Zelllinien 31
2.20 Statistische Auswertung 32
3. Ergebnisse 33
3.1 PGE2 induzierte Aktivierung von Kationenkanälen in der Eryptose 33
3.2 PAF-induzierte Aktivierung der Sphingomyelinase in der Eryptose 49
3.3 Eryptose bei hämolytisch-urämischem Syndrom 64
3.4 Ca -Einstrom durch virale Phospholipase A2 68
4. Diskussion 75
4.1 Die Bedeutung von PGE2 75
4.2 Die Bedeutung des Platelet aktivierenden Faktor des PAF 80
4.3 Die Bedeutung der Eryptose für das hämolytisch-urämische Syndrom 82
4.4 Die Rolle der Phospholipase A2 bei viraler Infektion 83
5. Zusammenfassung 85
6. Literaturliste 87
7. Lebenslauf 101
8. Danksagung 105
|
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Abstract 5
1. Einleitung 7
1.1 Die Apoptose, der programmierte Zelttod 7
1.2 Die Eryptose 9
1.3 Die physiologische Relevanz der Eryptose 11
1.4 Bekannte Signalwege der Eryptose 12
1.5 Ziele dieser Doktorarbeit 13
1.6 Ca2* und Parvovjrus B19 Infektion 14
2. Methoden 16
2.1 Blutzellen und Aufreinigung der Erythrozyten 16
2.2 Analyse der Blutzellzahlen in Gesatntblut und Erythrozytenkonzentraten 16
2.3 Lösungen 17
2.4 Patch clamp 19
2.5 Herstellung von Erythrozytenmembranen und Western blotting 20
2.6 Bestimmung der PAF Freisetzung 21
2.7 FACS Analyse 22
2.8 Ceramidbestimniung _ 22
2.9 Cholin Markierung der Erythrozyten 23
2.10 Sphingomyelinase Assay . 24
2.111ntrazelluläre Ca2* Messungen 24
2.12 Weizenkeim-Lectin-Annexin V Doppelfärbung 25
2.13 Bestimmung der PGE2 Bildung 25
2.14 Immunoblotting 26
2.15 Ermittlung von Hämolyse 27
2.16 HUS-Patient und Plasma 27
2.17 Plasmide des Parvovirus B19 28
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2.19 Ca2* Messungen in den Proteinexperimierenden Zelllinien 31
2.20 Statistische Auswertung 32
3. Ergebnisse 33
3.1 PGE2 induzierte Aktivierung von Kationenkanälen in der Eryptose 33
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3.3 Eryptose bei hämolytisch-urämischem Syndrom 64
3.4 Ca -Einstrom durch virale Phospholipase A2 68
4. Diskussion 75
4.1 Die Bedeutung von PGE2 75
4.2 Die Bedeutung des Platelet aktivierenden Faktor des PAF 80
4.3 Die Bedeutung der Eryptose für das hämolytisch-urämische Syndrom 82
4.4 Die Rolle der Phospholipase A2 bei viraler Infektion 83
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