Beitrag und Regulation der tight junctions zur Schutzfunktion der epidermalen Hautbarriere:
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| Published: |
2005
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| adam_text | BEITRAG UND REGULATION DER TIGHT JUNCTIONS ZUR SCHUTZFUNKTION DER
EPIDERMALEN HAUTBARRIERE INAUGURAL-DISSERTATION ZUR ERLANGUNG DES
NATURWISSENSCHAFTLICHEN DOKTORGRADES IM FACHBEREICH CHEMIE DER
UNIVERSITAET HAMBURG AUS DEM INSTITUT FUER PHARMAZIE -ABTEILUNG FUER
PHARMAZEUTISCHE CHEMIE- VORGELEGT VON GUNJA SPRINGMANN AUS HAMBURG
HAMBURG 2005 INHALTSVERZEICHNIS INHALTSVERZEICHNIS 1. EINLEITUNG 1.1
AUFBAU UND FUNKTION DER HAUT 1 1.1.1 DER AUFBAU DER EPIDERMIS 1 1.1.2
DIE BARRIEREFUNKTION DES STRATIIM COMEUM 5 1.2 TIGHT JUNCTIONS 7 1.2.1
REGULATION DER TIGHT JUNCTIONS 9 1.2.2 TIGHT JUNCTIONS IN DER EPIDERMIS
11 1.3PPAR 13 1.3.1 PPARA IN DER HAUT 15 1.4 ZIELSETZUNG DER ARBEIT 18
2. MATERIAL UND METHODEN 19 2.1 MATERIAL 19 2.1.1 CHEMIKALIEN 19 2.1.2
RADIOCHEMIKALIEN 21 2.1.3 GERAETE 21 2.1.4 VERBRAUCHSMATERIALIEN 23 2.1.5
ANTIKOERPER 24 2.1.6 KITS, ENZYME UND MARKER 25 2.1.7 CDNA-ARRAYS 25
2.1.8 SOFTWARE 26 2.1.9 ZELLEN UND HAUTMODELLE 26 2.2 METHODEN . 27
2.2.1 SICHERHEIT 27 2.2.2 ZELLBIOLOGISCHE METHODEN 27 2.2.2.1 ZELLKULTUR
27 2.2.2.2 KRYOKONSERVIERUNG 28 2.2:2.3 WIEDERINKULTUMAHME EINGEFRORENER
ZELLEN 28 2.2.2.4 VITALFAERBUNG ZUR ZELLZAHLBESTIMMUNG 28 2.2.2.5
MTT-ASSAY 28 INHALTVERZEICHNIS 2.2.2.6 PENETRATIONS-ASSAYS FUER
EPIDERM-HAUTMODELLE 29 2.2.2.7 HERSTELLUNG VON PARAFFINSCHNITTEN 29
2.2.2.8 HERSTELLUNG VON KRYOSTATSCHNITTEN 30 2.2.2.9 IMMUNHISTOLOGISCHE
DETEKTION 31 2.2.2.10 NILE RED-FAERBUNG 31 2.2.3 PROTEINCHEMISCHE
METHODEN 31 2.2.3. 1 ISOLIERUNG VON PROTEINEN AUS ZELLEN UND GEWEBEN 31
2.2.3.2 PROTEINBESTIMMUNG 32 2.2.3.3 SDS-PAGE-GELEKTROPHORESE 32 2.2.3.4
WESTERN BLOT 33 2.2.3.5 IMMUNDETEKTION 34 2.2.3.6 BEHANDLUNG DER MEMBRAN
ZUR ENTFERNUNG GEBUNDENER ANTIKOERPER (STRIPPING) 35 2.2.3.7
DENSITOMETRISCHE AUSWERTUNG 35 2.2.4 MOLEKULARBIOLOGISCHE METHODEN 36
2.2.4.1 RNA- UND PROTEINISOLIERUNG AUS SAUGBLASENDAECHERN MITTELS
TRI-REAGENZ 36 2.2.4.2 RNA-ISOLIERUNG AUS HAUTMODELLEN 37 2.2.4.3
RNA-AUFREINIGUNG 37 2.2.4.4 RNA-KONZENTRATIONSBESTIMMUNG 38 2.2.4.5
TAQMAN (REAL-TIME QUANTITATIVE PCR MIT DEM SEQUENCE DETECTOR) 38 2.2.4.6
PRIMER- UND SONDENDESIGN FUER DIE QUANTITATIVE PCR 41 2.2.4.7
CDNA-CHIP-TECHNOLOGIE 41 2.2.4.8 REVERSE TRANSKRIPTION MIT LABELING VON
CDNA UND AUFREINIGUNG 43 2.2.4.9 CHIP-HYBRIDISIERUNG UND DETEKTION . 43
2.2.4.10 CDNA-ARRAY-AUSWERTUNG 44 2.2.4.11 STATISTISCHE AUSWERTUNG 45
2.2.5 LIPIDANALYTIK 45 2.2.5.1 LIPIDEXTRAKTION AUS EPIDERM-HAUTMODELLEN
45 2.2.5.2 LIPID- UND PROTEINEXTRAKTION AUS CYANOACRYLAT-ABRISSEN 45
2.2.5.3 DUENNSCHICHTCHROMATOGRAPHIE 47 2.2.5.4 VISUALISIERUNG UND
QUANTIFIZIERUNG DER LIPIDE 48 2.2.5.5 DNA-QUANTIFIZIERUNG AUS
ZELLHOMOGENATEN 48 2.2.5.6 GLUCOCEREBROSIDASEAKTIVITAETSBESTIMMUNG BEI
EPIDERM-MODELLEN 48 2.2.6 IN V/VO-STUDIEN 49 2.2.6.1 ENTNAHME VON
SUCTION BLISTER EPIDERMIS (SAUGBLASEN) 49 2.2.6.2 HAUTFEUCHTIGKEIT 49
2.2.6.3 TRANSEPIDERMALER WASSERVERLUST 50 3. ERGEBNISSE 5J. 3.1
CHARAKTERISIERUNG UND EVALUIERUNG DES BARRIERESTATUS VON 3D-HAUTMODELLEN
51 3.1.1 REIFUNG DER LIPIDBARRIERE - NILE RED-FAERBUNG IM MATTEK-MODELL
51 INHALTSVERZEICHNIS 3.1.2 REIFUNG DER LIPIDBARRIERE - LIPIDANALYTIK 52
3.1.3 GLUCOCEREBROSIDASE-AKTIVITAET IN DER BARRIEREAUSBILDUNG 53 3.1.4
INVOLUCRIN- UND TRANSGLUTAMINASE-EXPRESSION IN DER BARRIEREAUSBILDUNG 54
3.1.5 TRANSEPITHELIALE PENETRATION VON [ L4 C]-KOFFEIN 56 3.1.6
EXPRESSION UND LOKALISATION SPEZIFISCHER MARKER WAEHREND DER
EPITHELENTWICKLUNG VON EPIDERM-MODELLEN 57 3.2 EINFLUSS DES
GLUCOSYLCERAMID-SYNTHASE-INHIBITORS DL-PDMP AUF DIE BARRIEREFUNKTION IM
EPIDERM-HAUTMODELL 59 3.2.1 BARRIEREINTEGRITAET 59 3.2.2
LIPIDMETABOLISMUS 60 3.2.3 TIGHT JUNCTIONS 63 3.3 EINFLUSS
VERSCHIEDENER PPARA-AKTIVATOREN UND PPARA-INHIBITOREN AUF DIE
BARRIEREFUNKTIONEN 65 3.3.1 IDENTIFIKATION VON PPAR-RESPONSE ELEMENTEN
65 3.3.2 EINFLUSS DES PPARA-INHIBITORS MK-886 AUF DIE BARRIEREFUNKTION
IM EPIDERM-HAUTMODELL 67 3.3.2.1 BARRIEREINTEGRITAET 67 3.3.2.2
LIPIDMETABOLISMUS 68 3.3.2.3 TIGHT JUNCTIONS * 70 3.3.3 EINFLUSS DER
PPARA-AKTIVATOREN WY 14,643 UND 8 (S)-HETE UND DES PPARA-INHIBITORS
MK-886 71 3.3.3.1 WIRKUNG DES PPARA-AKTIVATORS WY14,643 UND DES
-INHIBITORS MK-886 AUF DIE BARRIEREAUSBILDUNG IM EPIDERM-HAUTMODELL 71
3.3.3.2 WIRKUNG DER PPARA-AKTIVATOREN 8(S)-HETE UND WY 14,643 AUF DIE
OCCLUDIN- UND INVOLUCRIN-EXPRESSION IN KERATINOZYTEN 72 3.3.4 EINFLUSS
VON PRISTANSAEURE UND FUCUS VESJCW/ASWS-EXTRAKT AUF DIE
BARRIEREAUSBILDUNG IM EPIDERM-HAUTMODELL 74 3.3.4.1 BARRIEREINTEGRITAET
74 3.3.4.2 LIPIDMETABOLISMUS 75 3.3.4.3 TIGHT JUNCTIONS 77 3.3.5 WIRKUNG
VON PRISTANSAEURE UND FUCUS VESICULOSUS-EXTRAKT IM EFT-VOLLHAUTMODELL 79
INHALTVERZEICHNIS 3.3.6 EINFLUSS VON PRISTANSAEURE UND MK-886 IM
EPIDERM-HAUTMODELL 80 3.4 UNTERSUCHUNGEN EPIDERMALER BARRIEREFUNKTIONEN
BEI VERSCHIEDENEN HAUTZUSTAENDEN EX VIVO 8 2 3.4.1 LIPIDANALYTIK AUS
CYANOACRYLAT-ABRISSEN 84 3.4.2 EXPRESSIONSMUSTER VON BARRIERE-PROTEINEN
AN SAUGBLASEN-EPIDERMIS 86 3.4.2.1 TIGHT JUNCTIONS (OCCLUDIN) 87 3.4.2.2
DIFFERENZIERUNG (INVOLUCRIN) 89 3.4.2.3 TRANSAKTIVIERUNG (RXRA) 91 3.4.3
WASCHSTRESS-INDUZIERTE GENEXPRESSIONSPROFILE AN SAUGBLASENDAECHERN
HUMANER EPIDERMIS 93 3.4.3.1 ALLGEMEINES GENEXPRESSIONSPROFIL NACH
WASCHSTRESS 94 3.4.3.2 GENEXPRESSIONSPROFILE NACH HAUTTYP IM UEBERBLICK
97 3.4.3.3 GENEXPRESSIONSPROFILE UND CLUSTERBILDUNG NACH TEWL IM
UEBERBLICK 98 3.4.3.4 GENEXPRESSIONSMUSTER UND CLUSTERBILDUNG
(LIPIDBARRIERE) 101 3.4.3.5 GENEXPRESSIONSMUSTER UND CLUSTERBILDUNG
(DIFFERENZIERUNG) 103 3.4.3.6 GENEXPRESSIONSMUSTER UND CLUSTERBILDUNG
(TIGHT JUNCTIONS) 105 4. DISKUSSION 102 4.1 BARRIEREAUSBILDUNG VON
EPIDERM-HAUTMODELLEN 107 4.1.1 REGULATION DER LIPIDBARRIERE UND DES
DIFFERENZIERUNGSPROZESSES IN EPIDERM- HAUTMODELLEN 107 4.1.1.1 EINFLUSS
VON PPARA AUF DIE REGULATION DER LIPIDBARRIERE UND DER DIFFERENZIERUNG
110 4.1.2 REGULATION DER TIGHT JUNCTION-BARRIERE IN EPIDERM-HAUTMODELLEN
115 4.1.2.1 EINFLUSS VON PPARA AUF DIE REGULATION DER TIGHT JUNCTIONS
117 4.1.3 KOREGULATION DER EPIDERMALEN BARRIERESYSTEME 1 22 4.2
REGULATION DER GENEXPRESSION NACH WASCHSTRESS 124 4.2.1
HAUTTYP-SPEZIFISCHE GENEXPRESSION NACH WASCHSTRESS 126 4.2.2
WASCHSTRESS-SPEZIFISCHES GENEXPRESSIONSPROFIL (LIPIDBARRIERE) 129
INHALTSVERZEICHNIS 4.2.3 WASCHSTRESS-SPEZIFISCHES GENEXPRESSIONSPROFIL
(DIFFERENZIERUNG) 130 4.2.4 WASCHSTRESS-SPEZIFISCHES
GENEXPRESSIONSPROFIL (TIGHT JUNCTIONS) 131 4.3 ABSCHLIESSENDE
BETRACHTUNGEN 135 5. ZUSAMMENFASSUNG 5. SUMMARV 6. LITERATUR 7. ANHANG
136 138 140 156 7.1 ABKILRZUNGSVERZEICHNIS 156 7.2 EINZELDATEN AUS DER
GRUNDLAGENSTUDIE 159 7.3 CDNA-ARRAY - REGULIERTE GENE 162 7.4 CURRICULUM
VITAE 166 7.5 SCHRIFTENVERZEICHNIS (PRAESENTATIONEN UND
VEROEFFENTLICHUNGEN) 167 7.6 DANKSAGUNG 168 7.7 ERKLAERUNG 169
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| adam_txt |
BEITRAG UND REGULATION DER TIGHT JUNCTIONS ZUR SCHUTZFUNKTION DER
EPIDERMALEN HAUTBARRIERE INAUGURAL-DISSERTATION ZUR ERLANGUNG DES
NATURWISSENSCHAFTLICHEN DOKTORGRADES IM FACHBEREICH CHEMIE DER
UNIVERSITAET HAMBURG AUS DEM INSTITUT FUER PHARMAZIE -ABTEILUNG FUER
PHARMAZEUTISCHE CHEMIE- VORGELEGT VON GUNJA SPRINGMANN AUS HAMBURG
HAMBURG 2005 INHALTSVERZEICHNIS INHALTSVERZEICHNIS 1. EINLEITUNG 1.1
AUFBAU UND FUNKTION DER HAUT 1 1.1.1 DER AUFBAU DER EPIDERMIS 1 1.1.2
DIE BARRIEREFUNKTION DES STRATIIM COMEUM 5 1.2 TIGHT JUNCTIONS 7 1.2.1
REGULATION DER TIGHT JUNCTIONS 9 1.2.2 TIGHT JUNCTIONS IN DER EPIDERMIS
11 1.3PPAR 13 1.3.1 PPARA IN DER'HAUT 15 1.4 ZIELSETZUNG DER ARBEIT 18
2. MATERIAL UND METHODEN 19 2.1 MATERIAL 19 2.1.1 CHEMIKALIEN ' 19 2.1.2
RADIOCHEMIKALIEN 21 2.1.3 GERAETE 21 2.1.4 VERBRAUCHSMATERIALIEN 23 2.1.5
ANTIKOERPER 24 2.1.6 KITS, ENZYME UND MARKER 25 2.1.7 CDNA-ARRAYS 25
2.1.8 SOFTWARE 26 2.1.9 ZELLEN UND HAUTMODELLE 26 2.2 METHODEN . 27
2.2.1 SICHERHEIT 27 2.2.2 ZELLBIOLOGISCHE METHODEN 27 2.2.2.1 ZELLKULTUR
27 2.2.2.2 KRYOKONSERVIERUNG 28 2.2:2.3 WIEDERINKULTUMAHME EINGEFRORENER
ZELLEN 28 2.2.2.4 VITALFAERBUNG ZUR ZELLZAHLBESTIMMUNG 28 2.2.2.5
MTT-ASSAY 28 INHALTVERZEICHNIS 2.2.2.6 PENETRATIONS-ASSAYS FUER
EPIDERM-HAUTMODELLE 29 2.2.2.7 HERSTELLUNG VON PARAFFINSCHNITTEN 29
2.2.2.8 HERSTELLUNG VON KRYOSTATSCHNITTEN 30 2.2.2.9 IMMUNHISTOLOGISCHE
DETEKTION 31 2.2.2.10 NILE RED-FAERBUNG 31 2.2.3 PROTEINCHEMISCHE
METHODEN 31 2.2.3. 1 ISOLIERUNG VON PROTEINEN AUS ZELLEN UND GEWEBEN 31
2.2.3.2 PROTEINBESTIMMUNG 32 2.2.3.3 SDS-PAGE-GELEKTROPHORESE 32 2.2.3.4
WESTERN BLOT 33 2.2.3.5 IMMUNDETEKTION 34 2.2.3.6 BEHANDLUNG DER MEMBRAN
ZUR ENTFERNUNG GEBUNDENER ANTIKOERPER (STRIPPING) 35 2.2.3.7
DENSITOMETRISCHE AUSWERTUNG 35 2.2.4 MOLEKULARBIOLOGISCHE METHODEN 36
2.2.4.1 RNA- UND PROTEINISOLIERUNG AUS SAUGBLASENDAECHERN MITTELS
TRI-REAGENZ 36 2.2.4.2 RNA-ISOLIERUNG AUS HAUTMODELLEN 37 2.2.4.3
RNA-AUFREINIGUNG 37 2.2.4.4 RNA-KONZENTRATIONSBESTIMMUNG 38 2.2.4.5
TAQMAN (REAL-TIME QUANTITATIVE PCR MIT DEM SEQUENCE DETECTOR) 38 2.2.4.6
PRIMER- UND SONDENDESIGN FUER DIE QUANTITATIVE PCR 41 2.2.4.7
CDNA-CHIP-TECHNOLOGIE 41 2.2.4.8 REVERSE TRANSKRIPTION MIT LABELING VON
CDNA UND AUFREINIGUNG 43 2.2.4.9 CHIP-HYBRIDISIERUNG UND DETEKTION . 43
2.2.4.10 CDNA-ARRAY-AUSWERTUNG 44 2.2.4.11 STATISTISCHE AUSWERTUNG 45
2.2.5 LIPIDANALYTIK 45 2.2.5.1 LIPIDEXTRAKTION AUS EPIDERM-HAUTMODELLEN
45 2.2.5.2 LIPID- UND PROTEINEXTRAKTION AUS CYANOACRYLAT-ABRISSEN 45
2.2.5.3 DUENNSCHICHTCHROMATOGRAPHIE 47 2.2.5.4 VISUALISIERUNG UND
QUANTIFIZIERUNG DER LIPIDE 48 2.2.5.5 DNA-QUANTIFIZIERUNG AUS
ZELLHOMOGENATEN 48 2.2.5.6 GLUCOCEREBROSIDASEAKTIVITAETSBESTIMMUNG BEI
EPIDERM-MODELLEN 48 2.2.6 IN V/VO-STUDIEN 49 2.2.6.1 ENTNAHME VON
SUCTION BLISTER EPIDERMIS (SAUGBLASEN) 49 2.2.6.2 HAUTFEUCHTIGKEIT 49
2.2.6.3 TRANSEPIDERMALER WASSERVERLUST 50 3. ERGEBNISSE 5J. 3.1
CHARAKTERISIERUNG UND EVALUIERUNG DES BARRIERESTATUS VON 3D-HAUTMODELLEN
51 3.1.1 REIFUNG DER LIPIDBARRIERE - NILE RED-FAERBUNG IM MATTEK-MODELL
51 INHALTSVERZEICHNIS 3.1.2 REIFUNG DER LIPIDBARRIERE - LIPIDANALYTIK 52
3.1.3 GLUCOCEREBROSIDASE-AKTIVITAET IN DER BARRIEREAUSBILDUNG 53 3.1.4
INVOLUCRIN- UND TRANSGLUTAMINASE-EXPRESSION IN DER BARRIEREAUSBILDUNG 54
3.1.5 TRANSEPITHELIALE PENETRATION VON [ L4 C]-KOFFEIN 56 3.1.6
EXPRESSION UND LOKALISATION SPEZIFISCHER MARKER WAEHREND DER
EPITHELENTWICKLUNG VON EPIDERM-MODELLEN 57 3.2 EINFLUSS DES
GLUCOSYLCERAMID-SYNTHASE-INHIBITORS DL-PDMP AUF DIE BARRIEREFUNKTION IM
EPIDERM-HAUTMODELL 59 3.2.1 BARRIEREINTEGRITAET 59 3.2.2
LIPIDMETABOLISMUS 60 3.2.3 TIGHT JUNCTIONS 63 3.3 EINFLUSS
VERSCHIEDENER PPARA-AKTIVATOREN UND PPARA-INHIBITOREN AUF DIE
BARRIEREFUNKTIONEN 65 3.3.1 IDENTIFIKATION VON PPAR-RESPONSE ELEMENTEN
65 3.3.2 EINFLUSS DES PPARA-INHIBITORS MK-886 AUF DIE BARRIEREFUNKTION
IM EPIDERM-HAUTMODELL 67 3.3.2.1 BARRIEREINTEGRITAET 67 3.3.2.2
LIPIDMETABOLISMUS 68 3.3.2.3 TIGHT JUNCTIONS * 70 3.3.3 EINFLUSS DER
PPARA-AKTIVATOREN WY 14,643 UND 8 (S)-HETE UND DES PPARA-INHIBITORS
MK-886 71 3.3.3.1 WIRKUNG DES PPARA-AKTIVATORS WY14,643 UND DES
-INHIBITORS MK-886 AUF DIE BARRIEREAUSBILDUNG IM EPIDERM-HAUTMODELL 71
3.3.3.2 WIRKUNG DER PPARA-AKTIVATOREN 8(S)-HETE UND WY 14,643 AUF DIE
OCCLUDIN- UND INVOLUCRIN-EXPRESSION IN KERATINOZYTEN 72 3.3.4 EINFLUSS
VON PRISTANSAEURE UND FUCUS VESJCW/ASWS-EXTRAKT AUF DIE
BARRIEREAUSBILDUNG IM EPIDERM-HAUTMODELL 74 3.3.4.1 BARRIEREINTEGRITAET
74 3.3.4.2 LIPIDMETABOLISMUS 75 3.3.4.3 TIGHT JUNCTIONS 77 3.3.5 WIRKUNG
VON PRISTANSAEURE UND FUCUS VESICULOSUS-EXTRAKT IM EFT-VOLLHAUTMODELL 79
INHALTVERZEICHNIS 3.3.6 EINFLUSS VON PRISTANSAEURE UND MK-886 IM
EPIDERM-HAUTMODELL 80 3.4 UNTERSUCHUNGEN EPIDERMALER BARRIEREFUNKTIONEN
BEI VERSCHIEDENEN HAUTZUSTAENDEN EX VIVO 8 2 3.4.1 LIPIDANALYTIK AUS
CYANOACRYLAT-ABRISSEN 84 3.4.2 EXPRESSIONSMUSTER VON BARRIERE-PROTEINEN
AN SAUGBLASEN-EPIDERMIS 86 3.4.2.1 TIGHT JUNCTIONS (OCCLUDIN) 87 3.4.2.2
DIFFERENZIERUNG (INVOLUCRIN) 89 3.4.2.3 TRANSAKTIVIERUNG (RXRA) 91 3.4.3
WASCHSTRESS-INDUZIERTE GENEXPRESSIONSPROFILE AN SAUGBLASENDAECHERN
HUMANER EPIDERMIS 93 3.4.3.1 ALLGEMEINES GENEXPRESSIONSPROFIL NACH
WASCHSTRESS 94 3.4.3.2 GENEXPRESSIONSPROFILE NACH HAUTTYP IM UEBERBLICK
97 3.4.3.3 GENEXPRESSIONSPROFILE UND CLUSTERBILDUNG NACH TEWL IM
UEBERBLICK 98 3.4.3.4 GENEXPRESSIONSMUSTER UND CLUSTERBILDUNG
(LIPIDBARRIERE) 101 3.4.3.5 GENEXPRESSIONSMUSTER UND CLUSTERBILDUNG
(DIFFERENZIERUNG) 103 3.4.3.6 GENEXPRESSIONSMUSTER UND CLUSTERBILDUNG
(TIGHT JUNCTIONS) 105 4. DISKUSSION 102 4.1 BARRIEREAUSBILDUNG VON
EPIDERM-HAUTMODELLEN 107 4.1.1 REGULATION DER LIPIDBARRIERE UND DES
DIFFERENZIERUNGSPROZESSES IN EPIDERM- HAUTMODELLEN 107 4.1.1.1 EINFLUSS
VON PPARA AUF DIE REGULATION DER LIPIDBARRIERE UND DER DIFFERENZIERUNG
110 4.1.2 REGULATION DER TIGHT JUNCTION-BARRIERE IN EPIDERM-HAUTMODELLEN
115 4.1.2.1 EINFLUSS VON PPARA AUF DIE REGULATION DER TIGHT JUNCTIONS
117 4.1.3 KOREGULATION DER EPIDERMALEN BARRIERESYSTEME 1 22 4.2
REGULATION DER GENEXPRESSION NACH WASCHSTRESS 124 4.2.1
HAUTTYP-SPEZIFISCHE GENEXPRESSION NACH WASCHSTRESS 126 4.2.2
WASCHSTRESS-SPEZIFISCHES GENEXPRESSIONSPROFIL (LIPIDBARRIERE) 129
INHALTSVERZEICHNIS 4.2.3 WASCHSTRESS-SPEZIFISCHES GENEXPRESSIONSPROFIL
(DIFFERENZIERUNG) 130 4.2.4 WASCHSTRESS-SPEZIFISCHES
GENEXPRESSIONSPROFIL (TIGHT JUNCTIONS) 131 4.3 ABSCHLIESSENDE
BETRACHTUNGEN 135 5. ZUSAMMENFASSUNG 5. SUMMARV 6. LITERATUR 7. ANHANG
136 138 140 156 7.1 ABKILRZUNGSVERZEICHNIS 156 7.2 EINZELDATEN AUS DER
GRUNDLAGENSTUDIE 159 7.3 CDNA-ARRAY - REGULIERTE GENE 162 7.4 CURRICULUM
VITAE 166 7.5 SCHRIFTENVERZEICHNIS (PRAESENTATIONEN UND
VEROEFFENTLICHUNGEN) 167 7.6 DANKSAGUNG 168 7.7 ERKLAERUNG 169 |
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