Vitalität und Cytochrom-P450-abhängige Biotransformationsaktivität an kryokonservierten Rattenleberschnitten:
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INHALTSVERZEICHNIS
SEITE
1 EINLEITUNG 1
2 MATERIAL UND METHODEN 12
2.1 VERSUCHSTIERE 12
2.2 HERSTELLEN DER LEBERSCHNITTE 12
2.3 VORBEREITUNG DER LEBERSCHNITTE ZUM EINFRIEREN 13
2.4 EINFRIEREN DER SCHNITTE 14
2.4.1 LANGSAMES EINFRIEREN MITTELS COMPUTERSTEUERUNG 14
2.4.2 SCHNELLES EINFRIEREN IN FLUESSIGEM STICKSTOFF 15
2.5 AUFTAUEN DER LEBERSCHNITTE UND VORBEREITUNG ZUR INKUBATION 16
2.6 INKUBATION DER LEBERSCHNITTE 16
2.7 BESTIMMUNG DER BIOTRANSFORMATIONSAKTIVITAET AN LEBERSCHNITTEN 17
2.7.1 BESTIMMUNG DER ECOD AN INTAKTEN LEBERSCHNITTEN 17
2.7 2 BESTIMMUNG AM LEBERSCHNITTHOMOGENAT 18
2.8 BESTIMMUNG DER SCHNITTVITALITAET 18
2.9 STATISTIK 18
3 ERGEBNISSE 20
3.1 VORVERSUCHE ZUM EINFLUSS VON DMSO-KONTAKT AUF FRISCHE SCHNITTE 20
3.2 OPTIMIERUNG DER KRYOKONSERVIERUNG VON LEBERSCHNITTEN 21
3.2.1 EINFRIEREN VON LEBERSCHNITTEN DURCH COMPUTERGESTEUERTE LANGSAME
ABKUEHLUNG 21
3.2.2 EINFLUSS VON ZUSAETZEN ZUR DMSO-TRAEGERLOESUNG UND ZUM INKUBA
TIONSMEDIUM 22
3.2.2.1 ZUSATZ VON APROTININ ZUM PRAEPARATIONS- UND INKUBATIONSMEDIUM 22
3.2.2.2 ZUSATZ VON INSULIN ZUM PRAEPARATIONS- UND INKUBATIONSMEDIUM 24
3.2.2.3 ZUSATZ VON INSULIN UND PREDNISOLON ZUM PRAEPARATIONS- UND
INKUBATIONSMEDIUM 26
3.2.2.4 EINFLUSS DES INSULINZUSATZES ZUM INKUBATIONSMEDIUM BEI VERAEN
DERTEM EINFRIEREN 28
3.2.3 VERAENDERUNG DES EINFRIERMODUS 3 0
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