Populationsdynamik und Biologie histotroper Stadien von Oesophagostomum dentatum (Rudolphi 1803) unter In-vitro-Bedingungen:
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1997
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INHALTSVERZEICHNIS
SEITE
1
EINLEITUNG
14
2
LITERATURIIBERSICHT
15
2.1
BIOLOGIE
VON
OESOPHAGOSTOMUM
DENTATUM
SOWIE
SEINE
BEDEUTUNG
IN
DER
SCHWEINEPRODUKTION
15
2.1.1
ENTWICKLUNGSZYKLUS
UND
MORPHOLOGIE
15
2.1.2.
EPIDEMIOLOGIE
UND
VETERINAERMEDIZINISCHE
17
BEDEUTUNG
2.2
IN-VITRO-KULTIVIERUNG
VON
NEMATODEN
18
2.2.1.
EINFUEHRUNG
18
2.2.2
FILARIIDA
-
ONCHOCERCIDAE
19
2.2.2.1
DIROFILARIA
IMMITIS
19
1.2.2.2
DIROFILARIA
UNIFORMIS
24
2.2.23
ONCHOCERCA
LIENALIS
25
2.2.2.4
ONCHOCERCA
GUTTUROSA
26
SEITE
2.2.2.S
ONCHOCERCA
RAILLIETI
28
2.2.2.6
ONCHOCERCA
VOLVULUS
28
2.2.2.7
WUCHERERIA
BANCROFTL
30
2.2.2.8
ACANTHOCHEILONEMA
(DIPETALONEMA)
VITEAE
31
2.2.2.9
BRUGIA
PAHANGI
34
2.2.2.10
BRUGIA
MALAYI
37
2.2.2.11
LITOMOSOLDES
CARINII
39
2.2.2.12
MACACAFORMOSANA
41
2.2.2.13
LOA
LOA
42
2.23
ANDERE
NEMATODEN
ALS
FILARIIDA
42
2.2
3.1
TRICHOSTRONGYLIDAE
42
2.2.3.1.1
COOPERIA
PUNCTATA
42
2.23.1.2
COOPERIA
PECTINATA
43
2.2.3.13
COOPERIA
ONCOPHORA
44
SEITE
2.23.1.4
HAEMONCHUS
CONTORTUS
44
2.2.3.1.5
OSTERTAGIA
OSTERTAGI
45
2.2.3.1.6
TRICHOSTRONGYLUS
AXEI
47
2.2.3.1.7
TRICHOSTRONGYLUS
COLUBRIFORMIS
47
2.23.1.8
NIPPOSTRONGYLUS
BRASILIENSIS
(MURIS)
49
2.23.1.9
NEMATOSPIROIDES
DUBIUS
51
2.23.2
CHABERTIIDAE
51
2.23.2.1
OESOPHAGOSTOMUM
RADIATUM
51
2.23.2.2
OESOPHAGOSTOMUM
QUADRISPINULATUM
52
2.23.23
OESOPHAGOSTOMUM
DENTATUM
53
2.233
STRONGYLIDAE
54
2.233.1
STRONGYLUS
EDENTATUS
54
2.2.33.2
STRONGYLUS
EQUINUS
54
2.2.3.33
STRONGYLUS
VULGARIS
55
SEITE
2.23.4
ANCYLOSTOMATIDAE
55
2.23.4.1
ANCYLOSTOMA
TUBAEFORMAE
55
2.2.3.4.2
ANCYLOSTOMA
DUODENALE
56
2.2.3.4.3
NECATOR
AMERICANUS
57
2.23.5
SYNGAMIDAE
57
2.23.5.1
STEPHANURUS
DENTATUS
57
2.2.3.6
TRICHINELLIDAE
58
2.2.3.6.1
TRICHINELLA
SPIRALIS
58
2.2.3.7
ASCARIDIDAE
59
2.2.3.7.1
ASCARIS
SUURN
59
2.2.3.8
ANISAKIDAE
61
2.23.8.1
ANISAKIS
SIMPLEX
UND
PHOCANEMA
DECIPIENS
61
3
EIGENE
UNTERSUCHUNGEN
62
3.1
MATERIAL
UND
METHODEN
62
SEITE
3.1.1
PARASITENSTAMMHALTUNG
62
3.1.2
IN-VITRO-KULTIVIERUNG
PARASITISCHER
STADIEN
VON
O.
DENTATUM
62
3.1.2.1
GEWINNUNG
DRITTER
LARVEN
62
3.1.2.2
AUFBEREITUNG
DRITTER
LARVEN
63
3.1.23
AUFBEREITUNG
VIERTER
LARVEN
64
3.L2.4
HERSTELLUNG
UND
ZUSAMMENSETZUNG
DES
MEDIUMS
FUER
DIE
KULTIVIERUNG
PARASITISCHER
STADIEN
65
3.1.2.5
TECHNIK
DER
IN-VITRO-KULTIVIERUNG
68
3.1.2.6
STATISTISCHE
AUSWERTUNG
DER
VERSUCHSERGEBNISSE
69
3.1.2.7
TABELLARISCHES
VERZEICHNIS
DER
VERSUCHE
70
3.2
ERGEBNISSE
81
3.2.1
VERSUCHE
ZU
DEN
KULTIVIERUNGSBEDINGUNGEN
81
3.2.1.1
VERSUCHE
ZUR
MEDIUMZUSAMMENSETZUNG
81
3.2.1.1.1
KUEKENEMBRYOHOMOGENATEXTRAKT
81
SEITE
3.2.1.1.2
SERUM
86
3.2.1.1.3
TRYPTICASE
87
3.2.1.1.4
LEBEREXTRAKT
89
3.2.1.1.5
HEFEEXTRAKT
94
3.2.1.2
VERSUCHE
ZUR
KULTIVIERUNGSTEMPERATUR
97
3.2.1.3
VERSUCHE
ZUR
CO
2
-BEGASUNG
102
3.2.1.4
VERSUCHE
ZU
TEMPERATUR
UND
CO
Z
-KOMBINATIONEN
107
3.2.1.5
VERSUCH
ZU
EINEM
ZWEISTUFIGEN
KULTIVIERUNGSVERFAHREN
115
3.2.2
KULTIVIERUNG
ANDERER
OESOPHAGOSTOMUM
ARTEN
IN
MEDIUM
BM-K
118
3.2.3
VERSUCHE
ZUR
POPULATIONSDYNAMIK
VON
OESOPHAGOSTOMUM
DENTATUM
122
3.2.3.1 HOMOLOG
KONDITIONIERTES
MEDIUM
122
3.23.2
KOKULTIVIERUNG
VON
L3
MIT
VORKULTIVIERTEN
L4
125
3.2.3.3
HETEROLOG
KONDITIONIERTES
MEDIUM
127
SEITE
3.23.4
LARVENDICHTE
130
4
DISKUSSION
136
4.1
KULTIVIERUNGSBEDINGUNGEN
136
4.2
POPULATIONSDYNAMIK
143
43
SCHLUSSFOLGERUNG
148
5
ZUSAMMENFASSUNG
149
6
SUMMARY
ISO
7
LITERATURVERZEICHNIS
1S1 |
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