Der Einfluss intrazellulär gelegener, gruppierter Cystein-Reste auf die Expression und Membranporen-Bildung des humanen P2X7-Rezeptors:
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Aachen
[2016]
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adam_text | INHALTSVERZEICHNIS
INHALTSVERZEICHNIS
________________________________________________
III
ABKUERZUNGSVERZEICHNIS
____________________________________________
VII
1 EINLEITUNG_________________________________________________________1
1.1 DER P2X7-REZEPTOR
________________________________________
1
1.1.1 STRUKTUR
____________________________________________
1
1.1.2 ELEKTROPHYSIOLOGIE____________________________________2
1.1.3 PORENBILDUNG
_______________________________________
3
1.1.4 EXPRESSION__________________________________________ 6
1.1.5 DOWNSTREAM-EFFEKTE NACH AKTIVIERUNG UND PHYSIOLOGISCHE
EFFEKTE DES REZEPTORS_____________________________7
1.1.6 PATHOPHYSIOLOGIE
_____________________________________
10
1.1.7 DIE INTRAZELLULAERE C-TERMINALE DOMAENE DES P2X7-REZEPTORS
___
11
1.2.CYSTEINRESTE IM P2X7-REZEPTOR
________________________________
13
2 ZIELSETZUNG________________________________________________________ 17
3 MATERIAL UND METHODEN
____________________________________________
18
3.1 MATERIALIEN________________________________________________ 18
3.1.1 CHEMIKALIEN
_______________________________________
18
3.1.2 OLIGONUKLEOTIDE
______________________________________
18
3.1.3 RESTRIKTIONSENZYME
___________________________________
18
3.1.4 ZELLKULTUR
___________________________________________
18
3.1.5 ANTIKOERPER___________________________________________ 18
3.1.6 GENE UND VEKTOREN
__________________________________
18
3.1 METHODEN
_________________________________________________
19
3.2.1 MOLEKULARBIOLOGISCHE METHODEN
_________________________
19
3.2.1.1 GERICHTETE MUTAGENESE____________________________19
3.2.1.2 CRNA-PRODUKTION
_______________________________
20
3.2.2 HETEROLOGE PROTEINEXPRESSION IN XENOPUS LAEVIS-OOZYTEN_____20
3.2.2.1 HERKUNFT UND HALTUNG DER FROESCHE
__________________
20
3.2.2.2 ENTNAHME DES OVARS
_____________________________
20
3.2.2.3 VORBEREITUNG DER OOZYTEN
_________________________
21
3.2.2.4 INJEKTION DER RNA
_______________________________
22
3.2.2.5 BEHANDLUNG DER OOZYTEN MIT REDUKTIONMITTELN
_________
22
3.2.3 PROTEINBIOCHEMISCHE METHODEN__________________________22
3.2.3.1 METABOLISCHE MARKIERUNG MIT L-[35S]-METHIONIN
_______
22
3.2.3.2 OBERFLAECHENMARKIERUNG MITTELS CY5-MONO-NHS-ESTER
__
23
3.2.3.3 PROTEIN-AUFREINIGUNG MITTELS AFFMITAETS-CHROMATOGRAPHIE_23
3.2.3.4 N-DEGLYKOSYLIERUNG______________________________25
3.2.3.5 AUFTRENNUNG DER PROTEINE MITTELS SDS-PAGE
__________
26
3.2.3.5.1 VORBEREITUNG DER PROBEN
____________________
26
3.2.3.5.2 HERSTELLUNG DER POLYACRYLAMID-GELE
___________
26
3.2.3.5.3 DURCHFUEHRUNG DER SDS-PAGE
_______________
27
3.2.3.6 DETEKTION DER PROTEINE
____________________________
28
3.2.3.6.1 TYPHOON-FLUORESZENZ IMAGING
_______________
28
3.2.3.6.2 PHOSPHOR IMAGING
_________________________
28
3.2.3.6.3 AUSWERTUNG DER IMAGING-DATEN
______________
28
3.2.4 ZELLKULTUR
___________________________________________
29
3.2.4.1 EINLEITUNG______________________________________29
3.2A2 DAS FLP-IN*T-REX*-293-SYSTEM
__________________
29
3.2.4.3 KULTUR DER ZELLEN
________________________________
30
3.2.4.4 STABILE TRANSAKTION______________________________ 31
3.2.4.5 INDUKTION DER GENEXPRESSION
_______________________
31
3.2.5 WESTERN BLOTTING
_____________________________________
33
3.2.5.1 ERSTELLUNG VON ZELL-LYSATEN UND VORBEREITUNG DES
BLOTTINGS
_________________________________
33
3.2.5.2 DURCHFUEHRUNG DES BLOTTINGS
________________________
33
3.2.5.3 ENTWICKLUNG DES BLOTS
____________________________
33
3.2.6 DURCHFLUSSZYTOMETRIE__________________________________ 34
3.2.6.1 DURCHFLUSSZYTOMETER UND SOFTWARE
__________________
34
3.2.6.2 ANALYSE DER OBERFLAECHENEXPRESSION DES P2X7-REZEPTORS 35
3.2.6.3 ANALYSE DER P2X7R-VERMITTELTEN PORENBILDUNG________ 35
3.2.7 STATISTISCHE AUSWERTUNG________________________________ 36
4 ERGEBNISSE
______________________________________________________
37
4.1 ERSTELLUNG VON CYSTEIN-ZU-ALANIN-MUTANTEN DES HP2X7-REZEPTORS
____
37
4.2 PROTEINCHEMISCHE CHARAKTERISIERUNG DER CYSTEIN-ZU-ALANIN-MUTANTEN
DES HP2X7-REZEPTORS IN XENOPUS FAEV/S-OOZYTEN
_____________
38
4.3 DER EINFLUSS VON REDUKTIONMITTELN AUF DIE EXPRESSION DES WT-HP2X7-
REZEPTORS UND DER MUTANTE C477,479,482A-HP2X7 IN
XENOPUS LAEVIS-OOZYTTN
________________________________
40
4.4 N-DEGLYKOSYLIERUNG DES WT-HP2X7R, DER MUTANTE C493,498,499,506A-
P2X7R UND DES TRUNKIERTEN HP2X7RM36 ____________________42
4.5 PROTEINCHEMISCHE CHARAKTERISIERUNG DER CYSTEIN-ZU-ALANIN-MUTANTEN
DES HP2X7-REZEPTORS IN F LP-IN*T-REX*-293-ZEL LEN
________
44
4.6 UNTERSUCHUNGEN ZUR PORENBILDUNGSFAHIGKEIT DER CYSTEIN-ZU-ALANIN-
MUTANTEN DES HP2X7-REZEPTORS IN FLP-IN*T-REX*-293-ZELLEN_48
5 DISKUSSION_________________________________________________________53
5.1 DIE PRODUKTION DER CYSTEIN-ZU-ALANIN-MUTANTEN
_________________
53
5.2 DIE EXPRESSION DER CYSTEIN-ZU-ALANIN-MUTANTEN
__________________
53
5.2.1 EXPRIMIERTE MUTANTEN UND SPALTPRODUKTE
__________________
53
5.2.2 DIE EXPRESSIONSSYSTEME
_______________________________
54
5.2.3 DIE MUTANTE C572*573A-HP2X7
___________________________
55
5.2.4 PALMITOYLIERUNG DES P2X7-REZEPTORS
_____________________
56
5.2.5 INTERAKTION MIT DER ZELLMEMBRAN
_____________________
57
5.3 DER EINFLUSS VON REDUKTIONSMITTELN AUF DIE EXPRESSION DES WT-P2X7R
UND DER MUTANTE C477*479*482A-HP2X7_______________________59
5.4 DIE N-DEGLYKOSYLIERUNG DES WT-HP2X7R, DER MUTANTE C
493*498*499,506A-
P2X7R UND EINES TRUNKIERTEN HP2X7R1-436
__________________
60
5.5 DIE PORENBILDUNG DER CYSTEIN-ZU-ALANIN-MUTANTEN
________________
62
5.5.1 DER VERSUCHSANSATZ
___________________________________
62
5.5.2 DIE CYSTEINRESTE ZWISCHEN DEN POSITIONEN 363 UND 377
_______
64
5.5.3 DER P2X7A360 377-REZEPTOR________________________________64
5.5.4 DIE MUTANTE C572*573A-HP2X7
___________________________
65
6 ZUSAMMENFASSUNG_________________________________________________ 66
7 LITERATURVERZEICHNIS
_______________________________________________
67
ANHANG_________________________________________________________ 77
A.L KLONIERTE CDNA-KONSTRUKTE__________________________________ 77
A.2 VERWENDETE LOESUNGEN UND PUFFER______________________________78
A.3 VORUNTERSUCHUNG ZUR MESSUNG EINER P2X7-VERMITTELTEN MEMBRAN-
POREN-BILDUNG MITHILFE DER DURCHFLUSSZYTOMETRIE AN
MONOZYTEN UND MAKROPHAGEN____________________________ 82
A.3.1 EINLEITUNG
__________________________________________
82
A.3.2 VERSUCHSAUFBAU______________________________________ 82
A.3.2.1 ISOLATION DER MONOZYTEN
__________________________
82
A.3.2.2 FLUORESZENZMESSUNG MITHILFE DER DURCHFLUSSZYTOMETRIE _ 83
A.3.3 ERGEBNISSE UND DISKUSSION
_____________________________
83
A.4 VORHERSAGE DER PALMITOYLIERUNGS-WAHRSCHEINLICHKEIT DER
INTRAZELLULAEREN CYSTEINE MITHILFE DER SOFTWARE CSS PALM 4.0_____85
A.5 AUSGABE DER STATISTIK-SOFTWARE SPSS 15.0
_______________________
86
A.5.1 EXPRESSION DER CYSTEIN-ZU-ALANIN-MUTANTEN DES P2X7R
IN XENOPUS LAEVIS-OOZYXCN (SIEHE ABB. 4.2)
______________
86
A.5.1.1 OBERFLAECHENEXPRESSION
___________________________
86
A.5.1.2 GESAMTEXPRESSION
_______________________________
87
A.5.2 OBERFLAECHENEXPRESSION DER CYSTEIN-ZU-ALANIN-MUTANTEN DES
P2X7R IN FLP-IN*T-REX*-293-ZELLEN (SIEHE ABB. 4.8)
__________
88
A.5.2.1 ISOTYP-KONTROLLE
________________________________
88
A.5.2.2 ANTI-P2X7-ANTIKOERPER
__________________________
89
DANKSAGUNG______________________________________________________ 90
ERKLAERUNG ZUR DATENAUFBEWAHRUNG
____________________________________
91
ERKLAERUNG ZUM EIGENANTEIL
__________________________________________
92
LEBENSLAUF_______________________________________________________ 93
|
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